JoVE Journal > Biology
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Ergebnisse
Discussion
Offenlegungen
Acknowledgements
Materials
Referenzen
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Biologie

V3 Без пятен рабочий процесс для практического, удобного и надежного тотального контроля загрузки белка в Западном Blotting

Published: December 30, 2013
doi:
10.3791/50948
, , , ,
1Bio-Rad Laboratories

Summary

Рабочий процесс V3 является западной процедурой помарки с использованием без пятен гелей. Технология без пятен позволяет исследователям визуализировать качество разделения белка, проверить эффективность переноса и, самое главное, проверить изменение белка, представляющий интерес, используя общую количественную оценку белка в качестве надежного контроля нагрузки.

Abstract

Западная помарка очень полезная и широко принятая техника лаборатории, но своя исполнение challenging. Рабочий процесс часто характеризуется как “черный ящик”, потому что экспериментатор не знает, если он был успешно выполнен до последнего из нескольких шагов. Кроме того, качество западных данных пятно иногда оспаривается из-за отсутствия эффективных инструментов контроля качества на месте на протяжении всего западного процесса blotting. Здесь мы описываем западный рабочий процесс V3, который применяет технологию без пятен для решения основных проблем, связанных с традиционным западным протоколом помарки. Этот рабочий процесс позволяет исследователям: 1) запустить гель примерно за 20-30 мин; 2) визуализировать качество разделения образца в течение 5 минут после запуска геля; 3) для передачи белков в 3-10 мин; 4) для количественной проверки эффективности передачи; и, самое главное 5) для проверки изменений в уровне белка интереса с использованием общего контроля загрузки белка. Этот новый подход устраняет необходимость зачистки и reprobing пятно для домашнего хозяйства белков, таких как β-актин, β-тубулин, GAPDH и т.д. V3 пятно свободных рабочий процесс делает западный процесс пятно быстрее, прозрачный, более количественным и надежным.

Introduction

Западная помарка очень полезная техника9,однако, 2 главных возможности с западным blotting: долгий и трудоемкий процесс и качество данных. Традиционный протокол требует около 2 дней. Она включает в себя множество шагов, включая подготовку образца, литье геля, электрофорез белка и передачи, мембраны блокирования следуют инкубации антител, визуализации, и довольно часто зачистки, reprobing, и, наконец, анализ данных. На протяжении всего этого процесса не существует надежных и гибких инструментов для управления процессами. Таким образом, ошибки могут быть введены на каждом шагу, и эти ошибки имеют потенциал для создания артефактов данных; поэтому контроль загрузки необходим в западном blotting для того чтобы определить и исправить для ошибок. Контроль нагрузки обычно делается путем проверки уровня белка эталонного белка в каждом образце, чтобы увидеть, если он в равной степени представлены. Люди часто используют белки домашнего хозяйства, такие как β-актин, β-тубулин,GAPDH, как контроль нагрузки.

Качество данных западных помарк зависит от надежного контроля загрузки. Но есть две законные проблемы при использовании белков домашнего хозяйства для контроля нагрузки: 1) иммунодетная выработка белковых полос на основе антител часто насыщена, и поэтому нельзя различать различия в загрузке междуобразцами 30; 2) уровень экспрессии белка домашнего хозяйства может варьироваться в образцах при определенных экспериментальных условиях, например, лечение siRNA, гибель клеток, дифференциация клеток ит.д. 11,28,3,6,10,21. Из-за этих опасений научные журналы в настоящее время требуют, чтобы “для количественных сравнений использовались соответствующие реагенты, методы управления и визуализации с линейными диапазонами сигналов” (Руководство по природе). Аналогичным образом, редакторы из журнала клинических исследований просят более надежные элементы управленияпогрузкой 24. По этим причинам, белок домашнего хозяйства должен быть проверен для того, чтобы быть использованы в качестве контроля нагрузки. Во-первых, нужно убедиться, что он измеряется в линейном динамическом диапазоне методаиммунодетекции 14,29. Во-вторых, нужно убедиться, что он выражаетсяпоследовательно во всех образцах 26,31,25,19,20.

Альтернативным решением надежного контроля нагрузки является использование общего измерения белка с помарки. Некоторые исследователи запятнали пятна с общими пятнами белка, таких как Кумасси, Фламинго Розовый, Sypro Ruby, Amido Черный, Ponceau S, и пятно свободной технологии, для измерения общего сигнала белка в каждой полосе, как контрольпогрузки 16,20,13,27,1,4,12. Общий контроль загрузки белка позволяет избежать ловушек, связанных с белками домашнего хозяйства. Во-первых, это истинное отражение количества белка, загруженного для каждого образца. Во-вторых, общее пятно белка демонстрирует отличный линейный динамический диапазон в общем диапазоне нагрузки для западного анализа помарки (10-50 мкг белка сложной клетки лизата) и точно дифференцирует разницу в загрузкемежду образцами 12.

Технология без пятен является новым методом полного окрашивания белка, где уникальное соединение смешивается в растворе акриламида геля и равномерно распределяется в литом геле. После завершения электрофорез, гель подвергается воздействию уф-излучения в течение как минимум 1 мин, так что пятно соединение реагирует с остатками триптофана в белке. Белки становятся возбудимыми под ультрафиолетовым светом, чтобы дать сильный флуоресцентный сигнал, который может быть визуализированы и количественно в пятно-бесплатно включен imager, таких как ChemiDoc MP системы. Однако само соединение, свободное от пятен, не поглощает ультрафиолетовый свет, что приводит к низкому фону изображения геля. Модификация остатков триптофана необратима, и белки можно визуализировать не только в геле, но и на помарке в любое время после передачи белка.

Технология без пятен применяется в V3 Western Workflow(рисунок 1) для решения основных жалоб на традиционный рабочий процесс, особенно проблемы с использованием белков домашнего хозяйства в качестве контроля загрузки. Используя этот рабочий процесс, можно было бы: 1) запустить гель примерно в 20-30 мин, 2) проверить целостность образца и качество разделения белка в 5 минут после запуска геля; 3) передавать белки в 3-10 мин; 4) проверить эффективность передачи количественно; и 5) самое главное, проверить изменения в уровне белка интереса с помощью общего контроля загрузки белка.

Protocol

1. Белковый образец Prep (Описана типичная процедура извлечения белков из клеточной культуры) Поместите блюдо культуры клеток HeLa во льду и промыть клетки с ледяной Трис-буферной солевой (TBS; 20 мМ Трис-HCl, рН 7,5, 150 мМм NaCl). Аспирировать TBS, затем добавить 1 мл на 100 мм блюдо ледяной БУФЕР RIPA (50 мМ Трис-HCl рН 8,0, 150 мМм NaCl, 1% NP-40, 0,5% дезоксихолата натрия, 0,1% SDS) дополнены фосфатаза и протеазы. Очистить адепт клеток от блюдо с помощью холодного пластикового скребка клеток; аккуратно перенесите подвесную клетку в предварительно облеарелую трубку микроцентрифуга. Поддерживайте постоянную агитацию в течение 30 мин при 4 градусах цельсия на ротаторе. Спин при 16000 х г в течение 20 мин в 4 градусов предварительно заколол центрифугу. Аккуратно снимите трубку с центрифуги и поместите на лед. Перенесите супернатант в свежую трубку, накоутую на льду, и выбросьте гранулы. Удалите небольшой объем (10-20 мкл) лисата для выполнения анализа белка. Определите концентрацию белка для каждого образца с помощью набора анализа RC DC. При необходимости, aliquot образцы белка для длительного хранения при -20 градусов по Цельсию. Повторные циклы замораживания и оттепели вызывают деградацию белка и следует избегать. Возьмите около 20 мкг каждого образца, добавить равный объем 2x Laemmli Образец буфера (4% SDS, 10% 2-меркаптоэтанол, 20% глицерол, 0,004% бромофено-голубой, 125 мМ Трис-HCl, рН 6,8). Нагрейте каждую ячейку лизайт в буфере образца при температуре 95 градусов по Цельсию в течение 5 минут. Центрифуга при 16 000 х г в микроцентрифуге в течение 1 мин. 2. Гель Электрофорез с гелями без пятен (30 мин) Возьмите критерий TGX Любой KD пятно свободной precast гель (миди формат гель), удалить гребень и ленту из нижней части кассеты. Поместите кассету в ячейку Criterion и заполните интегрированную верхнюю буферную камеру с 60 мл бегущего буфера (25 мМ Трис, 190 мМ глицин, 0,1% SDS, рН 8,3). Промыть скважины с помощью бегущего буфера. Заполните каждую половину нижнего буферного бака 400 мл бегущего буфера к отмеченной линии заполнения. Загрузите образцы белка и соответствующие маркеры белка. Поместите крышку на бак, выравнивая цветные банановые пробки с соответствующими домкратами на крышке. Вы запустите гель в течение 30 мин при 200 V или 20 мин при 300 В. 3. Без пятна гель изображения с помощью Chemidoc MP системы для проверки качества разделения белка (5 мин) Удалите гель кассету из клетки. Используйте гель кассеты открытия инструмента в крышке критерия ячейки, чтобы взломать кассету и выпустить гель. Нанесите пару миллилитров воды в центр лотка УФ образца изображения ChemiDoc MP. Аккуратно поднимите гель из кассеты и поместите его на поднос. Запуск программного обеспечения Image Lab и захват без пятен гель изображение(рисунок 1A) со следующими настройками:Применение: гель без пятенВремя активации геля: 1 минОбласть изображения: гель критерияВремя экспозиции изображения: автоматически оптимизировано для наиболее интенсивных полос Удалите гель из лотка образца и немедленно перейти к передаче шаг. 4. Передача белка с транс-Blot Turbo системы (10 мин) Открыть Транс-Blot Turbo Midi PVDF Трансфер Pack; поместите нижний стек (который включает мембрану) на основание кассеты передачи. Поместите гель поверх мембраны, поместите верхний стек на гель и раскатайте пузырьки. Поместите крышку на кассетную основу и поверните циферблат, чтобы заблокировать его. Вставьте кассету в залив blotter. Начните передачу, выбрав предустановленную программу Turbo и выбрав размер геля Criterion (миди), а затем нажмите RUN. Типичный пробег занимает всего 7 минут. Когда передача закончена, разобрать сэндвич и поместить как пятно и гель в контейнер с деионизированной водой. 5. Без пятен гель и пятно изображения с помощью Chemidoc MP системы для проверки эффективности передачи белка и качества (5 мин) Поместите гель после передачи на поднос образца изображения ChemiDoc MP. Запуск программного обеспечения Image Lab и захват без пятен изображения после передачигеля (рисунок 1B) со следующими настройками:Применение: гель без пятенВремя активации геля: нетОбласть изображения: гель критерияВремя экспозиции изображения: то же самое время экспозиции для изображения претрансферного геля Удалите гель из лотка образца, а затем изображение пятно(рисунок 1C) со следующими настройками. Держите пятно мокрым с несколькими каплями воды или TBST при визуализации.Применение: пятно-бесплатно пятноОбласть изображения: гель критерияВремя экспозиции изображения: автоматически оптимизировано для наиболее интенсивных полос Удалите мембрану с помощью образца лотка и поместите его в контейнер с TBST (0,1% Tween 20 в TBS). 6. Инкубация антител Блок, поместив пятно в растворе 3% бычьего альбумин сыворотки (BSA) в TBST при комнатной температуре в течение 1 часа. Инкубировать пятно на ночь при 4 градусов по Цельсию в растворе, содержащем мыши первичных антител, поднятых против первой цели белка и кролика первичного антитела, поднятые против второй целевой белка. Вылейте раствор, содержащий первичное антитело. Затем промойте помарку, агитив в 20 мл TBST в течение 5 минут. Повторите 4x в общей сложности 5 моет. Инкубация в течение 1 часа при комнатной температуре во вторичном растворе антитела, содержащем спряженное антитело Dylight 650 Goat-anti-mouse и спряженное антитело Dylight 549 Goat-anti-rabbit. Вылейте раствор, содержащий первичное антитело. Затем промойте помарку, агитив в 20 мл TBST в течение 5 минут. Повторите 4x в общей сложности 5 моет. 7. Анализ изображений и данных с помощью программного обеспечения Лаборатории изображений – Полная нормализация белка (5 мин) Приобретите мультиплексное флуоресцентное изображение помарки(рисунок 1E),открыв новый многоканальный протокол, настройте три флуоресцентных канала и запустите протокол.Канал 1:Применение: пятно Dylight 650Область изображения: гель критерияВремя экспозиции изображения: автоматически оптимизировано для наиболее интенсивных полосКанал 2:Применение: пятно Dylight 549Область изображения: гель критерияВремя экспозиции изображения: автоматически оптимизировано для наиболее интенсивных полосКанал 3:Применение: пятно-бесплатно пятноОбласть изображения: время экспозиции изображения критерия геля: автоматически оптимизировано для наиболее интенсивных полос Нажмите значок нормализации из окна инструмента анализа и нажмите Да, чтобы обнаружить полосы движения и полосы. Выберите и используйте “Lanes and Bands tools”, чтобы внести коррективы в полосы движения и полосы, если это необходимо. Выберите изображение без пятен в качестве канала нормализации. Выберите инструменты анализа MW и назначьте стандартные полосы движения MW, проверяя коробки под ними. Чтобы просмотреть нормализованные объемы, нажмите таблицу анализа на бар инструментов. Все расчеты будут выполняться автоматически программным обеспечением, включая фактор нормализации и нормализованные объемы. Значения интенсивности целевой белковой полосы теперь корректируются с изменением нагрузки белка. Это позволит точно сравнивать целевые белки между образцами.

Representative Results

1. Оценка целостности выборки, качества разделения белка и эффективности переноса с изображениями геля без пятен. Белковый экстракт из клеток HeLa был отделен при 300 V в течение 20 минут на 18-ну Критерий AnyKD TGX без пятен гель. Образцы белка были загружены в 3 раза в четырех различных количествах (Lanes 1-3, 40 мкг; Переулки 4-6, 30 мкг; Переулки 7-9, 20 мкг; Переулки 10-12, 10 мкг). Гель активировался под ультрафиолетовым светом в течение 1 мин. На рисунке 2А показано изображение геля, полученное сразу после разделения белка. Целостность образца протеина(например, деградация) и качество разделения(например, белковые осадки) можно визуально оценить с помощью этого гель-изображения. Белки затем были переданы в течение 7 минут в мембрану нитроцеллюлозы с помощью Транс-Blot Turbo. На рисунке 2B показано без пятен изображение гельа после передачи. Оба изображения были приобретены с одинаковым временем экспозиции (6,8 сек). Для оценки эффективности передачи были отобраны переулки 3 и 12. Используя инструмент громкости в программном обеспечении Image Lab, прямоугольная коробка (синий) была накожена для покрытия полосы 3 и 12 на обоих изображениях геля. Расчет, основанный на значениях объема из этих коробок, показал, что эффективность передачи обеих полос составила 80%(рисунок 2C). В этом эксперименте гель AnyKD TGX был выбран для изучения малых и средних целевых белков и не был оптимизирован для передачи крупных белков. Оптимизация эффективности передачи потребует использования более низкого процентного геля(например, 4-20%) и/или корректировка времени передачи для облегчения передачи крупных белков. 2. Без пятна полный контроль загрузки белка является надежной альтернативой управления погрузкой домашнего хозяйства в западной blotting количественно небольшое изменение уровня белка интереса. MCM-7 является фактором репликации лицензирования ДНК, уровень которого снижается на 20-50% в лимфобластоидных клеточных линиях (LCL) после облучения. В этом эксперименте, лизаты (30 мкг каждый) из четырех контроля и облучения обработанных лимфобластоидных клеток линии (LCL) культуры были разделены на 12-ну Критерий AnyKD TGX пятно-бесплатный гель. Гель активировался в течение 1 мин под ультрафиолетовым светом и передавался Trans-Blot Turbo в мембрану PVDF для иммуноблоттинга. Белок домашнего хозяйства GAPDH (зеленый) был исследован с антителом кролика (Технология сигнализации клетки, США, 1:2,500) и Dylight 549 спряженное антитело Коза-анти-кролик (Rockland, США, 1:20,000). Белок интереса MCM-7 (красный) был исследован с помощью антитела мыши (Abcam, США, 1:1,000) и Dylight 649 спряженных Коза-анти-мышь антитела (Rockland, 1:10,000). На рисунке 3A показано мультиплексное флуоресцентное изображение общего количества белков (синий), MCM-7 (красный) и GAPDH (зеленый), обнаруженных в четырех контрольных и облучающих обработанных образцах LCL. Рисунок 3B является пятно-бесплатное изображение той же пятно, показывающее общий шаблон белка в каждом образце (30 мкг). Программное обеспечение лаборатории изображений выбрало образцы полос (голубые коробки) для измерения MCM-7, GAPDH и общего объема белка в каждой полосе. Уровни MCM-7 были нормализовывались либо против без пятен общего измерения белка или против GAPDH. Статистически проанализированы нормализованные уровни белка MCM-7, а на графике представлены средний объем белковойполосы MCM-7 и стандартное отклонение (n’4). Оба метода нормализации выявили небольшое снижение (около 25%) в уровнях белка MCM-7 после облучения лечения. Данные с общей нормализацией протеина exhibited более малое стандартное отклонение чем то с GAPDH как управление нагрузки. Рисунок 1. V3 Западный рабочий процесс. Рабочий процесс V3 изображен в левой колонке в 4 шага. Основные инструменты и реагенты, используемые в рабочем процессе, отображаются на каждом этапе. Предполагаемое время для каждого шага также включено. Правая колонка показывает, что в рабочем процессе V3 может быть получено не менее 4 изображений. Описано использование каждой части данных. Без пятен изображения претрансферного геля, гель после передачи, и пятно (A, B, C) не может быть легко генерируется с традиционными западными методами blotting; Эти изображения и данные обеспечивают важную информацию и контрольно-пропускные пункты вдоль процедуры для улучшения контроля ученого и воспроизводимости западного помарки рабочего процесса. Целевые сигналы белка могут быть захвачены либо на хемилюминесцентные пятно изображения ( D ),еслиHRP-спряженных вторичных антител было применено в обнаружении или на флуоресцентные пятно изображения (E ),еслимультиплексирование флуоресцентные западные blotting было выполнено для обнаружения более чем одной цели белка одновременно на той же пятно. Нажмите здесь, чтобы просмотреть изображение большего размера. Рисунок 2. Без пятен изображения претрансферных и послепередачных гелей в западном рабочем процессе V3 для оценки целостности выборки, качества разделения и эффективности передачи. (A)Претрансфер гель пятно-бесплатное изображение. (B)После передачи гель без пятен изображения. (C)Измерение эффективности передачи белка. Нажмите здесь, чтобы просмотреть изображение большего размера. Рисунок 3. Сравнение полного измерения белка без пятен с иммунодетекцией GAPDH в качестве контроля нагрузки для нормализации уровня интереса к белку. (A)Флуоресцентные западные пятно изображения. (B)Пятно-бесплатно пятно изображения. (C)Нормализованный уровень белка MCM-7. Нажмите здесь, чтобы просмотреть изображение большего размера.

Discussion

Протокол V3 без пятен, описанный выше, для мультиплексирования флуоресцентных западных blotting. Он также может быть применен в западной blotting с помощью хемилюминесцентного обнаружения. В мультиплексном флуоресцентном западном протоколе помарки, без пятен помарки изображения приобретены в двух точках времени: 1) сразу после передачи белка; 2) на мультиплексном этапе флуоресцентной визуализации после инкубации антител. Первое пятно свободное изображение используется для расчета эффективности передачи, а второе пятно-бесплатное изображение используется в качестве управления загрузкой. Когда метод хемилюминесцентных применяется, это не возможно принять мультиплексное изображение для пятен свободных и целевых сигналов белка, потому что химилюминесцентный сигнал будет появляться в пятно-свободный канал тоже. В этом случае мы рекомендуем использовать без пятен изображение, принятое сразу после шага передачи белка для контроля загрузки и анализа нормализации.

V3 западный рабочий процесс обеспечивает следующие уникальные преимущества по сравнению с традиционным западным помаркой рабочий процесс, который использует белки домашнего хозяйства в качестве контроля нагрузки:

Во-первых, рабочий процесс V3 обеспечивает практический, удобный и более надежный контроль погрузки для проверки изменений уровня белка интереса. Протокол V3 использует полный контроль загрузки белка для нормализации уровня белка интереса, измеренного в каждом образце. Это позволяет избежать двух подводных камней использования белков домашнего хозяйства в качестве контроля нагрузки: насыщенный иммунодетекция и несовместимые уровни экспрессии белка домашнего хозяйства среди образцов при определенных экспериментальных условиях. Зачистка и reprobing шаги с антителами, направленными против домашнего хозяйства больше не нужны. Используя технологию без пятен, нет необходимости окрашивать и де-пятно пятно с пятнами, такими как Кумасси или Sypro Ruby для общего измерения белка. Это займет всего несколько секунд, чтобы приобрести пятно изображения и около 5 минут, чтобы сделать полную нормализацию белка с помощью программного обеспечения Image Lab.

Во-вторых, рабочий процесс V3 позволяет ученым лучше контролировать западную процедуру, поскольку делает процедуру более прозрачной и вводит несколько контрольно-пропускных пунктов для контроля качества. С помощью технологии без пятен исследователи могут визуализировать свои образцы белка как на геле, так и на помарке. Ученые могут оценить целостность образца белка (деградированные или нет), качество разделения (ускорили или нет), эффективность передачи и качество передачи (даже передачи или нет). Эти контрольно-пропускные пункты помогают исследованиям прекратить эксперимент, видя большие недостатки в процессе и не тратить время на плохие образцы и помарки. Эта технология также помогает ученым оценить, есть ли значительное количество потери белка после зачистки мембраны и подходит ли пятно для reprobing другой цели 4.

Вот несколько советов, чтобы обеспечить хороший опыт и качество данных с помощью V3 западного рабочего процесса.

  1. Изображение геля сразу после запуска геля. Не замочите гель в любом буфере до первого изображения в процедуре, как это может смыть пятно соединения.
  2. Используйте ту же область изображения для получения всех изображений в протоколе. Это позволит программному обеспечению наложить изображения для анализа данных, таких как полная нормализация белка.
  3. Держите время экспозиции в соответствии при визуализации предпереведенных и послепереходных гелей. Это позволит программному обеспечению количественно измерить эффективность передачи.
  4. Держите мембрану влажной с несколькими каплями воды или TBST при приобретении пятно изображения. Это позволит избежать возможных проблем грязного фона для обнаружения целевого белка.
  5. Используйте низкофлуоресцентную мембрану PVDF для мультиплексирования флуоресцентных западных пятен.

Важно отметить, что молекула, свободная от пятен после УФ-активации, необратимо связана с остатками триптофана. Эта необратимая модификация потенциально может повлиять на распознавание антигенов при использовании моноклональных антител, если эпитоп содержит триптофан. Поликлональные антитела вряд ли будут затронуты, потому что они признают несколько эпитопов на антигене. Несыханные молекулы, свободные от пятен, легко смываются с геля и мембраны и поэтому не будут вмешиваться в взаимодействие антител и антигенов.

В заключение, западный рабочий процесс V3 делает западный процесс помарки более быстрым, прозрачным, количественным и более надежным. Исследователи теперь могут легко применить полный контроль загрузки белка в западном эксперименте пятно, чтобы сделать свои данные более надежными. Рабочий процесс V3 без пятен был принят рядом лабораторий, и их публикации показали, что журналы принимают данные без пятен в качестве контроля загрузкив западной помарке 22,17,7,8,5,23,18,15.

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят д-ра Вольфа-Дитера Сталца, д-ра Арно Реми, д-ра Антона Поша, д-ра Патрисию Пьятти, Тома Дэвиса, Криса Симоньи и Джеффа Дурбана за их критический обзор и редактирование этой рукописи. Авторы также благодарят Эллисон Шварц за техническую поддержку.

Materials

REAGENTS
4-20% Criterion TGX Stain-Free Precast Gel Bio-Rad 567-8093 Choose a gel size and percentage that meet the specific need in a experiment
Trans-Blot Turbo Midi PVDF Transfer Packs Bio-Rad 170-4157 Choose either PVDF or nitrocellulose and match the membrane size to the gel size
Clarity Western ECL Substrate, 500 ml Bio-Rad 170-5061
[header]
EQUIPMENT
Criterion Cell Bio-Rad 165-6100
Trans-Blot Turbo Transfer Starter System Bio-Rad 170-4155
ChemiDoc MP System Bio-Rad 170-8280
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referenzen

  1. Aldridge, G. M., Podrebarac, D. M., Greenough, W. T., Weiler, I. J. The use of total protein stains as loading controls: an alternative to high-abundance single-protein controls in semi-quantitative immunoblotting. J. Neurosci. Methods. 172 (2), 250-254 (2008).
  2. Bauer, D. E., Haroutunian, V., McCullumsmith, R. E., Meador-Woodruff, J. H. Expression of four housekeeping proteins in elderly patients with schizophrenia. J. Neural. Transm. 116 (4), 487-491 (2009).
  3. Castaño, Z., Kypta, R. M. Housekeeping Proteins: Limitations as References During Neuronal Differentiation. Open Neurosci. J. 2, 36-40 (2008).
  4. Colella, A. D., Chegenii, N., Tea, M. N., Gibbins, I. L., Williams, K. A., Chataway, T. K. Comparison of Stain-Free gels with traditional immunoblot loading control methodology. Anal. Biochem. 430 (2), 108-110 (2012).
  5. Cully, T. R., Edwards, J. N., Friedrich, O., Stephenson, D. G., Murphy, R. M., Launikonis, B. S. Changes in plasma membrane Ca-ATPase and stromal interacting molecule 1 expression levels for Ca2+ signaling in dystrophic mdx mouse muscle. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 303 (5), (2012).
  6. Dittmer, A., Dittmer, J. Beta-actin is not a reliable loading control in Western blot analysis. Electrophoresis. 27 (14), 2844-2845 (2006).
  7. Dutka, T. L., Lamboley, C. R., McKenna, M. J., Murphy, R. M., Lamb, G. D. Effects of carnosine on contractile apparatus Ca2+ sensitivity and sarcoplasmic reticulum Ca2+ release in human skeletal muscle fibers. J. Appl. Physiol. 112 (5), 728-736 (2012).
  8. Elliott, S., Busse, L., Swift, S., McCaffery, I., Rossi, J., Kassner, P., Begley, C. G. Lack of expression and function of erythropoietin receptors in the kidney. Nephrol. Dial. Transplant. 27 (7), 2733-2745 (2012).
  9. Eslami, A., Lujan, J., Western, Blotting: Sample Preparation to Detection. J. Vis. Exp. (44), (2010).
  10. Ferguson, R. E., Carroll, H. P., Harris, A., Maher, E. R., Selby, P. J., Banks, R. E. Housekeeping proteins: a preliminary study illustrating some limitations as useful references in protein expression studies. Proteomics. 5 (2), 566-571 (2005).
  11. Greer, S., Honeywell, R., Geletu, M., Arulanandam, R., Raptis, L. Housekeeping genes; expression levels may change with density of cultured cells. J. Immunol. Methods. 355 (1-2), 76-79 (2010).
  12. Gürtler, A., Kunz, A., Gomolka, M., Hornhardt, S., Friedl, A. A., McDonald, K., Kohn, J. E., Posch, A. Stain-Free Technology as Normalization Tool in Western Blot Analysis. Anal. Biochem. 433 (2), 105-111 (2013).
  13. Hagiwara, M., Kobayashi, K., Tadokoro, T., Yamamoto, Y. Application of SYPRO Ruby- and Flamingo-stained polyacrylamide gels to Western blot analysis. Anal. Biochem. 397 (2), 262-264 (2010).
  14. Heidebrecht, F., Heidebrecht, A., Schulz, I., Behrens, S. E., Bader, A. Improved semiquantitative Western blot technique with increased quantification range. J. Immunol. Methods. 345 (1-2), 40-48 (2009).
  15. Jensen, R. B., Ozes, A., Kim, T., Estep, A. Kowalczykowski SC BRCA2 is epistatic to the RAD51 paralogs in response to DNA damage. DNA Repair. , (2013).
  16. Lanoix, D., St-Pierre, J., Lacasse, A. A., Viau, M., Lafond, J., Vaillancourt, C. Stability of reference proteins in human placenta: general protein stains are the benchmark. Placenta. 33 (3), 151-156 (2012).
  17. Larkins, N. T., Murphy, R. M., Lamb, G. D. Influences of temperature, oxidative stress, and phosphorylation on binding of heat shock proteins in skeletal muscle fibers. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 3 (6), (2012).
  18. Laurie, K. J., Dave, A., Straga, T., Souzeau, E., Chataway, T., Sykes, M. J., Casey, T., Teo, T., Pater, J., Craig, J. E., Sharma, S., Burdon, K. P. Identification of a Novel Oligomerization Disrupting Mutation in CRYΑA Associated with Congenital Cataract in a South Australian. , (2012).
  19. Li, X., Bai, H., Wang, X., Li, L., Cao, Y., Wei, J., Liu, Y., Liu, L., Gong, X., Wu, L., Liu, S., Liu, G. Identification and validation of rice reference proteins for western blotting. J. Exp. Bot. 62 (14), 4763-4772 (2011).
  20. Liu, N. K., Xu, X. M. Beta-tubulin is a more suitable internal control than beta-actin in western blot analysis of spinal cord tissues after traumatic injury. J. Neurotrauma. 23 (12), 1794-1801 (2006).
  21. Lowe, D. A., Degens, H., Chen, K. D., Alway, S. E. Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase varies with age in glycolytic muscles of rats. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 55 (3), 160-164 (2000).
  22. Mollica, J. P., Dutka, T. L., Merry, T. L., Lamboley, C. R., McConell, G. K., McKenna, M. J., Murphy, R. M., Lamb, G. D. S-glutathionylation of troponin I (fast) increases contractile apparatus Ca2+ sensitivity in fast-twitch muscle fibres of rats and humans. J. Physiol. 590, 1443-1463 (2012).
  23. Murphy, R. M., Dutka, T. L., Horvath, D., Bell, J. R., Delbridge, L. M., Lamb, G. D. . Ca2+-dependent Proteolysis of Junctophilin 1 and Junctophilin 2 in Skeletal and Cardiac. 591, 719-729 (2012).
  24. Neill, U. S. All Data are not created Equal. J. Clin. Invest. 119, 224 (2009).
  25. Pérez-Pérez, R., López, J. A., García-Santos, E., Camafeita, E., Gómez-Serrano, M., Ortega-Delgado, F. J., Ricart, W., Fernández-Real, J. M., Peral, B. Uncovering suitable reference proteins for expression studies in human adipose tissue with relevance to obesity. PLoS One. 7 (1), (2012).
  26. Rocha-Martins, M., Njaine, B., Silveira, M. S. Avoiding Pitfalls of Internal Controls: Validation of Reference Genes for Analysis by qRT-PCR and Western Blot throughout Rat Retinal Development. PLoS One. 7 (8), (2012).
  27. Romero-Calvo, I., Ocón, B., Martínez-Moya, P., Suárez, M. D., Zarzuelo, A., Martínez-Augustin, O., de Medina, F. S. Reversible Ponceau staining as a loading control alternative to actin in Western blots. Anal. Biochem. 401 (2), 318-320 (2010).
  28. Said, H. M., Polat, B., Hagemann, C., Anacker, J., Flentje, M., Vordermark, D. Absence of GAPDH regulation in tumor-cells of different origin under hypoxic conditions in-vitro. BMC Res. Notes. 13 (2), 8 (2009).
  29. Suzuki, O., Koura, M., Noguchi, Y., Uchio-Yamada, K., Matsuda, J. Use of sample mixtures for standard curve creation in quantitative western blots. Exp. Anim. 60 (2), 193-196 (2011).
  30. Welinder, C., Ekblad, L. Coomassie staining as loading control in Western blot analysis. J. Proteome Res. 10 (3), 1416-1419 (2011).
  31. You, J., Hodge, C., Wen, L., McAvoy, J. W., Madigan, M. C., Sutton, G. Using soybean trypsin inhibitor as an external loading control for Western blot analysis of tear proteins: application to corneal disease. Exp. Eye Res. 99, 55-62 (2012).

Tags

Western BlotStain-free TechnologyTotal Protein Loading ControlProtein QuantificationWorkflow OptimizationTransfer Efficiency VerificationHousekeeping Proteins

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Diesen Artikel zitieren
Posch, A., Kohn, J., Oh, K., Hammond, M., Liu, N. V3 Stain-free Workflow for a Practical, Convenient, and Reliable Total Protein Loading Control in Western Blotting. J. Vis. Exp. (82), e50948, doi:10.3791/50948 (2013).
Zitat herunterladen
Nachdrucke und Berechtigungen

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image