Summary

Costruzione di un microscopio ad alta risoluzione con convenzionali e Holographic Capabilities intrappolamento ottico

Published: April 22, 2013
doi:

Summary

Il sistema qui descritto impiega una trappola ottica tradizionale e una linea intrappolamento ottico olografico indipendente, capace di creare e manipolazione di più trappole. Questo consente la creazione di complessi arrangiamenti geometrici di particelle di rifrazione e che permetta ad alta velocità misurazioni simultanee, ad alta risoluzione della attività degli enzimi biologici.

Abstract

Sistemi microscopio ad alta risoluzione con trappole ottiche consentono di intervenire precisa di vari oggetti rifrazione, come dielettrici perline uno o organelli cellulari 2,3, nonché per lettura ad alta risoluzione spaziale e temporale della loro posizione rispetto al centro della trappola. Il sistema qui descritto presenta uno di tali "tradizionale" trappola operante a 980 nm. Esso fornisce inoltre un secondo sistema intrappolamento ottico che utilizza un pacchetto olografico disponibile in commercio per creare e manipolare simultaneamente schemi di cattura complessi nel campo visivo del microscopio a 4,5 ad una lunghezza d'onda di 1064 nm. La combinazione dei due sistemi permette la manipolazione di oggetti multipli refrattivi allo stesso tempo mentre condurre simultaneamente misure ad alta risoluzione di moto e di produzione di forza a scala nanometrica e piconewton alta velocità e.

Introduction

Intrappolamento ottico è una delle tecniche chiave in biofisica 6. Un avanzamento cruciale intrappolamento ottico è stato lo sviluppo di trappole olografici che consentono la creazione di modelli di intrappolamento tridimensionali anziché trappole point convenzionali 7. Queste trappole olografiche possiedono il vantaggio di versatilità nel posizionamento di oggetti rifrazione. Tuttavia trappole convenzionali possono essere facilmente allineate per essere più simmetrica rispetto commercialmente disponibili kit olografiche. Permettono anche per un veloce monitoraggio preciso degli oggetti intrappolati. Qui si descrive un sistema (Figura 1) che combina i due approcci di cattura in un apparecchio e permette all'utente di sfruttare i vantaggi di entrambi come appropriato.

Le considerazioni generali di costruzione di trappole ottiche (sulla base di fasci laser singole o multiple) sono discussi in dettaglio altrove 8-10. Qui, delineare le considerazioni specifiche per il nostro setup e fornire i dettagli della nostra procedura di allineamento. Per esempio, i sistemi con due fasci intrappolamento ottico sono state descritte in precedenza (es. rif. 11), tipicamente utilizzando un raggio laser per intrappolare un oggetto di rifrazione e utilizzando l'altro (fascio potenza volutamente basso) per la lettura disaccoppiato della posizione dell'oggetto intrappolato . Qui tuttavia, entrambi i fasci laser devono essere ad alta potenza (300 mW o superiore) perché entrambi sono da utilizzare per la cattura. Per misurazioni di sistemi biologici, i laser utilizzati per intrappolare dovrebbero rientrare in modo ottimale all'interno di una specifica finestra NIR di lunghezza d'onda per ridurre al minimo la degradazione proteica indotta luce 1. Qui abbiamo scelto di usare 980 nm diodo e 1064 nm laser DPSS a causa del loro basso costo, alta disponibilità e facilità di funzionamento.

Abbiamo anche scelto di utilizzare un modulatore spaziale di luce (SLM) per creare e manipolare più trappole contemporaneamente in tempo reale 4,5. Questi dispositivi sono disponibili in commerciotuttavia la loro integrazione in un setup completo rappresenta una sfida unica. Qui si descrive un approccio pratico che affronta queste potenziali difficoltà e fornisce uno strumento estremamente versatile. Forniamo un esempio esplicito per il setup specifico descritto che può essere utilizzato come guida per i disegni modificati.

Protocol

1. Installazione di 980 nm Lunghezza d'onda singola trappola ottica Intrappolamento ottico a 980 nm di lunghezza d'onda è spesso ottimale sono facilmente disponibili con potenza di uscita alto come 300 mW esperimenti di biofisica e diodi laser poco costoso. È preferibile per un laser a diodi ad essere Pigtailed con polarizzazione-preserving fibra monomodale con un diametro del campo modalità noto. La fibra deve essere sufficientemente lungo per agire come filtro modalità e tipicamente è terminato…

Representative Results

La configurazione assemblata permette all'operatore di intrappolare più oggetti rifrazione in tempo reale e posizionarli in tre dimensioni all'interno del campo di vista. Illustriamo le capacità olografiche dello strumento intrappolando 11 microsfere (Figura 2). La trappola confinare ogni oggetto è ricreare manualmente posizionato su di intrappolare in modo che la disposizione finale raffigura il logo della University of Utah, dove è stato eseguito questo esperimento. Una funzione combinata …

Discussion

Abbiamo costruito uno strumento che combina due trappole ottiche di tipo diverso (Figura 1) per fornire strutture trapping separate per manipolazione di oggetti e misura. La trappola ottica "convenzionale" è costruito intorno a un laser a diodo 980 nm. Questo fascio viene espanso, guidato e poi iniettato nel nostro microscopio invertito ("luce rossa" trave in Figura 1). La trappola ottica olografica è costruito intorno a un nm DPSS laser a 1.064. Il fascio viene es…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finanziamento è stato fornito dalla University of Utah. Vorremmo ringraziare il Dott. J. Xu (UC Merced) e il Dr. Reddy BJN (UC Irvine) per le discussioni utili.

Materials

Equipment Company Catalog Number Comments
Optical table Newport corporation ST-UT2-56-8 Irvine, CA
Microscope, Inverted, Eclipse Ti Nikon USA MEA53220 Melville, NY
Plan apo 100X oil objective (1.4 NA) Nikon USA MRD01901 Melville, NY
Oil condenser Lens 1.4 NA Nikon USA MEL41410 Melville, NY
EMCCD camera Andor technology USA Ixon DU897 South Windsor, CT
1/3″ CCD IEEE1394 camera NET USA Inc Foculus FO124SC Highland IN
Laser, TEM00, SLM, 1,064 nm wavelength Klastech Laser Technologies Senza-1064-1000 Dortmund; Germany
laser diode, TEM00, SLM, 980 nm Axcel Photonics BF-979-0300-P5A Marlborough, MA
laser diode mount ILX Lightwave LDX-3545, LDT-5525, and LDM-4984 Bozeman, MT
adjustable fiber ports Thorlabs PAF-X-11-B Newton, NJ
holographic system Arryx HOTKIT-ADV-1064 Chicago, IL
holographic mirror Boulder Non-linear Systems this is a part of HOTKIT-ADV-1064 Lafayette, CO
Calcite polarizer Thorlabs GL10-B Newton, NJ
half-wave plate Thorlabs WPH05M-1064 Newton, NJ
Polarizer rotation mount Thorlabs PRM1 Newton, NJ
half-wave plate rotation mount Thorlabs RSP1 Newton, NJ
Shutter Thorlabs SH05 Newton, NJ
dichroic mirrors (DM2 & DM3); 45° AOI Chroma Technology t750spxrxt Bellows Falls, VT
dichroic mirror (DM1); 45° AOI Thorlabs DMSP1000R Newton, NJ
custom mechanical adapter Thorlabs SM1A11 and AD12F with enlarged inner bore Newton, NJ
notch filter Semrock FF01-850/310-25 Rochester, NY
Acousto-Optic deflector (2-axis) intraAction DTD-584CA28 Bellwood, IL
goniometric stage New Focus 9081 Santa Clara, CA
60 mm steering lenses Thorlabs LA1134-B Newton, NJ
16 mm aspherical expander lens Thorlabs AC080-016-C Newton, NJ
175 mm expander lens Thorlabs LA1229-C Newton, NJ
Spot blocker (cabron-steel sphere) Bal-Tec 0.0100″ diameter Los Angeles, CA
Microspheres (Carboxyl-polystyrene) Spherotech CP-45-10 Lake Forest, IL

Referenzen

  1. Svoboda, K., Block, S. M. Biological applications of optical forces. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 23, 247-285 (1994).
  2. Ashkin, A., Schutze, K., Dziedzic, J. M., Euteneuer, U., Schliwa, M. Force generation of organelle transport measured in vivo by an infrared laser trap. Nature. 348, 346-348 (1990).
  3. Shubeita, G. T., Tran, S. L., et al. Consequences of motor copy number on the intracellular transport of kinesin-1-driven lipid droplets. Cell. 135, 1098-1107 (2008).
  4. Polin, M., Ladavac, K., Lee, S. H., Roichman, Y., Grier, D. Optimized holographic optical traps. Opt Express. 13, 5831-5845 (2005).
  5. Sun, B., Roichman, Y., Grier, D. G. Theory of holographic optical trapping. Opt. Express. 16, 15765-15776 (2008).
  6. Moffitt, J. R., Chemla, Y. R., Smith, S. B., Bustamante, C. Recent advances in optical tweezers. Annu. Rev. Biochem. 77, 205-228 (2008).
  7. Grier, D. G. A revolution in optical manipulation. Nature. 424, 810-816 (2003).
  8. Neuman, K. C., Block, S. M. Optical trapping. Rev. Sci. Instrum. 75, 2787-2809 (2004).
  9. Sheetz, M. P. Laser tweezers in cell biology. Introduction. Methods Cell Biol. 55, xi-xii (1998).
  10. Spudich, J. A., Rice, S. E., Rock, R. S., Purcell, T. J., Warrick, H. M. Optical traps to study properties of molecular motors. Cold Spring Harb. Protoc. 2011, 1305-1318 (2011).
  11. Visscher, K., Gross, S. P., Block, S. M. Construction of multiple-beam optical traps with nanometer-resolution position sensing. Selected Topics in Quantum Electronics. IEEE Journal of. 2, 1066-1076 (1996).
  12. Valentine, M. T., Guydosh, N. R., et al. Precision steering of an optical trap by electro-optic deflection. Opt Lett. 33, 599-601 (2008).
check_url/de/50481?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Butterfield, J., Hong, W., Mershon, L., Vershinin, M. Construction of a High Resolution Microscope with Conventional and Holographic Optical Trapping Capabilities. J. Vis. Exp. (74), e50481, doi:10.3791/50481 (2013).

View Video