Genetiskt kodade optogenetic verktyg gör icke-invasiv manipulation av specifika nervceller i<em> Drosophila</em> Hjärna. Sådana verktyg kan identifiera nervceller vars aktivering är tillräcklig för att framkalla eller undertrycka vissa beteenden. Här presenterar vi en metod för att aktivera Channelrhodopsin2 som uttrycks i riktade nervceller i fritt promenader flugor.
Ett växande antal genetiskt kodade verktyg blir tillgängliga som tillåter icke-invasiv manipulation av den neurala aktiviteten av specifika nervceller i Drosophila melanogaster 1. Ledande bland dessa är optogenetic verktyg, som gör det möjligt att aktivera eller tysta specifika nervceller i den intakta och fritt rörliga djur med starkt ljus. Channelrhodopsin (ChR2) är en ljusaktiverat katjon kanal som, när den aktiveras av blått ljus, orsakar depolarisation av nervceller som uttrycker den. ChR2 har varit effektivt för att identifiera neuroner kritiska för specifika beteenden, t.ex. CO 2 undvikande, snabel förlängning och jätte-fiber-medierad reaktion vid oväntade yttre 2-4. Eftersom de intensiva ljuskällor som används för att stimulera ChR2 också stimulera fotoreceptorer, har dessa optogenetic tekniker inte tidigare använts i det visuella systemet. Här kombinerar vi en optogenetic förhållningssätt med en mutation som försämrar ljusöverledningen till demonstrate att aktivering av ett kluster av vävstol känsliga nervceller i flugans optiska lob, Foma-1 neuroner, kan köra en flykt beteende för att undvika kollision. Vi använde en nollallel av en kritisk komponent i ljusöverledningen kaskad, till fosfolipas C-β, som kodas av norpA genen, göra flyger blinda och även använda Gal4-UAS transkriptionsaktivator för att driva uttryck av ChR2 i Foma-1 neuroner. Enskilda flugor placeras på en liten plattform omgiven av blå lysdioder. När lysdioderna är tända, den flyger snabbt start till flygning, på ett sätt som liknar visuellt driven vävstolen-fly beteende. Vi tror att denna teknik lätt kan anpassas för att undersöka andra beteenden i fritt rörliga flugor.
En växande arsenal av genetiskt kodade verktyg har tagits fram för att manipulera neural aktivitet i specifika celler i Drosophila melanogaster 1. Dessa verktyg möjliggör den icke-invasiv aktivering eller tysta specifika nervceller i den intakta och fritt rörliga djur. Bland dessa finns Channelrhodopsin2 (ChR2), en ljusaktiverat katjon kanal, viktiga fördelar, eftersom den kan temporärt kontrolleras och snabbt induceras. När nervceller som uttrycker ChR2 utsätts för klarblå (470 nm) ljus de snabbt depolarisera och uppvisar förhöjda bränning priser 3-5. Sådan riktad aktivering av specifika nervceller i fritt rörliga djur har visat tillräcklig särskilda nervceller för beteenden som CO 2 undvikande 3, snabel förlängning 2,4, och jätte-fiber förmedlade svar skrämmer 4. Men eftersom de intensiva ljuskällor som behövs för att stimulera ChR2 också stimulera fotoreceptorer, tillämpa optogenetic tekniker till det visuella systemet har varit begränsade. Genom att kombinera en optogenetic förhållningssätt med en mutation som försämrar ljusöverledningen har vi visat att aktivering av en specifik grupp av nervceller i flugans optiska loben kan driva fly beteende används för att undvika kollision 6.
De flesta, om inte alla, visuella djur uppvisar en flykt beteende för att undvika kollisioner med mötande objekt. Promenader eller stillastående flugor, när du presenteras med en hotande kollision, start i flykt, bort från mötande kollisionen 7-9. Dessa starter kännetecknas av upphöjda vingar före start och en instabil flygning bana 10,11. Detta svar skiljer sig från jätte-fiber-medierad reaktion vid oväntade yttre, hopp som inte föregås av upphöjda vingar, och oftast resultera i en fritt fallande tumla 4,9. Efter att ha identifierat en specifik grupp av vävstol känsliga nervceller i den optiska lob, Foma-1 neuroner, som är uniquely inställd att koda närmar föremål, försökte vi att undersöka deras deltagande i flugans Loom fly beteende. Här visar vi att använda optogenetics att selektivt aktivera dessa nervceller och framkallar flugan flykt beteende.
Vi använder Gal4-UAS transkriptionsaktivator systemet för att driva expressionen av ChR2 i Foma-1 neuroner. ChR2 kräver kofaktor all-trans-retinal och eftersom detta finns i låga nivåer i Drosophila centrala nervsystemet måste den kompletteras flugorna "kost. 3,4 Som starkt ljus används för att aktivera ChR2 och flugor uppvisar starka phototactic beteenden 12, försökte vi att eliminera möjligheten av en visuell respons till stimulansen. För att göra detta använde vi djur som var homozygot mutant för en noll-allel av norpA genen, som kodar för en kritisk komponent i ljusöverledningen kaskaden, fosfolipas C-β. Fotoreceptorer i sådana muterade flugor kan inte ansvad för ljus 13. För att testa optogenetic stimulering av flykt svar, måste vi isolera en enda fluga och bada den i starkt blått ljus. För att göra detta lägger vi individuella flugor i pipettspetsar. Ett pipettspetsen placeras i en anpassad hållare, så att flugan geotactically kommer att gå upp spetsen och ut på en rektangulär plattform. Flugan kan fritt gå runt på toppen av denna plattform. Plattformen är omgiven av fyra LED blå arrayer, vardera innehållande 3 lysdioder, fokuserade på toppen av plattformen. Efter fluga är på plattformen är lysdioderna lyser, och flugan svar registreras med hjälp av en höghastighetskamera 6.
Vi har visat optogenetic stimulering av escape beteenden genom att bada fritt gå flugor i starkt blått ljus. Detta tillvägagångssätt kan enkelt anpassas för att undersöka andra beteenden i fritt promenader flugor, och kan skalas till större plattformar genom att helt enkelt tiling LED matriser vi använde över ett större område. Med antingen billig kamera vi beskriver, eller andra tillgängliga system kamera kan användaren skräddarsy bildhastigheten och rumsliga upplösningen i bilderna som förvärva…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete har finansierats av en Stanford Dean Fellowship (SEJdV), en National Institutes of Health direktörens Pioneer Award (TRC DP0035350), en McKnight Foundation Scholar Award (TRC) och R01 EY022638 (TRC).
Reagent | |||
All-trans Retinal | Advance Scientific & Chemical Inc | R3041 | |
Equipment | |||
Heat Sink 9.2 C/W | Luxeonstar | LPD30-30B | 30 mm square X 30 mm high |
Carclo 18 ° Tri-Lens | Luxeonstar | 10507 | |
Blue Rebel LED on Tri-Star Base | Luxeonstar | MR-B0030-20T | 470 nm, 174 lm @ 700 mA. |
700 mA BuckPuck DC Driver | Luxeonstar | 3021-D-E-700 | |
Wiring Harness for BuckPuck Driver | Luxeonstar | 3021-HE | |
Pre-cut thermal adhesive tape | Luxeonstar | LXT-S-12 | 20 mm Hex Base |
Snap-Loc Coolant Hose, ¼” ID | McMaster-Carr | 5307K49 | |
Snap-Loc Coolant Hose Connector | McMaster-Carr | 5307K39 | ¼” NPT Male |
Laboratory Grade Switching Mode Programmable DC Power Supply | BK Precision | 1698 | |
Exilim camera | Casio | EX-FH20 |