感染マウスノロウイルスのリバースジェネティクスを介したリカバリ

1。 RNA転写と感染MNVの回復のためのキャッピングこのプロトコルは、in vitro転写と（セクション1.1）キャッピングin vitroでのそれに続くのを経由してcDNAから感染性のMNVの効率的な回収を可能にするために設計されています。得られたキャップの転写は、その後感染MNV（セクション1.2および1.3）を回復する細胞にトランスフェクトされています。このアプローチでは、35ミリメートル当たり10 5感染単位（直径）皿MNVのための細胞の過剰の典型的な収率でMNVの回復のための最も感度の高い方法を提供します。プロトコルは以下に詳述されています。 感染キャップMNVの転写産物の1.1合成： NHEと私は直鎖状DNAを取得するためにNHEを私がMNVゲノムの3 '末端にポリAテール（ 図2）の後にユニークな制限部位を認識します。野生型のcDNA MNV（MNV 3'RzをpT7）を含むプラスミドを消化。線状化プラスミドは一般的に精製されているシリカカラム（GEヘルスケアから、例えばGFX PCR DNAゲルのバンドの精製キット ）を使用し、H 2 Oで溶出した 試験管内で前述の17としてT7 RNAポリメラーゼを用いて線状化ベクターを書き写す。多くの市販のキットは、この目的のために利用可能であり、そのようなMEGAScript（Life Technologies）をとRiboMAX（Promega社）などのRNA合成、大量の再現可能な方法を提供します。転写反応は、通常、DNアーゼは、さらなる分析の前に消化されています。効率的にDNAを沈殿させていない下記のようにしかし、多くのインスタンスで、これは塩化リチウム精製として必要とされていません。 転写反応を効率的に働いており、RNAがフルレングスであることを確認するためにアガロースゲル電気泳動によりRNA転写反応の小アリコート、典型的には0.5μl以下を、分析します。多くのユーザーが正しくサイズRNAに変性ゲルを実行することができながら、我々は通常、非変性アガロースゲルに電気泳動を使用しRNAの整合性を分析するための迅速な方法としてESIS。などの感染性cDNAクローンをpT7から生成MNVゲノム：MNV 3'Rzは、非変性アガロースゲル（ 図3）上の二本鎖DNAラダーへの相対約3 kbpのに実行されます。 他の方法は、Agilentのbioanalyser（ 図3）を使用してなどのRNAの完全性の高速分析を得るための代替として利用可能であることを考慮してください。 あまりにも多くのRNAがロードされている場合貧しいゲルの解像度が発生する可能性があることに注意してください。アガロースゲルは、バンドの分解能に影響を与える可能性があり、電気泳動中にRNAの分解を避けるために、RNaseフリーの試薬を用いて調製されていることを確認するために細心の注意を払って。 °C、氷上で冷却し、続いて65〜RNAを加熱しても、いくつかのインスタンスに役立つ可能性があります。 取り込まれなかったヌクレオチドを​​除去するためにRNAサンプルを精製する。多くのメソッドは、このプロトコルで我々は一般的に費用対効果の高い代替物として塩化リチウムを使用するただし、これを含むシリカカラム基づくアプローチのために用意されています。のためにこの目的は、100μlの最終容量に到達するためにH 2 Oを追加した後、 塩化リチウム沈殿溶液 （7.5 M LiClを、50mMのEDTA、pH8.0で、Ambion社）40μlを追加し、少なくとも-20℃でサンプルを保存する少なくとも30分。 4で12,000 x gで遠心分離によってペレットRNA℃で15分間。 半透明のRNAペレットを乱さ、70％エタノール150μlでそれを洗浄しないように注意しながら、上清を取り除きます。 15分間、4℃で12,000 x gでチューブを遠心します。 エタノールを除去し、空気乾燥RNA、この再懸濁が困難になりますようにペレットが完全に乾燥させて避けるこ​​とができます。 その後、RNAストレージソリューション （Ambion社）の50〜100μLにMNV転写物を再懸濁します。ケアは、全てのRNAが正常に溶解しているように注意する必要があります。 RNAは完全に溶解することが困難に表示されます、60サンプルを加熱して°Cは、それを再懸濁するのに役立つ可能性があります。任意の不溶性物質は、その後Bを削除する必要があります定量化をRNAに前のy遠心分離。精製された転写産物は上限なしと感染するステップ（ScriptCapのm7G上限システム、EPICENTREバイオテクノロジー）をキャッピングin vitroでの後続を必要とします。 分光光度法によりRNAを定量化する。転写反応の性質や規模に応じて、典型的な収量は、100μlの転写反応当たりのRNAの50から150μgの範囲である。 RNAの整合性は1％アガロースゲル（ 図3）にサンプルの100から300 ngのを実行することにより、キャッピング反応する前に分析する必要があります。 キャッピングRNAの効率を改善するために、その熱60から70 65 MNV RNA転写物のμg℃で10分間とは氷の上ですぐにチューブを配置します。このステップでは、キャッピングのRNA構造の任意の阻害効果を減らすことができます。加熱工程の間に形成された液滴を収集するために冷却したマイクロチューブをパルス。 メーカー（ScriptCap m7Gによって提案されるようにキャッピング反応液を調製キャッピングシステム、EPICENTREバイオテクノロジー）。簡潔に、100μlの最終反応ボリュームにMNV RNAの60〜70μgを追加します。キャッピング反応混合物は、緩衝液（500mMのトリスpH8.0で、60mMのKClを、12.5のMgCl 2）を上限10×、10 mMのGTP、Scriptguardの20mMのS-アデノシルメチオニン、2.5μlの0.5μlの10μlの10μlを含めることができます（100単位）、およびScriptcap酵素を4μl（40単位）。 設定し、反応中に、劣化を防ぐため、氷の上でRNA転写物を保持します。よく、反応混合物を混合し、その後1時間37℃で反応させる。反応の大きさが必要なキャップ転写産物の量に応じてスケーリングされる場合があります。 前述したようにLiClを沈殿によりRNAを精製し（ポイント1.1.6を参照）。 RNAストレージソリューション（Ambion社）の50〜100μlにペレットを溶解し、RNAの量を定量化する。一般的に、RNAサンプルは、その後の1μg/μlに正規化されます。再び、全てのRNAが正常に溶解したことを確認します。それが適切に溶解されていない場合は、熱トン彼サンプル60°Cまで解散を許可する。遠心分離して定量化をRNAに前に不溶性物質を除去します。 トランスフェクションの手順に進む前に、再びRNAの整合性をチェックします。この目的のために、1％アガロースゲル（ 図3）にサンプルの100から300 ngの量を実行します。 RAW264.7細胞へのRNAのネオン媒介トランスフェクション1.2重量​​リカバリ： 許容細胞ラインのMNV感染性ウイルス粒子を回収するための、それはネオントランスフェクションシステム （Invitrogen）を用いてRAW264.7細胞に覆われたMNV転写産物をエレクトロポすることが可能です。 RAW264.7は、ウイルスの複製とその後の再感染の複数のラウンドをサポートし、MNV感染に感受性細胞である。その結果、典型的な収量は48時間後に> 10 7感染単位で24時間トランスフェクション後がピーク時にはmlあたり10 5感染単位の過剰に近づきます。 トランジスタ前日sfection、コンフルエントの推定50％の種子RAW264.7細胞。一般的に細胞の2 T75フラスコは3トランスフェクションに必要とされる。 トランスフェクションの日は、あなたが繰り返しピペッティングによって単一細胞懸濁液を生成確保、10％ウシ胎児血清（FCS）を含むダ​​ルベッコ改変イーグル培地（DMEM）に細胞単層をこすり。 非生細胞を標識するためにトリパンブルー排除を用いてhaemocytometerで生細胞の濃度を決定します。 ペレットを5分間1,200×gで細胞やDMEMは8×10 6細胞/ mlの最終濃度で10％FCSを含む再懸濁します。 トランスフェクション、2分間トランスフェクション、1,200 X gでペレットそれら当たり細胞のアリコート1ミリリットルの直前に。メディアを取り出し、PBS 500μlの（のMg 2 + / Ca 2 +を除く）で細胞を洗浄する。 2分間1200×gで再び細胞をスピンダウンする。それはできるだけ長くのためにDMEM中で細胞を維持することをお勧めであることに注意してください長時間のPBS中のストレージとして細胞の生存およびトランスフェクション率を損なうことがあります。 チューブからPBSを除去し、6×10 7細胞/ mlの最終濃度に再懸濁液を130μL（ネオントランスフェクション·システム·キット 、Invitrogen）を追加します。ケアは、トランスフェクションと妥協の細胞生存率の間にスパークが発生します気泡の形成を回避するため、細胞を再懸濁に注意する必要があります。 一般に、細胞（ 図2）、キャップRNAの1.3μgのキャップMNV転写産物の適切な量を追加すると、懸濁している細胞の130μlに添加し、穏やかに混合されています。その後、100μlのネオントランスフェクションの先端で混合物100μlを収集します。これは実験の失敗の原因になりますように特別な注意がない気泡がエレクトロポレーションキュベット（ ネオントランスフェクション·システム·キット100μlの先端）で形成されないように注意する必要があります。 25ミリ秒、専用のために1,700 Vの単一パルスを用いて細胞をエレクトロポサンプル中の気泡の存在が示されているパルスの間に火花が存在しないことをジューリング。スパークケースが発生した場合には、サンプルを破棄し、トランスフェクションを繰り返します。抗生物質を含まないDMEM、10％FCSを含む1 mlを含むエッペンドルフチュー​​ブに細胞を解放します。トランスフェクトした細胞の大きい番号が必要な場合は、各チップが同一のRNAサンプルで3回まで再利用することができます。 その後、10％FCSを含む温め抗生物質を含まないDMEM、適切な量を含む独立したウェルにチューブからの細胞を配布しています。 300μlの12皿プレートのウェルに適切であるのに対し、一般的なガイダンスとして、ステップ1.2.8中に生成された細胞懸濁液150μlのは、温めたDMEM 0.5 mlを含む24皿プレートの単一ウェルのに十分である温めたDMEM 1mlを含む。 24〜72時間37℃、10％CO 2で細胞をインキュベートします。その後、1（またはそれ以上）によって細胞から感染性ウイルス粒子を放出凍結と融解とプラークアッセイまたはTCID50のいずれかを使用して、サンプル中のウイルス力価を決定します。ライセートを最高速度で、または、その前の滴定に0.22μmの孔径フィルターを通して濾過することにより1〜2分間遠心分離して明確にすべきであることに注意してください。通常は、MNVは、最大1×10 9から72時間後にトランスフェクション時の約1×10 6〜24時間後にトランスフェクション時のTCID50/mlとの力価に達しています。 をpT7に導入された変異の存在と安定性：MNVの3'Rzは、通常、RAW264.7細胞において2から5の追加継代後救出、ウイルスをシーケンシングによって決定されます。 BHK-21細胞にリポフェクション法により1.3回復： キャップの転写産物から感染MNVの回復のためのより直接的かつ頻繁に、よりコスト効果的な方法は、リポフェクション（ リポフェクタミン2000、インビトロジェン社製）を使用することです。 RAW264.7細胞は我々が正常にOTHを利用して脂質ベースのアプローチを使用してトランスフェクションが困難であることを考えるとERベビーハムスター腎線維芽細胞由来不死化ラインであるようなBHK-21などの細胞株をトランスフェクトしやすい。これらの細胞がMNVの複製をトランスフェクションとサポートが容易である一方で、彼らは適切な受容体を欠いているとして、我々の研究室で標準的なアプローチとして、我々はできるように、BSR-T7細胞、BHK-21細胞株の誘導体を使用し、再感染のいくつかのラウンド。その結果、このシステムから生成されたウイルスの収率は、ウイルス複製の単一サイクルの指標である。それは、複数のトランスフェクションは、ネオン媒介トランスフェクションに比べて大幅にコスト削減で実行することができ、また、専門的な機器を必要としないウイルス回収の突然変異の効果を調べるときにこのアプローチが特に有用である。そのようなヒト胚性腎臓293T細胞のような他の容易に利用可能な細胞株はまた、最初の効率的なRNAの配信を保証するために最適化する必要がありますMNVただし、トランスフェクション条件の効率的な回復をサポートしていることは注目に値します。 トリプシンISE BHK-21細胞（またはBSR-T7細胞）、シード7.5×10 5、抗生物質フリー増殖培地で35 mm径のディッシュに細胞と2泊、10％CO、37℃で細胞をインキュベートします。の単分子層トランスフェクションは、播種と同じ日に予定されている場合は、各プレートに細胞の量を倍増し、細胞が10％CO 2で37℃で2-3時間のためにプレートに付着することができます。このアプローチに適した他の細胞がヒト293T細胞、ヒト肝細胞癌Huh7細胞とアフリカミドリザルCOS7細胞を含むことに注意してください。 細胞から培地を除去し、トランスフェクションの最大効率を確保するために抗生物質を含まない新鮮な培地3mlで置き換えます。 のOpti-MEM（Invitrogen社製）100μlの中にキャップMNV転写産物の1〜2μgの混合物を準備し、以前のOpti-MEM100μlに混合リポフェクタミン20004μlのとそれを混ぜる。上下に15回、それをピペッティングにより完全にサンプルを混ぜる。残す20分間室温で混合。 細胞単層に滴下方式でキャップMNVの転写産物を含むトランスフェクション複合体を加え、穏やかに垂直方向の板を横に振る。 24〜72時間37℃、10％CO 2で細胞をインキュベートします。その後、凍結により細胞から感染性ウイルス粒子を解放し、解凍し、プラークアッセイまたはTCID50によるウイルス力価を決定します。約1×10 6 TCID50/mlの典型的な収率が達成されました。 2。 T7 RNAポリメラーゼを発現する細胞のcDNAから感染MNVの直接回収このプロトコルは、感染プラスミド宿る細胞内で発現T7ポリメラーゼによる完全なゲノムのcDNA配列の転写によって細胞内でMNVの回復を可能にするために設計されています。我々は通常、BHK-21およびBSR-T7 CEで最高の収率を得るが、異なる細胞株は、このアプローチによって感染MNVを回復するために使用することができますLLS 15。彼らは親のBHKクローンラインよりも早く成長するので、我々は一般的にBSR-T7細胞を使用しています。細胞はウイルスRNAと感染性ウイルスを回収する（ 図4）の発現を駆動するためにヘルパーウイルスとして機能するT7 RNAポリメラーゼ（FPV-T7）18鶏痘（FPV）エンコーディングに感染しています。恒常的にBSR-T7の細胞はT7 RNAポリメラーゼが、この式はをpT7のトランスフェクションの後に感染MNVを救出するのに十分ではありません。ヘルパーFPV-T7の不在下でMNV 3'Rz。このシステムからの典型的な利回りは上記のものより少なくとも10倍低くなっていながら、このアプローチでは、衰弱させる変異の同定を可能にする変異体をスクリーニングする迅速な方法を提供しません。通常、このメソッドは、cDNA構築物の生存率を評価するために最初に使用されます。その後、感染性ウイルスを生産するために失敗するか、または野生型感染性クローンのそれより低いレベルでウイルスを得るように見えるのいずれかのRNAベースのapproaを構築する必要があります上記のchは行われています。 抗生物質フリー増殖培地で35 mmディッシュにBHK-21細胞（またはBSR-T7細胞）とシード7.5×10 5細胞の単層をTrypsinise℃と10％CO 2で一晩37℃で細胞をインキュベートします。トランスフェクションは、播種と同じ日に予定されている場合は、各プレートに細胞の量を倍に追加し、細胞は37℃で2-3時間のためにプレートに付着することができ℃、10％CO 2。 細胞培養培地を除去し、（ 図4）を各ウェルにFPV-T7 700μlを加える。主なニワトリ胚線維芽細胞上に滴定に基づいて、セル当たり約0.5 PFUの感染多重度（MOI）は、一般的に使用されています。しかし、それは主要な線維芽細胞で増殖させたヘルパーウイルスの新しい製剤は、機能的に効率的なウイルス·リカバリに必要な用量を決定するために滴定されていることは注目に値する。 FPV-T7の伝播と滴定のためのプロトコルは、以前18に記載されている。 で37℃で細胞に感染するFPV-T7を可能にするために1時間°C、10％CO 2を cubate。その後、抗生物質を含まないDMEM 2 mlの10％FCSを含有し、T7 RNAポリメラーゼの発現を可能にするために°C、10％CO 2で37さらに1時間細胞をインキュベートを追加します。 感染性プラスミドのトランスフェクションを続行するには、まず感染した細胞からメディアを削除するには、メディアの2ミリリットル（抗生物質を含まないDMEMに10％FCS）で洗浄し、最後にメディアの3mlで細胞単層をカバーしています。彼らはリポフェクトアミン2000（Invitrogen）の効率を妨げる可能性があるので抗生物質は、培地に添加すべきではありません。 以前は100μlと混合のOpti-MEM100μlの（Invitrogen社）とリポフェクタミン2000の4液（Invitrogen社製）を混ぜ：野生型のcDNA MNV感染プラスミド1μgの（MNV 3'RzなどをpT7）のミックスを調製するOPTI-MEM（Invitrogen社）。上下に15回、それをピペッティングにより完全に反応を混合し、室温テンペでミックスを維持する20分間気温の上昇下降。 その結果、トランスフェクションミックスを細胞単層とプレートに滴下すべきである静かに垂直方向に振とうしなければなりません。 37 FPV-T7感染、MNVプラスミドトランスフェクトした細胞をインキュベート°Cおよび10％24〜72時間CO 2。感染プラスミドをpT7でトランスフェクションした細胞：MNV 3'Rzは、通常1×10 4〜5×10 4 TCID50/mlから力価をレンダリングします。 3。代表的な結果 図5に示すように両方の逆遺伝学的ア ​​プローチは、細胞培養における感染MNVの回復のための非常に効率的です。 10 5 TCID50/mlを超える抗体価と感染MNVは、RAW264.7細胞に覆われたMNV RNAのトランスフェクション後24時間で回収されています。同様に、感染プラスミドをpT7のトランスフェクション：以前にヘルパーFPVに感染してBSR-T7細胞にMNV 3'Rzは、ウイルスの力価につながっT7（FPV-T7）は、主にexcee表現する鼎10 4 TCID50/ml（ 図5）。合成RNAとDNA分子を用いて得られたこれらのウイルス力価の値が同じセル（ 図5）に感染性ビリオンから単離された天然のVPG-結合型RNAを含むトランスフェクションで得られたものと似ています。これらの結果は、細胞培養で遺伝的に定義されているMNVバリアントを回復するためにここで説明する逆遺伝学的アプローチの高効率を強調表示します。 図1。 MNVゲノムおよび感染性ウイルスの回収のためのプラスミドのイラスト。MNVゲノム組織の、模式図。それぞれのタンパク質コーディング領域は、単一の白いボックスとして示されている。 ORF1は自己タンパク質分解処理後の前駆体ポリタンパク質から放出される7種類の非構造タンパク質（NS1 / 2〜NS7）に変換されます。 ORF 2は、主要キャプシドタンパク質VP1、ORF 3はマイナーキャップをエンコードするエンコードsidの蛋白質VP2、およびORF2コーディング領域と重なってORF4は、病原因子VF1をエンコードします。ゲノムおよびサブゲノムRNAは、可変長の彼らの3 '末端にポリAテールを含まれています。 B、​​私たちの逆遺伝学的アプローチ（をpT7：MNV 3'Rz）で使用されるcDNAを含むプラスミドMNV。 cDNAをMNVは、その3 '末端の26残基のポリA尾部に融合されています。 MNVのcDNA配列はT7駆動型の転写を可能にするために、切り捨てられたT7プロモーター配列のすぐ下流に位置し、上流のユニークなNHE私のサイトとそのあと自己切断リボザイムをコードするDNA配列である。これらの配列は、右の3 '末端に存在するゲノムのポリAテールの後のRNA転写終結を確保するための手段です。 図2。 in vitroで転写し、キャッピングRNAから感染MNVの回復のためのプロトコルの概要プラスミドをpT7：MNV 3'Rzがすぐ下流に直線化されていNHE I制限酵素（ステップ1）を使用して、MNVゲノム配列の。 DNA精製後、MNV RNA転写物は、T7 RNAポリメラーゼ（ステップ2）を用いてin vitroで生成されます。転写産物は、通常、非変性1％アガロースゲル（ステップ3では、 図3）2.5 3KBの見かけの移動度で実行されます。テンプレートDNAは市販のRNase-free DNaseを用いて除去されます。 RNAは、その後、LiCl沈殿（ステップ4）で遊離ヌクレオチドから精製される。精製したRNA産物はin vitro でかもしれません以前は65℃に加熱された後、蓋を°C二次RNA構造を（ステップ5-6）展開します。 LiCl沈殿による精製の ​​後、RNAはRAW264.7細胞（ ネオントランスフェクションシステム 、Invitrogen社）やBSR-T7細胞（ リポフェクタミン2000、インビトロジェン社製）（ステップ7-8）のいずれかにトランスフェクトされる。一度細胞内で、キャップRNA転写物は、新しいMNV RNA分子へのウイルスの転写複製を触媒するだろうウイルスタンパク質に翻訳されます。それらの5 '末端で適切なVPG分子を含む。ウイルスの翻訳を伴う複製の連続した​​サイクルが感染性ウイルス粒子を生成するために包まれるウイルスゲノムの大規模な番号を生成します。細胞からのウイルスの放出を容易にするために、凍結融解のいずれかまたはいくつかのサイクル（ステップ9）実行されます。ウイルスの収率は、その後、TCID50またはプラークアッセイ手順により決定することができる。 図3。プロトコルに沿ってMNV RNA転写物の整合性の分析は。MNV RNAの、整合性は 、in vitro で合成した。プラスミドをpT7：MNV 3'Rzは、まずNHE I制限酵素を用いて直線化されています。 DNA精製後、MNV RNA転写物は、T7 RNAポリメラーゼ（レーン2）を用いてin vitroで生成されます。 RNAは、その後purifiです。 LiCl沈殿（レーン3）によって遊離ヌクレオチドからED。転写産物は、1 KBのDNAラダー（New England Biolabs社、レーン1）と平行に非変性1％アガロースゲル上で実行されます。非変性条件下でのウイルス転写物の相対移動度は2.5から3 KBの二本鎖DNAの製品に似ています。 B、​​キャッピング後のMNV RNA転写物の整合性。 LiCl沈殿（レーン2）で以前に精製したMNVの転写産物は、酵素キャッピング（レーン3）、LiCl沈殿（レーン4）によって精製に供されています。 C、MNVの転写産物（第二車線）と以前にLiClを中に沈殿されたキャップMNV転写（第三車線） の Agilent RNA 6000ナノチップの解析。 ssRNAラダーは並列に実行されます。 = "pdflinebreak"> 図4。 cDNAからの感染MNVの回復のためのプロトコルの概要を説明します。当初、BSR-T7（またはBHK）細胞は、バクテリオファージT7 RNAポリメラーゼ（FPV-T7）（ステップ1）を発現する組換え鶏痘ウイルス（FPV）に感染しています。感染した細胞は、組換えT7 RNAポリメラーゼ（ステップ2）を含むFPVタンパク質の発現を可能にするために更なる処理の前に2時間インキュベートされています。その後、をpT7：MNV 3'Rzはリポフェクトアミン2000（Invitrogen）を（ステップ3）を用いて細胞にトランスフェクトされています。一度セルをpT7内側：MNV 3'RzがMNV RNA転写産物（ステップ4）をつくり出すT7 RNAポリメラーゼによって認識されている。ゲノムの3 '末端における自己切断δ-リボザイム配列の存在は、転写産物の3' tを保証erminusはちょうどポリAテール（ステップ5）の後に位置しています。いくつかのウイルスの転写産物が細胞内にFPVキャッピング酵素（ステップ6）でおおわれています。結果MNVキャップ転写産物がMNV転写複製を触媒するだろうMNVのタンパク質を生成するために変換されます。それらの5 '末端で適切なVPG分子を含む新たに合成されたMNV RNA分子は、最終的に伝染性ウイルスのカプシド世代になることがあり、ウイルスの翻訳に伴う複製の連続した​​サイクルを受けるだろう。細胞からのウイルスの放出を容易にするために、凍結融解のいずれかまたはいくつかのサイクル（ステップ7）実行されます。ウイルスの収率は、その後、TCID50またはプラークアッセイ手順により決定することができる。 図5テキストで説明されているさまざまな逆遺伝学のアプローチから得られたウイルス力価の代表的な結果。グレーバーはネオン後24時間で得られたウイルスの力価を表す2×10 6 RAW264.7細胞、または後のトランスフェクション、in vitroで転写し、キャップMNV RNAを用いた2×10 6 BSR-T7細胞のリポフェクション。以前に組換えT7ポリメラーゼ（FPV-T7）を発現する鶏痘ウイルスで2時間感染させ、2×10 6 BSR-T7細胞にMNV 3'Rz（MNVのcDNA）：白いバーは、通常、pT7などのリポフェクション後に得られたウイルスの力価を表しています。生とBSR-T7cellsにトランスフェクションのためのポジティブコントロールとして、我々は一般的にVPG架橋MNV RNAのハイレベルを含むMNVに感染した細胞から抽出したRNA2μgのを使用しています。ネガティブコントロールは、MNV RNAまたはpT7などのいずれかで実施されています：MNV 3'Rzは、検出可能なウイルス（データは示さず）、その結果、レプリケーションをabrogatesフレームシフト変異（F / S）をコードする。