使用Luminex公司的xMAP微球技术,我们开发了复用荧光免疫法(MFIA)为血清学监测各种实验室动物物种的。 MFIA是抗原,组织控制或免疫球蛋白共价连接到颜色编码的聚苯乙烯微球的悬浮液微阵列。解决MFIA测试方法以及各种疑难排解主题。
为了确保质量,在生物医学研究中使用的动物模型,我们开发了大量的诊断测试策略和方法来确定,如果动物被暴露在偶然的传染性病原体(如病毒,支原体和其他挑剔的微生物)。感染免疫功能的动物通常是短暂的,但常常可以检测到数天至数周之内血清抗体反应,感染和坚持的整个生命周期的主机。血清学检查是主要的诊断方法,实验室动物进行监控。间接酶联免疫吸附试验(ELISA)在历史上一直是主要的筛选方法为血清学监测。作为单重进行的ELISA,其中微生物的抗原 – 抗体反应测定,每。比较MFIA进行作为一个复用的测定。由于微球有100个不同的颜色集,可以进行多达100种不同的检测simultaneously在一个单一的微孔板。这种创新降低血清,试剂和一次性用品的例行测试,同时增加的量,获得的信息以及从一个单一的测试所需的量。此外,我们还可以将多个内部控制珠,以确认样品与系统适用性,从而保证结果的准确性。这些措施包括组织控制和IgG抗体检验血清种免疫球蛋白(αIg)的镀膜珠集,以评估样品的适用性。在ELISA和IFA,组织控制检测到的非特异性结合的血清免疫球蛋白。 (血清对照)αIg控制证实,血清已被添加并包含足够的IgG控制系统适应性控制(珠),涂有血清种免疫球蛋白,免疫球蛋白浓度,同时表明,标记试剂和Luminex阅读器是否正常工作。
MFIA测试过程中是高效率,需要更少的设备和更小的体积比传统的单重测试样品和试剂。的多路传输系统的功能,为用户提供了灵活性,屏幕上同时多株或血清型的实验室啮齿动物(例如冠状病毒,细小病毒等)的共同代理。这也使得我们,感兴趣的区域(即特定的病毒家族)的基础上设计定制的胎圈板,是适应其他类型的生物分子,包括细胞因子和其他生物标志物筛选。此外,它允许我们将内部控制的实验来验证样品与系统适用性,从而保证结果的准确性。这些措施包括组织控制和IgG抗体检验血清种免疫球蛋白(αIg)的镀膜珠集,以评估样品的适用性。一个组织控制磁珠检测的非特异性结合的血清免疫球蛋白和αIg珠控制确认该血清已被添加并含有足够的免疫球蛋白浓度。种免疫球蛋白血清,另一个控制珠,涂表明,标记的试剂和检测器的正常工作。其他市售的多重格式的血清学检测(即芯片,ImmunoComb)可能无法提供同一级别的结果确认。
的能力,缩小的可能来源分析失败之前重新测试可以帮助研究者节省时间和材料。关键方面的MFIA的,应确认之前重复不合格的样本。由于在环境温度下进行测定,应验证,实验室的温度是约27℃±2℃,较高的温度可导致比对照和样品的预期分数降低。洗衣机也许是最关键的一步检测。保险试验板正确洗涤,吸干,并再悬浮可以消除由于低胎圈计数(由于凝集珠)或添加试剂不足(丢失通过排汗满分试验板过滤器底部)的抽样误差绝大多数。我们经常在数法(代理人)25珠,并没有发现任何统计学上的差异,结果计数较高的珠子,这也将导致一个较长的读取时间为板。
我们已经进行了全面的验证研究MFIA数种,常用的实验动物(小鼠,大鼠,仓鼠,豚鼠和兔)证明诊断的准确度,重复性和耐用性测试大量已知阳性和阴性血清样品,并比较其ELISA,IFA和MFIA结果的。的检出限(即,标准血清免疫滴定终点)MFIA相媲美,而且在某些情况下,超越,那些相应的ELISA。测量SPF啮齿类动物血清,诊断的特异性,超过99%的整体通信betweeŇELISA和MFIA已知的阳性和已知的阴性血清进行大于95%。总之,这些结果证明,多路MFIA是一个很好的替代单一ELISA,是适合其用途,即在常规的血清学监测实验室动物的殖民地。
The authors have nothing to disclose.
研究提出支持的查尔斯河。