Summary

Neuroblast Test: Akım Sitometri Kullanımı Farklılaşan Nöral Kök Hücre Döl nöronal Progenitör Hücrelerinin üretilmesi ve zenginleştirilmesi için bir Testi

Published: April 22, 2012
doi:

Summary

Bu video protokolü akış sitometrisi teknolojisi kullanılarak fiziksel (boyutu ve iç boyu) ve floresan özelliklerine bağlı olarak kök sinir hücrelerini yenilenebilir bir kaynaktan (NSC'lerde) den nöronal progenitör hücre üretimi ve daha sonra saflaştırma için yeni bir yöntem gösterilmektedir.

Abstract

Nöral kök hücreler (NSC'lerde) izole ve genişletilebilir büyük ölçekli, neurosphere testi kullanılarak ve merkezi sinir sistemi (MSS) üç ana hücre tiplerine diferansiye; yani, astrositler, oligodendrosit ve nöronlar. Bu özellikler nöral kök ve progenitör hücreler, uyuşturucu taraması, neurotoxicology ve elektrofizyoloji gibi in vitro çalışmalar ve birçok nörolojik hastalıklarda hücre replasman tedavisi için kullanılması için hücre paha biçilmez bir yenilenebilir kaynak haline getiriyor. Ancak pratikte, MGK döl, nöronlar ve oligodendrosit düşük üretim ve farklılaşma klinik uygulamaları sınırlamak takip astrositlerin baskın heterojen. Burada, floresans aktive hücre ayırma (FACS) teknolojisi kullanılarak mürin NSC soyu ile olgunlaşmamış nöronların kuşak ve sonraki temizleme için yeni bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yöntemi kullanarak, zenginleştirilmiş nöronal progenitör hücre popülasyonu zekâ elde edilebilirherhangi bir fark astrosit ve iyi niyetli MGK kirlenme olduğu görüldü. Prosedürü MGK döl izole ve akım sitometri teknolojisini kullanarak fiziksel (boyut ve iç karmaşıklık) ve floresan özelliklerine göre olgunlaşmamış nöronal hücrelerin izolasyonu ve zenginleşmesi ile takip neurosphere testi kullanılarak E14 fare ganglionik tubera, genişletilmiş farklılaşma içerir. Genel olarak, MGK döl ayırt etmek neurospheres ve 6-8 gün üretmek için 5-7 gün sürer ve çok olgunlaşmamış nöronal hücrelerin saf izole.

Protocol

1. Temel Hücre Kültürü ile Devam Etmeden Önce Kurma NeuroCult NSC Bazal Orta ve NeuroCult NSC Proliferation Takviyeler tam NSC orta yapmak için, sırası ile, 9:1 oranında karıştırılmaktadır. Bir 37 ° C'de su banyosu orta ısınması için kullanılır. Isıyla inaktive fetal buzağı serumu (FCS), uygun miktarda çözdürüldü. Epidermal büyüme faktörü (10 mcg / ml EGF), temel fibroblast büyüme faktörü (10 mcg / ml b-FGF) ve fosfat% 0.2 heparin solüsyo…

Discussion

Tanımlanan sinir hücre popülasyonu izole yeteneği (yani nöron, astrositler ve oligodendrosit) nöral kök hücrelerin klinik uygulama (NSC'lerde) ile ilişkili bazı engelleri çözebilir. İlk olarak, tamamen donör hücrelerinin başlangıç ​​nüfusu karakterize mümkün kılmaktadır. İkincisi, bizim hastalığın doğasına ve aşama bağlı olarak, belirli bir oranı ile, belirli bir hücre tipinde ya da farklı hücre tipleri bir kombinasyonunu kullanmak için olanak sağlar. Son olarak, zenginleşt…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma Overstreet Vakfı'nın fon tarafından desteklenmiştir.

Materials

Name of the reagent Typ Company Catalogue number Comments
NeuroCult NSC Basal Medium Medium Stem Cell Technologies 05700  
NeuroCult NSC Proliferation Supplements Medium supplement Stem Cell Technologies 05701  
%0.05    trypsin-EDTA Reagent Gibco 25300-062  
Soybean trypsin inhibitor Reagent Sigma T6522  
Pen/Strep Reagent Gibco 15140-122  
*MEM Reagent Gibco 41500-018 HEM component
*HEPES Reagent Sigma H4034 HEM component
*Distilled water Reagent Gibco 15230-147  
Cell strainer Sieve BD Falcon 352340  
T25 flask Culture ware Nalge Nunc international 136196  
T80 flask Culture ware Nalge Nunc international 178905  
15 ml tubes Culture ware BD Falcon 352096  
50 ml tubes Culture ware BD Falcon 352070  
EGF Growth factor R&D 2028-EG  
b-FGF Growth factor R&D 3139-FB  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
Anti-PSA-NCAM-PE Antibody Miltenyi Biotec 130-093-274  
PE- Conjugated mouse IgG1 Isotype control antibody BD Pharminogen 556029  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
HrBMP-4 Growth factor R&D 314-BP-010  
Poly-L-Ornithine Reagent Sigma P4957  
Fetal Calf Serum Medium Supplement Gibco 10099-141  
GFAP Antibody DAKO Z0334  
B-III tubulin Antibody Promega G7121  

*To make HEM, mix 1 x 10 L packet of MEM and 160 ml of 1M HEPES and bring the volume to 8.75 L using distilled water. Set the final PH to 7.4 and store it at 4 °C.

Referenzen

  1. Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (45), e2393 (2010).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Rahman, M., Ansari, S., Reynolds, B. Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (47), e2457 (2011).
  3. Siebzehnrubl, F. A., Vedam-Mai, V., Azari, H., Reynolds, B. A., Deleyrolle, L. P. Isolation and Characterization of Adult Neural Stem Cells. Methods. Mol. Biol. 750, 61-77 (2011).
  4. Scheffler, B. Phenotypic and functional characterization of adult brain neuropoiesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 9353-9358 (2005).
  5. Azari, H. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS One. 6, e20941-e20941 (2011).
  6. Amariglio, N. Donor-Derived Brain Tumor Following Neural Stem Cell Transplantation in an Ataxia Telangiectasia Patient. Plos Medicine. 6, 221-231 (2009).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. The Neuroblast Assay: An Assay for the Generation and Enrichment of Neuronal Progenitor Cells from Differentiating Neural Stem Cell Progeny Using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (62), e3712, doi:10.3791/3712 (2012).

View Video