Summary

الفحص Neuroblast: والفحص للانشاء وإثراء خلايا متعلق بالخلايا العصبية السلف من التفريق العصبية الجذعية آله الخلية باستخدام التدفق الخلوي

Published: April 22, 2012
doi:

Summary

هذا البروتوكول الفيديو يشرح طريقة جديدة لتوليد وتنقية لاحق من الخلايا العصبية السلف من مصدر متجدد للخلايا الجذعية العصبية (NSCs) على أساس (الحبوبية حجم والداخلية) والخصائص الجسدية فلوري باستخدام تكنولوجيا تدفق الخلوي.

Abstract

يمكن عزل الخلايا الجذعية العصبية (NSCs)، وتوسعت في نطاق واسع، وذلك باستخدام الفحص neurosphere ومتباينة إلى ثلاثة أنواع رئيسية من خلايا الجهاز العصبي المركزي (CNS)، وهي الخلايا النجمية، oligodendrocytes والخلايا العصبية. هذه الخصائص تجعل الجذعية العصبية والخلايا الاولية مصدرا قيما قابلة للتجديد الخلايا للدراسات في المختبر مثل فحص المخدرات، neurotoxicology والكهربية، وكذلك لعلاج استبدال الخلية في العديد من الأمراض العصبية. في الممارسة العملية، ومع ذلك، عدم تجانس ذرية مجلس الأمن القومي، وإنتاج منخفض من الخلايا العصبية وoligodendrocytes، وغلبة تمايز الخلايا النجمية بعد تحد تطبيقاتها السريرية. هنا، نحن تصف منهجية جديدة لتنقية جيل لاحق من الخلايا العصبية وغير ناضج من ذرية NSC الفئران باستخدام مضان الفرز الخلية تفعيلها (FACS) التكنولوجيا. باستخدام هذه المنهجية، يمكن التوصل الى التخصيب الخلية العصبية سلف سكان خفة دمالحوت أي نجمية ملحوظ وبحسن نية تلوث مجلس الأمن القومي. الإجراء يشمل التفريق بين ذرية معزولة وتوسيع مجلس الأمن القومي من eminences الماوس E14 العقدية باستخدام مقايسة neurosphere، تليها العزلة وإثراء غير ناضج الخلايا العصبية على أساس خصائصها الفيزيائية (الحجم والتعقيد الداخلية) وفلوري باستخدام تكنولوجيا تدفق الخلوي. وعموما، يستغرق 5-7 أيام لتوليد neurospheres و 6-8 أيام في التفريق NSC ذرية وعزل عالي النقاء الخلايا العصبية غير ناضج.

Protocol

1. مجموعة أساسية حتى قبل الشروع في زراعة الخلايا يتم خلط NeuroCult NSC متوسطة القاعدية وNeuroCult ملاحق مجلس الأمن القومي انتشار الأسلحة النووية في نسبة 9:1، على التوالي، إلى جعل مجلس الأمن القومي الشامل المتوسطة. <li style=";text-align:…

Discussion

قد القدرة على عزل تعريف السكان الخلايا العصبية (العصبونات، أي الخلايا النجمية وoligodendrocytes) حل بعض العقبات المرتبطة التطبيق السريري من الخلايا الجذعية العصبية (NSCs). الأول، أنه يساعدنا على وصف كامل للسكان بدءا من الخلايا المانحة. الثانية، لأنها تتيح لنا استخدام نوع خلية…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من خلال تمويل من مؤسسة Overstreet.

Materials

Name of the reagent Typ Company Catalogue number Comments
NeuroCult NSC Basal Medium Medium Stem Cell Technologies 05700  
NeuroCult NSC Proliferation Supplements Medium supplement Stem Cell Technologies 05701  
%0.05    trypsin-EDTA Reagent Gibco 25300-062  
Soybean trypsin inhibitor Reagent Sigma T6522  
Pen/Strep Reagent Gibco 15140-122  
*MEM Reagent Gibco 41500-018 HEM component
*HEPES Reagent Sigma H4034 HEM component
*Distilled water Reagent Gibco 15230-147  
Cell strainer Sieve BD Falcon 352340  
T25 flask Culture ware Nalge Nunc international 136196  
T80 flask Culture ware Nalge Nunc international 178905  
15 ml tubes Culture ware BD Falcon 352096  
50 ml tubes Culture ware BD Falcon 352070  
EGF Growth factor R&D 2028-EG  
b-FGF Growth factor R&D 3139-FB  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
Anti-PSA-NCAM-PE Antibody Miltenyi Biotec 130-093-274  
PE- Conjugated mouse IgG1 Isotype control antibody BD Pharminogen 556029  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
HrBMP-4 Growth factor R&D 314-BP-010  
Poly-L-Ornithine Reagent Sigma P4957  
Fetal Calf Serum Medium Supplement Gibco 10099-141  
GFAP Antibody DAKO Z0334  
B-III tubulin Antibody Promega G7121  

*To make HEM, mix 1 x 10 L packet of MEM and 160 ml of 1M HEPES and bring the volume to 8.75 L using distilled water. Set the final PH to 7.4 and store it at 4 °C.

Referenzen

  1. Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (45), e2393 (2010).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Rahman, M., Ansari, S., Reynolds, B. Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (47), e2457 (2011).
  3. Siebzehnrubl, F. A., Vedam-Mai, V., Azari, H., Reynolds, B. A., Deleyrolle, L. P. Isolation and Characterization of Adult Neural Stem Cells. Methods. Mol. Biol. 750, 61-77 (2011).
  4. Scheffler, B. Phenotypic and functional characterization of adult brain neuropoiesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 9353-9358 (2005).
  5. Azari, H. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS One. 6, e20941-e20941 (2011).
  6. Amariglio, N. Donor-Derived Brain Tumor Following Neural Stem Cell Transplantation in an Ataxia Telangiectasia Patient. Plos Medicine. 6, 221-231 (2009).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. The Neuroblast Assay: An Assay for the Generation and Enrichment of Neuronal Progenitor Cells from Differentiating Neural Stem Cell Progeny Using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (62), e3712, doi:10.3791/3712 (2012).

View Video