Cirugía estereotáctica de roedores y mejoras del bienestar de los animales de resultados para la revista Behavioral Neuroscience
Summary
Cirugía estereotáxica en roedores permite la administración dirigida de fármacos o estimulación eléctrica y las grabaciones en despertar, comportándose animales. En este video de presentación que mostrará los últimos refinamientos de procedimiento para este procedimiento desde hace mucho tiempo que la tasa de éxito mejora la supervivencia y reduce post-quirúrgico de pérdida de peso.
Abstract
Cirugía estereotáxica para la implantación de cánulas en regiones específicas del cerebro durante muchas décadas ha sido una técnica experimental muy exitoso para investigar los efectos de los neurotransmisores a nivel local manipulado y vías de señalización en animales despiertos, de comportarse. Por otra parte, la implantación estereotáxica de electrodos para la estimulación electrofisiológica y estudios de grabación ha sido fundamental para nuestra comprensión actual de la neuroplasticidad del cerebro y las redes de comportarse animales. Conocimiento cada vez mayor sobre la optimización de las técnicas quirúrgicas en los roedores 1-4, sensibilización del público sobre temas de bienestar animal y la estricta legislación (por ejemplo, la Directiva 2010 de la Unión Europea sobre el uso de animales de laboratorio, 5) nos ha llevado a perfeccionar los procedimientos quirúrgicos, especialmente con respecto a la aplicación de nuevos procedimientos para la administración de suplementos de oxígeno y la monitorización continua de oxigenación de la sangre y los niveles de frecuencia cardíaca durante la cirugía, así comola introducción de un protocolo estandarizado para la atención postquirúrgica. Nuestras observaciones indican que estas modificaciones dio lugar a una mayor tasa de supervivencia y una mejora en la condición general de los animales después de la cirugía (por ejemplo, pérdida de peso y menos un animal más activo). Esta presentación en video se muestran los procedimientos generales involucrados en este tipo de cirugía estereotáxica, con especial atención a nuestras varias modificaciones. Vamos a ilustrar estos procedimientos quirúrgicos en ratas, pero también es posible llevar a cabo este tipo de cirugía en los ratones y otros pequeños animales de laboratorio mediante el uso de adaptadores especiales para el aparato estereotáxico 6.
Protocol
Discussion
El objetivo principal de esta presentación en video es familiarizar a los neurólogos del comportamiento con los principios básicos de la cirugía estereotáxica. Los investigadores que ya están realizando la cirugía estereotáxica también podrían beneficiarse de este vídeo y considerar algunas de las mejoras de procedimiento para el uso en su propio laboratorio. Un conocimiento cada vez mayor sobre la optimización de las técnicas quirúrgicas 1-3, el desarrollo de nuevos anestésicos y analgésicos …
Offenlegungen
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Los autores agradecen al Dr. Peter Gerrits de los dibujos utilizados en el video.
Materials
| Name of the reagent | Company |
| Alcohol 70% | VWR |
| Antisedan (atipamezole) | Orion |
| Atropine sulfate 0,5 | Pharmachemie BV |
| Bulldog haemostatic clamp | Aesculap |
| Cannulas | Component Supply Co. |
| Chlorhexidine 0.5% | AppepPharma |
| Cleaning powder | Alconox |
| Cotton sticks | Hartmann BV |
| Dexdomitor (dexmedetomidine) | Orion |
| Drill | Dremel 8000 |
| Duratears Z | Alcon |
| Durogrip Naaldvoerder converse 130mm | Aesculap |
| Durotip Fijne schaar ret.sp/st 110 mm | Aesculap |
| Gauze | Medicomp (5×5) |
| Heating pad | Harvard Apparatus |
| Insect pins (stylets) | Entosphinx (Czech Republik) |
| Ketamine 10% (ketamine) | Alfasan |
| Micro-halsted straight tip | Aesculap-vet |
| Molinea | Hartmann BV |
| NaCl 0,9% | Baxter |
| Needles (25G) | Terumo |
| Oximeter | Edan Instruments, Inc. |
| Pentobarbital | Pharmacy of the UMCG |
| Rimadyl | Pfizer |
| Scalpel blade No. 23 | Swann Morton |
| Scalpelholder NR. 4 133 mm | Aesculap |
| Screw driver | conventional Hardware Store |
| Simplex Rapid (dental cement) | Kemdent |
| Skull screws | Component Supply Co. |
| Spatula | VWR |
| Spongestan special | Johnson & Johnson |
| Stereotacts | Kopf Instruments |
| Surgical forceps 100mm | Aesculap |
| Suture material Safil 5/0 | Aesculap |
| Syringe 10 ml | Omnifix |
| Syringe 1ml | Terumo |
| Syringe 5ml | Omnifix |
| Xylocaine (lidocaine/adrenaline) | Astra Zeneca |
Referenzen
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- Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?. Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
- Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures. Lab Anim. 43, 149-154 (2009).
- Flecknell, P. A. . Laboratory Animal Anaesthesia – A Practical Introduction for Research Workers and Technicians. , (2009).
- . DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. , (2010).
- Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).
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- Swanson, L. W. . Brain Maps: Structure of the Rat Brain. , (1992).
