Summary

Misura della γHV68 infezione nei topi

Published: November 22, 2011
doi:

Summary

Herpesvirus-γ (γ-HVS) stabilisce per tutta la vita persistenza nel loro ospite. L'infezione di topi con γ-HV68 offre una geneticamente trattabili<em> In vivo</emModello> per la caratterizzazione del ciclo di vita / patogenesi della γHVs. Questo protocollo descrive l'individuazione e quantificazione dei γHV68 infezione in fase acuta e latente dopo l'infezione con formazione di placca, centro infettive, e saggi qPCR.

Abstract

Herpesvirus-γ (γ-HVS) si distinguono per la loro capacità di stabilire infezioni latenti di cellule linfoidi 1. La gamma ristretta di ospitare umano γ-HVS, come EBV e KSHV, ha gravemente ostacolato studi dettagliati patogeni. Murino γ-herpesvirus 68 (γHV68) azioni estese somiglianze genetiche e biologiche umane con γ-HVS ed è un patogeno naturale di roditori murid 2. Come tale, la valutazione di γHV68 infezione ceppi di topi inbred a diversi stadi di infezione virale fornisce un modello importante per la comprensione del ciclo di vita virale e la patogenesi durante γ-HVS infezione.

Su inoculazione intranasale, γHV68 risultati infezione in viremia acuta nel polmone, che è poi risolto in una infezione latente di splenociti e di altre cellule, che può essere riattivato per tutta la vita dell'ospite 3,4. In questo protocollo, descriveremo come utilizzare il test per valutare la placcatitolo s virus infettivo nel polmone omogenati su monostrati di cellule Vero in fase precoce (5 – 7 giorni) di post-infezione intranasale (dpi). Mentre l'infezione acuta è in gran parte cancellato 2-3 postinfection settimane, una infezione latente di γHV68 è stabilito circa 14 dpi e mantenuto in seguito nella milza dei topi. Infezione latente di solito colpisce una popolazione molto piccola di cellule nei tessuti infetti, per cui il virus rimane inattivo e si spegne la maggior parte della sua espressione genica. Splenociti latentemente infette spontaneamente riattivare virus su espianto in colture di tessuti, che può essere riassunta da un centro infettivi (IC) test per determinare la carica virale latente. Per ulteriori stimare la quantità di copie del genoma virale nel acuta e / o tessuti latentemente infette, quantitativa real-time PCR (qPCR) è usato per la sua massima sensibilità e precisione. L'analisi combinata dei risultati dei test qPCR e placca, e / o dosaggio IC rivelerà il profilo spazio-temporale del viralereplicazione e l'infettività in vivo.

Protocol

Il protocollo seguito descriverà i titoli di studio dei virus e dei carichi genoma virale nel ciclo di infezione litica e latente di γHV68 nei topi, che può teoricamente essere utilizzato per valutare l'infezione da virus che condividono lo stile di vita simile a quella di γHV68. 1. Amplificazione di γHV68 Scongelare una fiala congelata di γHV68 a bagnomaria a 37 ° C. Aggiungi inoculums virale per NIH3T12 o colture di cellule 3T3 (~ 50% di confluenza) in 10 pi…

Discussion

γHV68 è stato ampiamente utilizzato come modello per comprendere la patogenesi delle risorse umane γ-HVS 2,4,5. In questo protocollo, abbiamo descritto tre metodi utilizzati di routine, compreso saggio di placca per titolo virali infettive, test IC per il carico virale latente, e qPCR per il carico del genoma virale, per valutare l'infezione acuta e latente di γHV68 dopo l'inoculazione intranasale nei topi.

Il dosaggio della placca è stato ampiamente utilizzato per de…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori desiderano ringraziare per la consulenza tecnica e supporto da Ren Sole (University of California, Los Angeles) e Seungmin Hwang (Washington University). Questo lavoro è stato finanziato dalla Fondazione Baxter, National Institutes di borse di Salute (R01 e R21 CA140964 AI083841 a C. Liang).

Materials

Material Name Preparation Procedure
Methylcellulose (MC) overlay medium for viral plaque assay
  1. Heat ~ 250 ml of distilled water in TC bottle to > 80°C (boiling for 3 min in microwave)
  2. Add gradually 2.5 g MC powder into heated water, stirring over low heat until dissolved.
  3. Autoclave immediately for 15 min at liquid cycle.
  4. Stirring the autoclaved MC media at 4°C overnight.
  5. Combine 250 ml MC media with 200ml 2 x MEM (Gibco-BRL) + 50 ml FBS to give 500 ml overlay media.
Fix/stain medium for plaque assay 0.2% (w/v) crystal violet in 20% ethanol.
ACK Lysis Buffer NH4Cl 0.15M, KHCO3 10mM, EDTA 0.1mM
Complete DMEM Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS; Invitrogen), 2 mM L-glutamine, and 1% penicillin-streptomycin (Gibco-BRL).

Table 1. Specific media used in this protocol

Name of the reagent Company Catalogue number
Ketamine Sigma-Aldrich K2753
Xylazine Sigma-Aldrich X1251
Methylcellulose Sigma-Aldrich M0512-250g
2 x MEM Life Technologies 11935
Cell strainer BD Faclon 352340
Omni tissue homogenizer OMNI International TH115
DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen 69504
iQTM SYBRH Green Supermix BioRad 170-8882
CFX96 real-time PCR system Bio-Rad 184-5072
Cell counter Bio-Rad 145-0001
Sorvall SA-600 Thermo Scientific 096-124022

Table 2. Specific reagents and equipment

Referenzen

  1. Damania, B., Choi, J. K., Jung, J. U. Signaling activities of gammaherpesvirus membrane proteins. J. Virol. 74, 1593-1601 (2000).
  2. Stevenson, P. G., Efstathiou, S. Immune mechanisms in murine gammaherpesvirus-68 infection. Viral. Immunol. 18, 445-456 (2005).
  3. Flano, E., Husain, S. M., Sample, J. T., Woodland, D. L., Blackman, M. A. Latent murine gamma-herpesvirus infection is established in activated B cells, dendritic cells, and macrophages. J. Immunol. 165, 1074-1081 (2000).
  4. Sunil-Chandra, N. P., Efstathiou, S., Nash, A. A. Murine gammaherpesvirus 68 establishes a latent infection in mouse B lymphocytes in vivo. J. Gen. Virol. 73, 3275-3279 (1992).
  5. Simas, J. P., Swann, D., Bowden, R., Efstathiou, S. Analysis of murine gammaherpesvirus-68 transcription during lytic and latent infection. J. Gen. Virol. 80, 75-82 (1999).
  6. Ganem, D. KSHV and the pathogenesis of Kaposi sarcoma: listening to human biology and medicine. J. Clin. Invest. 120, 939-949 (2010).
  7. Wen, K. W., Damania, B. Kaposi sarcoma-associated herpesvirus (KSHV): molecular biology and oncogenesis. Cancer. Lett. 289, 140-150 (2009).
  8. E, X. Viral Bcl-2-mediated evasion of autophagy aids chronic infection of gammaherpesvirus 68. PLoS. Pathog. 5, e1000609-e1000609 (2009).
  9. Marques, S., Efstathiou, S., Smith, K. G., Haury, M., Simas, J. P. Selective gene expression of latent murine gammaherpesvirus 68 in B lymphocytes. J. Virol. 77, 7308-7318 (2003).
  10. McCausland, M. M., Crotty, S. Quantitative PCR technique for detecting lymphocytic choriomeningitis virus in vivo. J. Virol. Methods. 147, 167-176 (2008).
  11. Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. B cells regulate murine gammaherpesvirus 68 latency. J. Virol. 73, 4651-4661 (1999).
  12. Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. Macrophages are the major reservoir of latent murine gammaherpesvirus 68 in peritoneal cells. J. Virol. 73, 3273-3283 (1999).

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Diesen Artikel zitieren
Pirooz, S. D., Lee, J., Zhao, Z., Ni, D., Oh, S., Liang, C. Measurement of γHV68 Infection in Mice. J. Vis. Exp. (57), e3472, doi:10.3791/3472 (2011).

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