Summary

Представляем напряжения сдвига в изучении бактериальной адгезии

Published: September 02, 2011
doi:

Summary

Во время инфекционного процесса, что является ключевым шагом является адгезии патогенов с клетками хозяина. В большинстве случаев этот шаг адгезии происходит при наличии механических напряжений порожденных течет жидкость. Мы описываем технику, которая вводит напряжения сдвига в качестве важного параметра для исследования бактериальной адгезии.

Abstract

During bacterial infections a sequence of interactions occur between the pathogen and its host. Bacterial adhesion to the host cell surface is often the initial and determining step of the pathogenesis. Although experimentally adhesion is mostly studied in static conditions adhesion actually takes place in the presence of flowing liquid. First encounters between bacteria and their host often occur at the mucosal level, mouth, lung, gut, eye, etc. where mucus flows along the surface of epithelial cells. Later in infection, pathogens occasionally access the blood circulation causing life-threatening illnesses such as septicemia, sepsis and meningitis. A defining feature of these infections is the ability of these pathogens to interact with endothelial cells in presence of circulating blood. The presence of flowing liquid, mucus or blood for instance, determines adhesion because it generates a mechanical force on the pathogen. To characterize the effect of flowing liquid one usually refers to the notion of shear stress, which is the tangential force exerted per unit area by a fluid moving near a stationary wall, expressed in dynes/cm2. Intensities of shear stress vary widely according to the different vessels type, size, organ, location etc. (0-100 dynes/cm2). Circulation in capillaries can reach very low shear stress values and even temporarily stop during periods ranging between a few seconds to several minutes 1. On the other end of the spectrum shear stress in arterioles can reach 100 dynes/cm2 2. The impact of shear stress on different biological processes has been clearly demonstrated as for instance during the interaction of leukocytes with the endothelium 3. To take into account this mechanical parameter in the process of bacterial adhesion we took advantage of an experimental procedure based on the use of a disposable flow chamber 4. Host cells are grown in the flow chamber and fluorescent bacteria are introduced in the flow controlled by a syringe pump. We initially focused our investigations on the bacterial pathogen Neisseria meningitidis, a Gram-negative bacterium responsible for septicemia and meningitis. The procedure described here allowed us to study the impact of shear stress on the ability of the bacteria to: adhere to cells 1, to proliferate on the cell surface 5and to detach to colonize new sites 6 (Figure 1). Complementary technical information can be found in reference 7. Shear stress values presented here were chosen based on our previous experience1 and to represent values found in the literature. The protocol should be applicable to a wide range of pathogens with specific adjustments depending on the objectives of the study.

Protocol

1. Человек клетки-хозяина и бактериальной культуры Культура HUVECs между прохождением 1 и 9 при 37 ° во влажной инкубаторе с 5% (объем / объем) CO 2. Прохождение клеток, когда они приближаются к 80% слияния с трипсин / ЭДТА по содержанию культур на 75 см 2 колбах культуры и экспериментальных культур в одноразовых камерах потока (μ-Слайды VI). Вывод среды из колб для пассировать, мыть клетки с 10 мл PBS, отозвать и заменить его на 1,5 мл трипсин / ЭДТА. Разрешить клетки отделить в культуре клеток инкубаторе в течение 5 минут при температуре 37 ° C. Сбор клеток с 10 мл клеточной среде культуры в 15 трубке коллекции мл. Гранул клеток с 5 минут центрифугирования (на 200 г), при комнатной температуре. Приостановить клетки в 4 мл Эндо-SFM с добавлением 10% (объем / объем) FBS и считать их на камеру Malassez, в соответствии с инструкциями производителя. Ввести 30 мкл 1×10 6 HUVEC клеток на мл суспензии в канале (3×10 4 общего числа) и позволяют клеткам придерживаться в течение 3 часов при температуре 37 ° во влажной инкубатор атмосфере 5% (объем / объем) CO 2. Добавить дополнительный объем 120 мкл Эндо-SFM для заполнения скважин. Клетки должны стать subconfluent монослоя (рис. 2). Расти Н. meningitidis выражения GFP (в этом случае напряжение 8013 выражения GFP под контролем IPTG индуцируемый промотор), на GCB пластин агара, содержащего добавки Kellogg и 5 мкг / мл хлорамфеникола при 37 ° C во влажной атмосфере, содержащей 5% (об. / г) CO 2 в течение 16 часов. 2. Первоначальная адгезия отдельные бактерии к клеткам хозяина Отрегулируйте концентрацию бактерий, выращенных на пластинах GCB агар для OD600 в 0,05 с подогретого Эндо-SFM, содержащей 10% (объем / объем) FBS и инкубировать в течение 120 минут при температуре 37 ° C во влажной атмосфере, содержащей 5% (об. / г) CO 2, при легком встряхивании (130 оборотов в минуту). Вызвать GFP выражение добавлением 1 мМ IPTG в питательной среде в течение всего периода инкубации. Место одноразовые μ-Slide на сцене инвертированный микроскоп оснащен подогревом платформы для поддержания температуры образца при 37 ° C. Налейте подогретого Эндо-SFM с добавлением 2% (объем / объем) FBS в стерильный стакан стекло и заполняют 50 мл стерильного шприца с этой средой. Прикрепить "вступления" НКТ шприц и заполнить путем введения среды. Подключить «входа» трубки к μ-Slide, с осторожностью, чтобы избежать введения воздуха в камере. Затем прикрепить "выход" трубки на другом конце и тщательно заполнить канал со средним и примерно 1 см от камеры «выход». Мера бактериальных OD600 и приспосабливаться к 0.15 в Эндо-SFM, содержащей 2% (объем / объем) FBS. Для того, чтобы смотреть на отдельные бактерии, любые агрегаты должны быть нарушен энергичным вортексе бактериальной образца. Разместить 100 мкл Эндо-SFM с добавлением 2% (объем / объем) FBS среды в резервуаре и добавить 100 мкл бактериальной решения взяты из верхней части встряхивали решение, чтобы избежать выборки оставшиеся бактериальных агрегатов. Осторожно ввести 200 мкл в μ-Slide, повернув кран для введения бактерий в камере. Ввести Эндо-SFM, содержащей 2% (объем / объем) FBS, поддерживается на уровне 37 ° С с подогревом платформы, в камеру при помощи шприца насос с напряжением сдвига совместимы с адгезию 0,044 дин / см 2 в течение 15 минут. См., например, видео 1 или рисунке 3. После этого шага, либо переехать в разделах 3, 4 или 6. 3. Количественная оценка начальной адгезии отдельные бактерии к клеткам хозяина После начальной адгезии в течение 15 минут, как получить изображения из десяти полей случайно в то время как жидкость по-прежнему циркулирует. Анализ полученных изображений использованием программного обеспечения ImageJ 8, чтобы получить доступ к среднему числу adherant бактерий на поле. Это делается следующим образом: во-первых, каждое изображение thresholded использовании "Порог" окно, найденное в "Изображение" меню, чтобы выделить отдельные придерживаясь люминесцентные бактерии, минимизируя при этом фоне из клеток. Затем, каждую бактерию считается, с помощью Plug-In "Cell Counter" ( http://rsb.info.nih.gov/ij/plugins/cell-counter.html ). Данные для каждого изображения представлены в таблице Excel и усредняются количественно среднее число бактерий приверженцем на поле. 4. Измерение сопротивления потоку отдельных бактерий приверженцем к клеткам хозяина Программа шприцевой насос настройки для создания напряжения сдвига в пределах от 3 ​​до 100 дин / см 2 в течение 5 минут. В конце 5 минут, приобрести десять полей случайно выбранных, как описано в пункте 3.1, но с потоком остановился пр.IOR с приобретением. Анализ полученных изображений, как описано в пункте 3.2 и количественно среднее число оставшихся бактерий на поле. 5. Измерение роста изолированных приверженцем бактерии микроколония Ввести Эндо-SFM, содержащей 10% (объем / объем) FBS, поддерживается на уровне 37 ° С с подогревом платформы, в камеру при помощи шприца насос с выбранным напряжением сдвига на несколько часов. Запись изображений для видео в реальном времени микроскопии на один кадр каждые 5 минут. После видео-микроскопии, остановить касательное напряжение, отключив шприцевой насос, приобретают 2-3 дополнительных изображений, а затем остановить последовательность получения изображения на программное обеспечение. Например бактериального распространения можно увидеть на видео 2. 6. Измерение сопротивления потоку приверженцем бактериальных микроколоний После формирования крупных микроколоний на клеточной поверхности (step5.2) приобретают 2-3 образы обеих ячейках (по фазового контраста) и бактерий (по GFP-флуоресценции) перед потоком приложения. Для остальной части эксперимента, приобретение протокол будет следить только флуоресценции. Применение высоких касательное напряжение в течение 5 минут (3-100 дин / см 2) и запись изображений на один кадр каждые 5 секунд. Стоп напряжения сдвига, отключив шприцевой насос, приобретают 2-3 дополнительных изображений, а затем остановить последовательность получения изображения на программное обеспечение. Затем удалите "выход" трубы первого и осторожно, чтобы избежать опорожнения канала, а затем добавить подогретого свежей средой для заполнения скважины, прежде чем снимать "вступления" трубок. Чтобы количественно определить влияние касательное напряжение на бактериальной резистентности, покрытие анализ может быть выполнен следующим образом: собирать оставшиеся средних и мыть μ-Slide в два раза с 120 мкл PBS, который удаляет оставшиеся среды из канала (как моет являются Также собраны). Отсоедините инфицированных клеток с добавлением 50 мкл трипсин / ЭДТА в течение 5 минут при 37 ° и смешать это отдельный образец с подвеской, собранных в предыдущем шаге. Выполните серийные разведения в PBS и пластиной 10 мкл долю на тарелки GCB агар, в трех экземплярах, в целях определения количества колониеобразующих единиц (КОЕ) на следующий день, после инкубации пластин при 37 ° C в инкубаторе с 5% (объем / объем) CO 2. Видео 3 и 4 сравнить дикого типа с pilV мутанта. 7. Бактериальные отрыв от микроколоний Инфицировать клетки в проточную камеру, повторив шаги 2,1 до 2,8 и позволяют инфекции проводили в течение 30 минут. Удаление несвязанных бактерий за счет увеличения потока до 10 дин / см 2 в течение 2 минут и дайте инфекции продолжаться в течение 2 часов. Сокращение потока до 0,15 дин / см 2. Каждый час, собирать капли среду выходит из потока камеры. Выполните серийные разведения образцов и пластины их на тарелки GCB агара. Определить количество колониеобразующих единиц (КОЕ) на следующий день, после инкубации пластин при 37 ° C в инкубаторе с 5% (объем / объем) CO 2. 8. Представитель результаты Рисунок 1: Различные шаги сотовой монослоя, которые можно наблюдать и измерять в присутствии потока в порядке. Рисунок 2: Эндотелиальная монослоя ячейку в проточную камеру в начале эксперимента (отсутствие напряжения сдвига). Около 50 эндотелиальных клеток организованы в суб-сливающийся монослой. Рисунок 3: Графическое представление начальную адгезию бактерий на клеточной поверхности. Значения для трех полей указаны, чтобы дать представление о поле до изменения поля, которые, как ожидается, (0044 дин / см 2). Видео 1. Визуализация начальную адгезию бактерий на клеточном монослое как функция времени (0044 дин / см 2). GFP-экспрессирующих бактерии следующие направления текущей среде. Фильм ускоряется в 60 раз, реальная длительность видео составляет 10 минут. Нажмите сюда, чтобы посмотреть видео. Видео 2. После начальной адгезии бактерий было позволено распространяться на клеточной поверхности в течение 7 часов (ускоренное 1000-кратное). Нажмите сюда, чтобы посмотреть видео. Видео 3. После распространения на клеточной поверхности механикдр. сопротивление микроколоний была проверена путем увеличения сдвига уровня напряжения до 10 дин / см 2 в течение 5 минут, но дикие микроколоний типа устойчивы ускоренной в 60 раз. Нажмите сюда, чтобы посмотреть видео. Видео 4. Микроколонии образована pilV мутант нарушается потоком увеличение (10 дин / см 2). Этот мутант не может вызвать реконструкция плазматической мембраны под микроколоний и, следовательно, более высокую чувствительность к увеличению напряжения сдвига (видео ускоряется в 60 раз) 5. Нажмите сюда, чтобы посмотреть видео.

Discussion

Значение напряжения сдвига и, как правило механических аспектов в биологии получает все большее признание. Например высоко адаптирована адгезивные свойства селектина семейство белков в процессе адгезии лимфоцитов и катались по сосудистой стенки был признан введения напряжения сдвига в процессе. Описанная выше процедура была применена к грам-отрицательные бактерии Neisseria meningitidis, но должны быть применимы к широкому спектру патогенных микроорганизмов. Значение напряжения сдвига было показано и для других патогенных микроорганизмов и других сайтах инфекции. Бактериальная адгезия обусловлена ​​напряжения сдвига было описано изучение FimH адгезина найти на уропатогенных кишечная палочка (УПЭК) 9. Как и в селектины, взаимодействие между FimH и его хозяина клеточного рецептора было показано, что подкрепляется сдвига вызванного механическими силами 9 и CfaE адгезина из энтеротоксигенной E.coli Сообщалось также посредничать адгезией к кишечных эпителиальных клеток с помощью сдвига зависит от механизм 10. Мы сообщали, с использованием ламинарного потока камера анализа протокол, описанный в этой главе, Streptococcus agalactiae пили имеют важное значение для соблюдения этого возбудителя к эпителиальным клеткам в проточных условиях 11. Такие исследования подтверждают, что наши проточную камеру анализ является полезным инструментом для исследования клетки-хозяина и возбудителем взаимодействия в условиях напряжение сдвига.

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить Эмили Mairey и Эммануэль Донадье для первоначального создания процедуры.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
μ-Slide VI0.4 flow kit IBIDI 80606
Syringe Plastipak 50 ml Luer-Lock Becton Dickinson 300865
Tygon Tubing R3603 3.2 x 4.8mm Fisher-Scientific R3603
3-way stopcock, 2 female luer to male luer Bio-Rad 7328103
Syringe pump Harvard Apparatus PHD 2000
Inverted microscope, Nikon Nikon Eclipse Ti
CCD camera Hamamatsu ORCA 285 CCD or ORCA 3-CCD
ImageJ software NIH Freeware
(http://rsbweb.nih.gov/ij/)

Referenzen

  1. Mairey, E. Cerebral microcirculation shear stress levels determine Neisseria meningitidis attachment sites along the blood-brain barrier. J Exp Med. 203, 1939-1950 (2006).
  2. Pries, A. R., Secomb, T. W., Gaehtgens, P. Design Principles of Vascular Beds. Circ Res. 77, 1017-1023 (1995).
  3. Zarbock, A., Ley, K. Neutrophil adhesion and activation under flow. Microcirculation. 16, 31-42 (2009).
  4. Tissot, O., Pierres, A., Foa, C., Delaage, M., Bongrand, P. Motion of cells sedimenting on a solid surface in a laminar shear flow. Biophys J. 61, 204-215 (1992).
  5. Mikaty, G. Extracellular bacterial pathogen induces host cell surface reorganization to resist shear stress. PLoS Pathog. 5, e1000314-e1000314 (2009).
  6. Chamot-Rooke, J. Posttranslational modification of pili upon cell contact triggers N. meningitidis dissemination. Science. 331, 778-782 (2011).
  7. Soyer, M., Dumínil, G., Christodoulides, M. Bacterial adhesion under shear stress. Neisseria meningitidis: Methods and Protocols (Methods in Molecular Biology). , (2011).
  8. Abramoff, M. D., Magelhaes, P. J., Ram, S. J. Image Processing with ImageJ. Biophotonics International. 11, 36-42 (2004).
  9. Thomas, W. E., Trintchina, E., Forero, M., Vogel, V., Sokurenko, E. V. Bacterial adhesion to target cells enhanced by shear force. Cell. 109, 913-923 (2002).
  10. Tchesnokova, V. Shear-enhanced binding of intestinal colonization factor antigen I of enterotoxigenic Escherichia coli. Mol Microbiol. 76, 489-502 (2010).
  11. Konto-Ghiorghi, Y. Dual role for pilus in adherence to epithelial cells and biofilm formation in Streptococcus agalactiae. PLoS Pathog. 5, e1000422-e1000422 (2009).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Soyer, M., Duménil, G. Introducing Shear Stress in the Study of Bacterial Adhesion. J. Vis. Exp. (55), e3241, doi:10.3791/3241 (2011).

View Video