In dit artikel presenteren we een eenvoudige, praktische techniek voor cerebrovasculaire gieten, dat is eenvoudig uit te voeren en kan worden gebruikt om het imago van de vasculaire boom van de volwassen hersenen van muizen.
Vasculaire beeldvorming is cruciaal in de klinische diagnostiek en behandeling van cerebrovasculaire ziekten, zoals de hersenen arterioveneuze malformaties (BAVMs). Diermodellen zijn nodig voor het bestuderen van de etiopathology en mogelijke therapieën van cerebrovasculaire ziekten. Beeldvorming van het vaatstelsel in de grote dieren is relatief eenvoudig. Echter, het ontwikkelen van schip imaging methoden van murine hersenziekte modellen wenselijk is te wijten aan de kosten en beschikbaarheid van genetisch gemodificeerde muis lijnen. Beeldvorming van de muizen cerebrale vasculaire boom is een uitdaging. Bij de mens en grotere dieren, de gouden standaard voor de beoordeling van de angioarchitecture op de macrovasculaire (geleiding) niveau is x-ray katheter contrast op basis van angiografie, een methode niet geschikt is voor kleine knaagdieren.
In dit artikel presenteren we een methode van cerebrovasculaire gieten die een duurzaam skelet van de gehele vaatbed produceert, waaronder slagaders, aders, en haarvaten die kunnen worden geanalyseerd met behulp van een groot aantal dAllerlei mensen modaliteiten. Volledige casting van de microvaten van de muis cerebrovasculature kan moeilijk zijn, maar deze uitdagingen komen aan bod in deze stap-voor-stap protocol. Door intracardiale perfusie van de vasculaire casting materiaal, zijn alle schepen van het lichaam gegoten. De hersenen kunnen dan worden verwijderd en verduidelijkt met behulp van het organische oplosmiddel methyl salicylaat. Driedimensionale beeldvorming van de hersenen de bloedvaten kan eenvoudig en goedkoop worden gevisualiseerd met een conventionele helderveld microscoop of ontleden microscoop. De gegoten cerebrovasculature kan ook worden afgebeeld en gekwantificeerd met behulp van micro-computertomografie (micro-CT) 1. Daarnaast, na in beeld wordt gebracht, kunnen de hersenen gegoten worden ingebed in paraffine voor histologische analyse.
Het voordeel van deze vasculaire casting methode in vergelijking met andere technieken is haar brede aanpassing aan de verschillende analytische instrumenten, waaronder helderveld microscopische analyse, CT-scan te wijten aan de radiopake kenmerkenKenmerkend voor het materiaal, maar ook histologische en immunohistochemische analyse. Deze efficiënte gebruik van weefsel kan redden van dieren het gebruik en de kosten te verlagen. We hebben onlangs aangetoond toepassing van deze methode om de onregelmatige bloedvaten in een muis model van de volwassen BAVM te visualiseren op een microscopisch niveau 2, en bieden extra beelden van de misvormde schepen afgebeeld door micro-CT scan. Hoewel deze methode heeft nadelen en is wellicht niet ideaal voor alle soorten van analyses, het is een eenvoudige, praktische techniek die gemakkelijk geleerd kan worden en op grote schaal toegepast op vasculaire gieten van de bloedvaten door het hele lichaam.
Wij rapporteren hier een methode voor het gieten van de volwassen muis cerebrovasculature die kunnen worden afgebeeld met verschillende modaliteiten. De toepassing van deze methode om de ziekte model BAVM maakt 3D-analyse van onregelmatige schepen. Potentiële toekomstige studies omvatten kwantificering van micro-CT beelden, histologische analyse van weefsel, en de diagnose van vasculaire progressie van de ziekte.
Problemen die zich en suggesties
Volledige doorbloeding van de hersenen vasculatuur is niet altijd bereikt. Genoeg druk om de distale bloedvaten te bereiken zonder open te barsten de linker-atrium of aorta is een uitdaging. Om dit van toepassing consistente druk van ongeveer 100 mmHg. Ook passen de naald positie passende uitstroom van casting agent in de aorta te verzekeren. Het is belangrijk dat de halsslagaders niet worden beperkt, zodat de casting agent kan de hersenen bereiken schepen. Kritische procedures die samenhangen met een verbeterde klein schip perfusie zijn: (1) de goede afwikkeling van het bloed van het vaatstelsel, (2) filtratie van de casting agent, en (3) naald plaatsing tijdens de casting agent injectie. Zorg moet worden genomen om de injectie van casting agent in de linkerboezem en de longen te voorkomen. Andere onderzoekers hebben met succes doorbloed muis en rat 3 4 cerebrovasculature zonder extra procedures. Handmatige analyse van Microfil geperfuseerd schepen tegengekleurd met hemotoxylin toonde 93% schip lumen perfusie 5. Altijd ontdoen of zich helemaal schoon is een tool die in contact komt met de casting agent omdat het snel polymeriseren, en gereedschappen kunnen niet worden gebruikt voor meerdere onderwerpen. Verduidelijking van het omliggende hersenweefsel muis kan een uitdaging zijn. Na de onderdompeling in methylsalicylaat, kan het weefsel nog steeds weergegeven ondoorzichtig, waardoor schip beeldvorming moeilijk. Zorgen voor een goede uitdroging en verduidelijking moet dit probleem oplossen. Het plaatsen van hersenweefsel op een rocker in alcohol en methyl-salicylate behandeling kan verbeteren weefsel verduidelijking.
Nadelen van de techniek
De beperkingen van deze techniek zijn onder andere: (1) is het noodzakelijk om de casting agent oplossing te injecteren onmiddellijk na het mengen het zoals het snel dikker na de katalysator wordt toegevoegd; (2) de casting agent vult grote geleiding schepen gemakkelijk, maar niet betrouwbaar te vullen kleinere schepen, zoals de arteriolen (weerstand schepen) en haarvaten (voedingswaarde schepen), en (3) het is niet de beste radiopake contrast voor micro-CT beeldvorming, hoewel sommige groepen liever Microfil voor micro-CT beeldvorming 1,6. Echter, naar aanleiding van de bovenstaande suggesties voorgesteld, waaronder de juiste naald plaatsing, positie van het schip en perfusie druk, kan volledige gieten van kleinere schepen worden bereikt. Het aanpassingsvermogen aan verschillende analyse-instrumenten maakt dit middel een waardevol instrument voor het analyseren van cerebrovasculaire structuur, met inbegrip arteriële en veneuze circulatie, met verschillendeperspectieven.
Toepassingen van de Techniek
Het voordeel van deze methode is de brede toepassing potentieel. De cast vult alle schepen, met inbegrip slagaders, aders en de haarvaten van alle weefsels in het lichaam, zodat vasculaire structuren in meerdere organen van de verschillende soorten kunnen worden geanalyseerd. Eerder hebben andere groepen gebruik gemaakt van deze perfusie voor grote 7 en 8 kleine schepen in de mens, aap 9, 10 schapen, rat 4,11,12 en muis 3,13. We tonen nu het bewijs van het gebruik van deze techniek in het analyseren van de structuur van de bloedvaten in de hersenen van muizen, zowel in gezonde en zieke Staten 2. Daarnaast zijn er Microfil oplossingen met verschillende viscositeiten voor vaartuigen van verschillende grootte en verschillende kleuren perfuseren aan de visualisatie van de vaartuigen in verschillende organen te verbeteren. Kunnen bijvoorbeeld rode gemakkelijk gevisualiseerd in de bleke hersenen parenchym, en geel contrasteert goed metdonkerrood myocard. Bovendien, als het materiaal is radiopaak, kunnen bloedvaten worden afgebeeld met micro-CT scan om een 3D-draaibare beeld te krijgen. Het weefsel kan ook gebruikt worden voor paraffine secties en histologische analyse na in beeld wordt gebracht.
Conclusie
We zien hier een protocol om een vasculaire cast van de bloedvaten van de volwassen hersenen van muizen, die kunnen worden aangepast met behulp van een verscheidenheid van analysetechnieken om de morfologische structuur van de cerebrovasculature studie te maken. Wij hebben ook bewijs geleverd voor de toepassing van deze methode om een model van de BAVM ziekte staat, vertegenwoordigd door vergroot, onregelmatig gevormde schepen die shunt arterieel bloed van de veneuze circulatie. Er zijn een verscheidenheid van vasculaire casting methoden beschikbaar. De eenvoudige protocol we hier zorgen voor een vasculaire gegoten kan worden gebruikt als een instrument om het vaatstelsel van de volwassen hersenen van muizen met behulp van verschillende beeldvormende technieken te onderzoeken.
The authors have nothing to disclose.
De auteurs danken Voltaire Gungab voor hulp bij het manuscript voorbereiding. Dit werk werd mede ondersteund door subsidies van: de National Institutes of Health (T32 GM008440 naar EJ Walker, R01 NS27713 aan WL Young, P01 NS44155 aan WL Jong en H. Su) en R21 NS070153 naar H. Su, en de Amerikaanse Heart Association (AHA 10GRNT3130004 naar H. Su).
Name | Company | Catalogue number | Notes |
Microfil | FlowTech, Inc. | MV130 | 4 month shelf life |
Methyl Salicylate | Fisher Scientific | O3695-500 | to clarify tissue |