Summary

Methoden zur raschen Transfer und die Lokalisierung von Lyme-Borreliose Erreger innerhalb der Tick Gut

Published: February 14, 2011
doi:

Summary

Lyme-Borreliose Studien erfordern oft Generation von Zecken mit dem Erreger Borrelia burgdorferi, ein Prozess, der dauert in der Regel mehrere Wochen infiziert. Hier zeigen wir eine Mikroinjektion-basierte Zecken Infektion Verfahren, das innerhalb weniger Stunden erreicht werden kann. Wir zeigen auch einer Immunfluoreszenz-Methode zur in situ-Lokalisation von B. burgdorferi in Zecken.

Abstract

Lyme-Borreliose wird durch eine Infektion mit dem Erreger Borrelia burgdorferi Spirochäten, die in der Natur von einer Zecke-Nagetier Infektionszyklus 1 beibehalten verursacht. Eine durch Zecken übertragene murine Modell 2 wurde entwickelt, um Lyme-Borreliose im Labor zu untersuchen. Während naive Zecken mit B. infiziert sein burgdorferi, indem man sie auf infizierten Mäusen, so erfolgt die Häutung Prozess mehrere Wochen bis Monate in Anspruch nehmen. Daher ist die Entwicklung von schnelleren und effizienteren Zecken Infektion Techniken, wie eine Mikroinjektion-basiertes Verfahren, ein wichtiges Instrument für die Erforschung der Lyme-Borreliose 3,4. Das Verfahren erfordert nur wenige Stunden, um infizierte Zecken zu generieren und ermöglicht die Kontrolle über die Lieferung von gleichen Mengen von Spirochäten in einer Kohorte von Zecken. Dies ist besonders wichtig, da die Erzeugung von B. burgdorferi infizierten Zecken durch die natürliche Fütterung Prozess mit Mäusen nicht zu 100% Infektionsrate und potenziell Ergebnisse in Variation der Erreger Belastung unter zugeführt Zecken zu gewährleisten. Darüber hinaus kann die Mikroinjektion verwendet werden, um Zecken mit B. zu infizieren burgdorferi-Isolate in Fällen, in denen eine abgeschwächte Stamm ist nicht auf eine Infektion in Mäusen zu etablieren und damit kann natürlich nicht durch Zecken 5 Erwerb werden. Diese Technik kann auch verwendet werden, um eine Vielzahl von anderen biologischen Materialien in Zecken zu liefern, z. B. spezifische Antikörper oder Doppel-RNA 6 gestrandet. In diesem Artikel werden wir die Mikroinjektion von Nymphen mit in vitro-grown B. zeigen, burgdorferi. Wir werden auch eine Methode zur Lokalisierung von Lyme-Borreliose Erreger in der Zecke gut mit Hilfe der konfokalen Immunfluoreszenz-Mikroskopie.

Protocol

1. Mikroinjektion von Nymphen Ixodes scapularis Ticks 1. Vorbereitung Nadeln Fertigen Sie mehrere Mikroinjektion Nadeln durch Erhitzen und Ziehen 1 mm Glaskapillaren (World Precision Instruments) in einem Glasmikropipette Abziehvorrichtung (Narishige). Entfernen Sie vorsichtig das fragile Kapillaren. Shop gezogen Nadeln (mit der Spitze nach oben) auf Klebeband in einer Petrischale. 2. Vorbereitung B. burgdorferi …

Discussion

Hier zeigen wir eine Mikroinjektion-basiertes Verfahren zur schnellen und effizienten Infektion nymphal Ixodes-Zecken mit dem bakteriellen Erreger B. burgdorferi. Wir beschreiben auch eine konfokale Immunfluoreszenz Verfahren für den Nachweis von B. burgdorferi in der Zecke gut in situ. Obwohl unsere Demonstration beinhaltet nymphal gut, sind ähnliche Verfahren auch für andere Entwicklungsstadien der Zecken, wie Larven oder Erwachsene 8,9. Aufgrund ihrer geringen Größe kann die…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir bedanken uns herzlich die Mitglieder des Pal-Labor für die Unterstützung bei der Vorbereitung dieser Demonstration. Diese Studie wurde von PHS gewährt AI076684 und AI080615 von NIH / NIAID unterstützt.

Materials

Material Name Typ Company Catalogue Number Comment
Glass capillary tubes   World Precision Instruments TW100F-4  
Vertical glass puller   Narishige PC-10  
Petroff-Hausser counting chamber   Hausser scientific 3900  
Microloader pipette tips   Eppendorf 930001007  
Femtojet microinjector   Eppendorf 920010504  
Foot control FemtJet   Eppendorf 920005098  
Phosphate buffered saline   Fisher Scientific BP665-1 Filter-sterilized

Referenzen

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Diesen Artikel zitieren
Kariu, T., Coleman, A. S., Anderson, J. F., Pal, U. Methods for Rapid Transfer and Localization of Lyme Disease Pathogens Within the Tick Gut. J. Vis. Exp. (48), e2544, doi:10.3791/2544 (2011).

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