Aktivität in neuronalen Systemen erfordert oft synchrone Aktionspotential Entladungen von Neuronen innerhalb einer bestimmten Population. Zum Beispiel, Impulse von Gonadotropin-Releasing-Hormon (GnRH) wahrscheinlich erfordern deshalb eine koordinierte Aktivität zwischen GnRH-Neurone. Wir präsentieren unsere methodische Ansatz für die zuverlässige Beschaffung gleichzeitige elektrophysiologischen Ableitungen aus dem diffus verteilt GnRH Neuronen.
Gonadotropin-Releasing Hormone (GnRH) ist ein kleines Neuropeptid, das Hypophysen-Version von luteinisierendes Hormon (LH) und Follikel-stimulierendes Hormon (FSH) reguliert. Diese Gonadotropine sind essentiell für die Regulierung der reproduktiven Funktion. Die GnRH-haltigen Neuronen sind diffus über den Hypothalamus und Projekt der Median Eminenz verteilt, wo sie GnRH aus ihren Axonterminalen Freisetzung in die hypophysiotropic Portal-System (1). In dem Portal Kapillaren, reist GnRH die Hirnanhangdrüse die Freisetzung von Gonadotropinen in den systemischen Kreislauf zu stimulieren. GnRH Release ist nicht kontinuierlich, sondern tritt in episodischen Impulse. Es ist bekannt, dass die intermittierende Weise von GnRH Freisetzung notwendig für die Fortpflanzung (2, 3).
Koordination der Tätigkeit mehrerer GnRH Neuronen wahrscheinlich zugrunde GnRH-Pulse. Insgesamt Peptid-Gehalt in GnRH-Neurone ist etwa 1,0 pg / Zelle (4), von denen 30% Wahrscheinlichkeit besteht die lösbare Pool. Levels von GnRH während eines Pulses (5, 6), deuten mehrere GnRH Neuronen sind wahrscheinlich in Neurosekretion beteiligt. Ebenso Einheit Aktivität von Hypothalamus Multi-Unit-Aufnahmen während der LH-Freisetzung extrahiert zeigt Veränderungen der Aktivität mehrerer Neurone (7). Die Elektroden mit aufgezeichneten Aktivität während der LH Impulse werden entweder mit GnRH Somata oder Fasern (8) verbunden sind. Daher kann zumindest einige dieser Aktivitäten ergibt sich aus GnRH Neuronen.
Die Mechanismen, die dazu führen, dass synchronisiert feuern in hypothalamischen GnRH-Neurone sind unbekannt. Die Aufklärung der Mechanismen, Brennen in GnRH-Neurone zu koordinieren ist ein komplexes Problem. Zunächst werden die GnRH-Neurone relativ wenige. In Nagetiere, gibt es 800-2500 GnRH Neuronen. Es ist nicht klar, dass alle GnRH-Neurone in episodische GnRH Freisetzung beteiligt sind. Darüber hinaus sind GnRH-Neurone diffus verteilt (1). Dies hat unser Verständnis der Koordinierung des Brand kompliziert und hat viele technische Ansätze unlösbar. Wir haben lose Zellen befestigt Aufnahmen in Current-Clamp-Modus zum direkten Nachweis von Aktionspotentialen optimiert und entwickelt eine Aufnahme Ansatz, der für die gleichzeitige Aufnahmen von Paaren von GnRH-Neurone können.
Die Aktivität von Interesse in einigen Neuronen auch GnRH-Neurone (basierend auf Hormonsekretion) tritt auf Zeitskalen von Stunden (5-7). Daher ist die ganze Zelle Konfiguration nicht die beste Wahl für einige experimentelle Ziele durch die Dialyse von intrazellulären Botenstoffen in der ganzen Zelle Aufnahmemodus. In zweiter Linie sind Ganzzellableitungen allgemein Tiere weniger als etwa 120 Tage alt begrenzt. Mit zunehmendem Alter scheinen neuronalen Membranen zu versteifen, so dass eine hohe Beständigkeit Dichtungen nur schwer zu erreichen. Darüber hinaus erhält, wenn man eine hohe Dichtung, Reißen der Patch stört das Siegel, so dass ein Loch zwischen der Pipette und der Membran. Dies führt zu einem unbrauchbaren Aufnahmen und ein Neuron, das schnell sterben wird durch ionische Ungleichgewichte. Regelmäßige Eierstock-Zyklen und damit stabile Aktivität des GnRH-Puls-Generators nicht erst später im Leben auftreten (7-10 Monate alt in C57BL6 Frauen; 11, 12), über das Alter, wenn man vernünftigerweise erwarten, erhalten Ganzzellableitungen zuverlässig. Schließlich zerstören Ganzzellableitungen der endogenen Verhältnisse von internen und externen Ionenkonzentrationen. Mit ganzen Zelle Aufnahmen, entspricht die interne Konzentration von Ionen die Konzentration der Ionen in der Pipette Lösung. Dies liegt daran, Pipettenlösung der relativ großen Volumen schnell ein Gleichgewicht erreicht mit / ersetzt die relativ kleine endogene Volumen der Zelle.
Die lose Zelle angebracht Ansatz umgeht viele der Einschränkungen der whole-cell-Aufnahmen. Erstens kann ein niedriger Widerstand Dichtung (15-30 MQ) verwendet werden. Diese sind relativ einfach, auch in Neuronen von älteren Tieren zu bilden. Zweitens muss man nicht Ruptur der versiegelten Patch der Membran. Daher sind lose Zelle angebracht Aufnahmen technisch viel einfacher als Ganzzellableitungen. Zusätzlich wird, da die Zellmembran intakt ist, ist Dialyse von intrazellulären Komponenten nicht auftreten und endogenen ionischen Verhältnisse erhalten bleiben. Man kann nicht mit dem losen Zelle angebracht Ansatz zur Untersuchung synaptischer Ströme, aber es ist ideal für Langzeit-Aufzeichnungen von Neuronen in einem relativ nicht-invasive Art und Weise. Die Zelle-Attached-Aufnahmen können auch mit jedem Standard intrazelluläre Lösung in der Pipette werden. Dies bietet den zusätzlichen Vorteil, daß dadurch die Membran-Patch, wenn langfristig die Aufnahme abgeschlossen ist und die Kennzeichnung des Neurons mit einem intrazellulären Marker.
Die lose Zelle angebracht Ansatz hat in der Voltage-Clamp-Aufnahme-Modus verwendet. Allerdings hat Voltage-Clamp-Aufnahme in das lose Zelle Attached-Konfiguration mehrere methodische Probleme. Zuerst wird das aufgenommene Signal ein indirektes Maß der Aktivität. Das Signal, das gemessen (die so genannte Aktion Strom) ist der kapazitive Strom, dass die Membran (13) Gebühren. Dies ist eine äußerst wichtige methodische Frage. Die Kapazität und Widerstand einer Aufnahme Pipette filtern das aufgezeichnete Signal. Es ist sehr wahrscheinlich, dass die kleine Aktion Strömungen in Aufladen der Kapazität der Pipette, die nicht richtig mit den meisten Verstärkern, aufgrund der hohen Widerstandsfähigkeit der headstage kompensiert werden, gehen verloren. Wenn diese Signale unentdeckt bleiben, ist die scheinbare Brennen Muster des Neurons nicht den tatsächlichen Feuern Muster. Ebenso führen unkompensierte Pipette und Abdichtwiderstande erhebliche Fehler bei der Messung während Veränderungen wie bei der Aktion Strömungen zum Ausdruck kommen (13). Einige Verstärker sorgen für Kapazität und Widerstand "Entschädigung" für die Pipette und Siegel, welches Signal Loss-Limite, aber hohe Kopf Stufen der meisten Verstärker behindern optimalen Ausgleich. Zweitens ist eine künstliche Situation auf die Zelle eingeführt. In Voltage-Clamp-Modus, ist die Gegend um die Zellmembran zu einem festen Potential gehalten wird, in diesen Studien, 0 mV. Dies bedeutet nicht, es gibt keine Bestromung der Zellmembran. Das Signal in Voltage-Clamp gemessen wird tatsächlich die Menge des angelegten Stroms an die Membran zu dem festen Potential aufrecht zu erhalten. Daher kann diese angelegten Strom verändern die Zellaktivität.
Dual-Aufnahmen in der GnRH-System sind eine besondere Herausforderung aufgrund der begrenzten Anzahl der GnRH-Neurone und deren diffuse Verteilung. Für Dual-Aufnahmen um erfolgreich zu sein, muss der Manipulator als überaus stabil. Auch leichte Bewegung der Elektrode kann die Pipette zu rutschen das Neuron und die Aufnahme zu beenden. Darüber hinaus kann die Bewegung der Pipette auf die Zelle (zB Re-Positionierung, um die Bewegung zu kompensieren) verändern Brennen Muster. Einige Ionenkanäle wie N-Typ-Kalziumkanäle sind mechanisch empfindlich: Membran Strecke führt repetitive Aktivität sowohl Ganzkörper-Zell-und Zell-attached Aufnahme-Konfigurationen (14). Schließlich muss der Manipulator System in der Lage sein überaus feine und gleichmäßige Bewegung. Wie oben, mit zwei Aufnahmen bemerkt, nimmt man zwei Pipetten an der Oberfläche der beiden zuvor markierten Neuronen gleichzeitig und versucht, Dichtungeinem Neuron. Wenn dies gelingt, dann versucht man Siegel der zweiten Zelle. Generell kann man nicht erwarten, zu versiegeln und haben eine hohe Qualität der Aufnahme bei jedem Versuch. Dies erzeugt jedoch ein besonderes Problem mit Dual-Aufnahmen. Wenn man erfolgreich mit dem ersten Neuron ist aber nicht mit dem zweiten, muss man ändern Sie die Pipette und versuchen Sie eine andere Zelle. Deshalb muss man in der Lage sein, sowohl die Tauch-Objektiv des Mikroskops und die Pipette an die Spitze der Perfusion gut (um die Pipette zu ändern) zu bewegen, ohne dass der Erfolg besiegelt Neurons.
Unsere Entwicklung und den Einsatz der losen Zelle-Attached-Ansatz für Dual-Aufnahmen ist ein großer technischer Fortschritt im Studium GnRH Neuronen. Es ist wahrscheinlich, zu brauchbaren Ergebnissen, die dazu beitragen, die Feld, die im Kontext der kritischen Frage, welche Mechanismen zu Grunde liegen die koordinierte Aktivität, die Ergebnisse in pulsatile Hormonsekretion. Produzieren
Ich bin dankbar, Ronald L. Calabrese, Dieter Jaeger (Emory University) und Ward Yuhas (Axon Instruments) für nützliche technische Diskussionen.