Ein neues Mittel, um Neurotransmission optisch messen unter Verwendung von fluoreszierenden Dopamin-Analoga.
Das Nervensystem überträgt Signale zwischen den Neuronen über die Freisetzung von Neurotransmittern im synaptischen Vesikel Fusion. Zur Beobachtung Neurotransmitter Aufnahme und Abgabe von einzelnen präsynaptischen direkt, haben wir fluoreszierende falsche Neurotransmitter als Substrate für die synaptische Vesikel Monoamin-Transporter. Mit diesen Sonden Bild Freisetzung von Dopamin im Striatum, machten wir einige Beobachtungen relevant für synaptische Plastizität. Wir fanden, dass der Anteil von synaptischen Vesikeln Freisetzung von Neurotransmittern pro Stimulus abhängig von der Reizfrequenz war. Ein kinetisch unterschiedliche "Reserve" synaptischer Vesikel Bevölkerung war nicht unter diesen experimentellen Bedingungen beobachtet. Eine Frequenz-abhängige Heterogenität der präsynaptischen zeigte sich, dass abhängig war zum Teil auf D2 Dopamin-Rezeptoren, was auf einen Mechanismus für die frequenzabhängige Codierung der präsynaptischen Auswahl.
Hui Zhang und Niko G. Gubernator trugen gleichermaßen zu dieser Arbeit.
In diesem Video zeigen wir eine Methode, um Neurotransmission optisch sichtbar unter Verwendung von fluoreszierenden Dopamin-Analoga. FFN511 ist die erste Generation der FFNs wir entwickelt haben. Es war zwar indem sie auf die neuronale vesikulären Monoamin-Transporter (VMAT2), die Monoamin-Neurotransmittern führt aus dem Zytoplasma in synaptische Vesikel, insbesondere Etiketten Dopamin im Striatum und vermutet, Katecholamin-und / oder Serotonin-Terminals in der Hirnrinde (wie in der Wissenschaft gezeigt ausgelegt Papier), wird eine entsprechende Belastungsdauer entscheidend für die Spezifität, da FFN511 ist relativ hydrophob. Wir fanden, dass die Inkubation länger als 40 Minuten wird in umfangreichen spezifische Färbung in striatalen Scheiben führen. Die Spezifität kann unkompliziert durch Entfärbung mit einer hohen Konzentration von KCl, die die Freisetzung von FFN innerhalb funktionaler synaptischen Vesikeln sollte Ursache ermittelt werden. Die Exposition der Scheibe zu FFN511 für weniger als 15 Minuten wird in schwachen Fluoreszenzsignal aufgrund unzureichender Belastung der Farbstoff in den Terminals führen. In diesem Protokoll, verwenden wir 100 &mgr; ADVASEP-7, um den Farbstoff gebunden an extrazelluläre Gewebe zu entfernen. Dieser Schritt ist nicht notwendig, aber wenn es weggelassen wird, muss die Auswaschzeit in ACSF verlängert werden. Zusammenfassend, abhängig von der Vorbereitung Sie gewählt haben, werden Sie brauchen, um die Konzentration und Belastungsdauer zu modifizieren, um eine optimale Kennzeichnung zu bestimmen.
The authors have nothing to disclose.
D. Sames dank der G. Harold & Leila Y. Mathers Charitable Foundation und der Columbia University Initiativen in Science and Engineering.
D. Sames und D. Sulzer danken der McKnight Foundation for The McKnight Technologische Innovationen in Neuroscience-Preis
D. Sulzer dank NIDA, NIMH, und die Picower und Morbus Parkinson Foundations.
H. Zhang dank NARSAD.
RH Edwards dank der Michael J. Fox Foundation, der National Parkinson Foundation, NIDA und NIMH.
Wir danken Robert Burke für 6-OHDA-Injektionen und Beratung, Mark Sonders für nützliche Diskussion, Merek Siu für Bildanalyse-Programmierung, und Jan Schmoranzer für technische Unterstützung bei der TIRF-Mikroskopie-Setup.
Material Name | Typ | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
FFN511 (8-(2-Amino-ethyl)-2,3,5,6-tetrahydro-1H,4H-11-oxa-3a-aza-benzo[de]anthracen-10-one) | Dalibor Sames’s laboratory at Columbia University | |||
ADVASEP-7 | CyDex, Overland Park, KS | AR-OA7-005 | ||
RC-27L Recording chamber | Warner Instrument | 64-0375 | ||
PELCO PrepEze 6-Well Holder | Ted Pella, Inc. | 36157-1 | For slice incubation | |
Master-8 pulse stimulator and Iso- Flex stimulus isolator | AMPI, Jerusalem, Israel |