Summary

تعديل نضح لانجيندورف لأوقات التروية الممتدة لطعوم القلب القوارض

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

توضح هذه المقالة جدوى تحقيق أوقات نضح أطول (4 ساعات) من ترقيع قلب الفئران دون فقدان الوظيفة من خلال استخدام ضغوط نضح أقل (30-35 مم زئبق) من الفسيولوجية (60-80 مم زئبق) خلال لانجيندورف.

Abstract

على الرغم من التطورات الهامة في تشخيص وعلاج أمراض القلب والأوعية الدموية (CVDs) ، فإن المجال في حاجة ماسة إلى زيادة البحث والتقدم العلمي. ونتيجة لذلك، يمكن أن يوفر الابتكار و/أو التحسين و/أو إعادة استخدام مجموعة أدوات البحث المتاحة منصات اختبار محسنة للنهوض بالبحوث. التروية Langendorff هي تقنية بحثية قيمة للغاية في مجال أبحاث الأمراض القلبية الوعائية التي يمكن تعديلها لاستيعاب مجموعة واسعة من الاحتياجات التجريبية. يمكن تحقيق هذا الخياطة من خلال تخصيص عدد كبير من معلمات التروية ، بما في ذلك ضغط التروية ، والتدفق ، والتثطير ، ودرجة الحرارة ، وما إلى ذلك. يوضح هذا البروتوكول تعدد استخدامات نضح Langendorff وجدوى تحقيق أوقات نضح أطول (4 ساعات) دون فقدان وظيفة الكسب غير المشروع من خلال استخدام ضغوط نضح أقل (30-35 مم زئبق). إن تحقيق أوقات نضح ممتدة دون تلف الكسب غير المشروع و / أو فقدان الوظيفة الناجم عن التقنية نفسها لديه القدرة على إزالة العناصر المربكة من النتائج التجريبية. في الواقع ، في الظروف العلمية حيث تكون أوقات التروية الأطول ذات صلة بالاحتياجات التجريبية (أي العلاجات الدوائية ، وتحليل الاستجابة المناعية ، وتحرير الجينات ، والحفاظ على الكسب غير المشروع ، وما إلى ذلك) ، يمكن أن تكون ضغوط التروية المنخفضة مفتاحا للنجاح العلمي.

Introduction

شهد مجال أبحاث القلب والأوعية الدموية تطورات مهمة في تشخيص وعلاج أمراض القلب والأوعية الدموية (CVDs). ومع ذلك ، على الرغم من الانخفاض العام في معدلات الإصابة والوفيات ، لا تزال الأمراض القلبية الوعائية السبب الرئيسي للوفاة على مستوىالعالم 1,2. وتسلط هذه الحقيقة المقلقة الضوء على الحاجة إلى زيادة البحوث والتقدم العلمي، الذي يعتمد بلا شك على دقة أدوات البحث المتاحة وإمكانية التنبؤ بها. نتيجة لذلك ، هناك حاجة مستمرة للابتكار والتحسين و / أو إعادة تخصيص مجموعة أدوات البحث. على سبيل المثال ، يمكن تعديل نضح القلب إلى الوراء أو Langendorff ، وهي تقنية متاحة لهذا المجال لأكثر من قرن ، بسهولة لتغطية نطاق أوسع من الاحتياجات العلمية وتحقيق مجموعة أوسع من التطبيقات.

يوفر عزل الطعم القلبي عن بقية الكائن الحي أثناء نضح لانجيندورف درجة مهمة من التحكم في مجموعة واسعة من المعلمات التجريبية ، بما في ذلك درجة الحرارة ، والمحلول المتداول ، وضغوط التروية التاجية ، وما إلى ذلك 3،4،5،6،7. يسهل التلاعب بهذه المعلمات محاكاة عدد كبير من سيناريوهات القلب التي يمكن الاستفادة منها لمزيد من التقدم العلمي5،8،9،10. من بين هذه المعلمات ، من المحتمل أن يكون ضغط التروية هو الإعداد التجريبي الأكثرتجاهلا 11.

خلال Langendorff ، تظهر ضغوط التروية علاقة مباشرة مع معدل ضربات القلب ، وذروة الضغوط الانقباضية / الانبساطية ، واستهلاك الأكسجين11. يوفر هذا الارتباط تحكما مباشرا ودقيقا في مقدار العمل الذي تنتجه الطعوم القلبية ، والتي يمكن تعديلها لتلبية الاحتياجات التجريبية الفردية. على الرغم من قدرة التحكم القيمة هذه ، فقد انجذب المجال تاريخيا نحو استخدام ضغوط نضح أعلى (60-80 مم زئبق) ، مما يعرض جميع الطعوم القلبية لطلب عمل مرتفع بغض النظر عن الاحتياجات التجريبية8،12،13،14،15. تنشأ عواقب هذا الطلب المرتفع غير الضروري على العمل من المبدأ الشامل القائل بأن الإفراط في العمل يميل إلى أن يؤدي إلى الفشل المبكر. يبدو أن هذا ينطبق بشكل خاص على الطعوم القلبية التي يتم اختراقها عبر Langendorff ، حيث يبدو أن الطبيعة غير الفسيولوجية لهذه الطريقة ونقص دعم التعافي الموجود في الجسم الحي يؤدي إلى تفاقم فشل الكسب غير المشروع. هذا الفقدان المبكر لوظيفة الكسب غير المشروع يحد من التروية والأوقات التجريبية بشكل كبير. في الواقع ، في الظروف التي تكون فيها أوقات التروية الأطول أكثر صلة بالاحتياجات التجريبية (أي العلاجات الدوائية ، وتحليل الاستجابة المناعية ، وتحرير الجينات ، والحفاظ على الكسب غير المشروع ، وما إلى ذلك) ، يمكن توفير عمل القلب المنخفض مقابل زيادة متانة الكسب غير المشروع.

يوضح هذا البروتوكول جدوى استخدام ضغوط التروية المنخفضة (30-35 مم زئبق) خلال Langendorff ، بالإضافة إلى التأثير الكبير الذي تشكله هذه على وظيفة الكسب غير المشروع القلبي بمرور الوقت عند مقارنتها بضغوط التروية الأعلى (60-80 مم زئبق). علاوة على ذلك ، تسلط النتائج الواردة في هذه المخطوطة الضوء على أهمية إعطاء الأولوية لتخصيص مجموعة واسعة من معلمات التروية لتلبية الاحتياجات التجريبية بشكل أفضل.

Protocol

أجريت هذه الدراسة بعد اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام (IACUC) في مستشفى ماساتشوستس العام. 1. تصميم النظام قم بتجميع النظام بالمكونات الثلاثة ذات الغلاف المزدوج ، بما في ذلك مصيدة الفقاعات ، والخزان ، والأكسجين ، والمضخة التمعجية ، ودورة المياه. قم بتوصيل جميع المكونات المغلفة بحامل مشبك واحد. قم بتوصيل المكونات بالتسلسل بأنابيب السيليكون في تسلسلين مختلفين (الشكل 1 أ).التسلسل 1 – نمط تدفق الماء عبر الغلاف (الخطوط الصلبة في الشكل 1 أ):قم بتوصيل تدفق جهاز تدوير المياه بالمدخل السفلي لسترة مصيدة الفقاعات باستخدام أنبوب 36 G. سيضمن ذلك الاحتفاظ بالبيرفوسات في درجة الحرارة المناسبة (37 درجة مئوية) قبل الوصول إلى القلب ، حيث سيفقد الماء الحرارة أثناء انتقاله عبر المكونات الأخرى للنظام. قم بتوصيل المدخل العلوي لسترة مصيدة الفقاعات بالمدخل السفلي لسترة الخزان باستخدام نفس حجم الأنابيب. بعد ذلك ، قم بتوصيل المدخل العلوي لسترة الخزان بالمدخل السفلي لسترة الأكسجين. أخيرا ، قم بتوصيل المدخل العلوي للأكسجين بتدفق جهاز تدوير المياه. التسلسل 2 – نمط تدفق perfusate عبر النظام (الخطوط المتقطعة في الشكل 1A)قم بتوصيل موصلات luer بكلا جانبي أنبوب 16 G. قم بتوصيل الطرف الأول بقاعدة الخزان وإطعامه من خلال رأس المضخة التمعجية. قم بتوصيل الطرف الآخر بأحد مداخل ملف السيليكون داخل جهاز الأكسجين. قم بتوصيل قطعة ثانية من أنابيب 16 G ، مزودة بموصلات قفل luer على كلا الطرفين ، عند المدخل الثاني لملف السيليكون لجهاز الأكسجين بالمدخل في مصيدة الفقاعات مع النتوء الطويل. قم بتوصيل قطعة أقصر من أنابيب 16 G ، مزودة بموصلات luer ، بالمخرج غير المستخدم لمصيدة الفقاعات بصمام قفل luer ثلاثي الاتجاهات. على الجانب الآخر من الصمام ثلاثي الاتجاهات ، قم بتوصيل قطعة من أنبوب 16 G بصمام luer ثان على الطرف الآخر. يقع هذا الصمام الثاني مباشرة فوق الخزان. قم بتوصيل الجانب الآخر من الصمام بأكثر من أنابيب 16 G ، متبوعا بمستشعر الضغط. قم بتوصيل أنبوب بقطر أصغر (3.7 مم) بالمنفذ الرأسي للصمام ثلاثي الاتجاهات بموصل للقنية (14 G angiocath). يتدفق البيرفوسات من الخزان إلى جهاز الأكسجين عبر مصيدة الفقاعات قبل إعادة تدويره مرة أخرى إلى الخزان من خلال وصلة قنية الأبهر. 2. إعداد بيرفوسات تحضير البيروسات الأساسي ، 0.96٪ Krebs-Henseleit Buffer ، 9.915 mM Dextran ، 25 mM بيكربونات الصوديوم ، 1.054 mM مصل الأبقار الزلال ، 1٪ بكتيريا القلم ، 0.13٪ الأنسولين ، 0.02٪ هيدروكورتيزون ، 0.5٪ هيبارين ، و 2.75 مللي مول كلوريد الكالسيوم وإحضارها إلى الحجم بالماء المقطر. 3. إعداد نظام التروية قم بتوصيل حقنتين سعة 10 مل بمنافذ التهوية العلوية والجانبية في مصيدة الفقاعات. أضف قاعدة perfusate (75 مل) إلى الخزان. قم بتشغيل المضخة التمعجية واضبط جهاز تدوير المياه على 37 درجة مئوية. قم بتوصيل خط الأكسجين (95٪ O2 و 5٪ CO2) بالمدخل الثالث في جهاز الأكسجين وقم بأكسجة البيروسات إلى الحد الأدنى من pO2 من 400 مم زئبق. قم بتأمين منفذ حقن إلى المنفذ الرأسي للصمام ثلاثي الاتجاهات مباشرة بعد مصيدة الفقاعات. قم بتوصيل إبرة تسريب مجنحة بحقنة سعة 1 مل بمنفذ الحقن (يستخدم لأخذ العينات). اضغط برفق على منفذ الحقن أو ارسم perfusate باستخدام حقنة سعة 1 مل لإزالة أي فقاعات يتم إدخالها إلى الدائرة. بمجرد أن تصل قاعدة perfusate إلى درجة الحرارة ومستوى الأكسجين ، قم بإجراء قراءة أولية للمعلمات الكيميائية الحيوية لضمان تركيز الأيونات الصحيح (الجدول 1) والأوكسجين المناسب.ملاحظة: يجب قراءة مستويات الأيونات والأس الهيدروجيني بعد رفع المحلول إلى درجة حرارة (37 درجة مئوية) وأكسجته بمزيج الغاز المناسب (95٪ O2 ، 5٪ CO2). قم بتصفير مستشعر الضغط عن طريق فك الأنبوب المتصل والسماح بتدفق البيروسات عبر المستشعر المفتوح وتوازن القنية. بمجرد التوازن ، اضغط على زر الصفر في صندوق المستشعر وأعد تثبيت الأنبوب. سجل الضغوط الأساسية قبل ارتباط القلب بالنظام لتدفقات تتراوح من 1 مل / دقيقة إلى 15 مل / دقيقة. نضح الضغط المنخفضبالتنقيط الأدينوزين: اصنع مخزونا أوليا قدره 20 مللي متر من الأدينوزين في قاعدة البيروكوزات. حل الأدينوزين عن طريق وضع الأنبوب في حمام ماء دافئ والخلط عن طريق الانقلاب. خفف مخزون الأدينوزين إلى تناسق 0.06 مجم / مل في البيروسيتات الأساسي وأضفه إلى حقنة سعة 50 مل. قم بتوصيل إبرة تسريب مجنحة بحقنة سعة 50 مل وقم بتوصيلها بمنفذ الحقن في الصمام ثلاثي الاتجاهات. ثبت المحقنة بمضخة حقنة واضبطها على سرعة تسريب تبلغ 166.6 ميكرولتر / دقيقة.ملاحظة: يتم تحرير الفقاعات من منفذ التسريب عن طريق النقر برفق أو تحريك المنفذ. نضح الضغط العالي:عزل خلايا الدم الحمراء المعبأة (pRBCs):اجمع 10-12 مل من دم الفئران الكامل عن طريق ثقب القلب لفأر متبرع. أجهزة الطرد المركزي الدم في 2000 × غرام لمدة 10 دقائق. قم بإزالة طبقة معطف البلازما وبافي عن طريق الماصة. أعد تعليق كرات الدم الخيطية في البيرفوسات بدون كلوريد الكالسيوم بنسبة 1: 1 (على سبيل المثال ، 5 مل من كرات الدم البرازيلية: 5 مل من البيرفوسات) عن طريق خلط الانقلاب. كرر الخطوات 3.8.1.2-3.8.1.4 مرتين ليصبح المجموع 3 غسلات. بعد الغسيل الأخير ، أعد تعليق الخلايا في perfusate بنسبة 1: 1 وأضف الخليط إلى نظام التروية ، الذي يحتوي بالفعل على 75 مل من البيرفوسات الأساسية. اسمح للخلايا بالتوزيع بالتساوي من خلال النظام ، وقياس الهيماتوكريت من perfusate باستخدام آلة أمراض الدم. يتراوح الهيماتوكريت من 5٪ -7٪. 4. إعداد شراء الكسب غير المشروع للقلب قم بتجهيز نظام التروية بالكامل قبل بدء الشراء لتقليل وقت نقص التروية البارد. تحضير الأدوات الجراحية. تشمل الأدوات الجراحية منصات زرقاء ، شريط جراحي ، خيوط حريرية 5-0 ، مسحات قطنية ، محاقن ملحية (50 مل و 10 مل) ، مقص تشغيل ، ملقط ، مقص صغير ، ملقط دقيق ، مشبك هالستيد ، 30 وحدة من الهيبارين ، 16 أنبوب G لتدفق البوابة ، 14 G أنابيب ل canulation القلب ، 16 G angiocath ، تعديل 14 G angiocath مع الكفة ، مستشعر الضغط ، دلو ثلج مع ثلج ، طبق بتري 47 مم ، شاش. قم بإنشاء قنية معدلة عن طريق إدخال حلقة رقيقة من الأنابيب (القطر الداخلي [ID] 0.167 مم ، القطر الخارجي [OD] 2.42 مم) على قنية 14 G ، مما يخلق تأثير الكفة.انزع إبرة القنية وأضف قطرة من الغراء الفائق أسفل الحلبة. حرك الحلقة بعناية إلى 1/4 بوصة فوق قاعدة القنية. اترك الغراء حتى يجف قبل الاستخدام. قطع القنية أقرب ما يمكن إلى الكفة بزاوية وإزالة الحواف الحادة. املأ حقنة سعة 60 مل بمحلول ملحي هيبارين (0.03 وحدة / مل) لتدفق الوريد البابي. قم بتوصيل المحقنة بمستشعر الضغط ، متبوعا بأنبوب التنظيف 16 G. قم بتوصيل حقنة سعة 10 مل من محلول ملحي هيبارين (0.03 وحدة / مل) بأنبوب 14 جرام. قم بتوصيل الطرف الآخر من الأنبوب بقنية الأبهر واغسله لإزالة أي فقاعات هواء. ضع قنية الأبهر في طبق بتري 47 مم مع شاش ومليء بالمحلول الملحي. اترك طبق بتري على الجليد حتى يتم توصيل القلب بنظام التروية. 5. شراء الكسب غير المشروع القلبي تخدير الفئران في غرفة التخدير مع 3 ٪ إيزوفلوران. بمجرد عدم ملاحظة ردود الفعل ، قم بإزالة الجرذ من الغرفة ، وضعه في الفضاء الجراحي ، وقم بتوصيل إيزوفلوران مستمر (3٪) عبر قناع الوجه. بعد اختبار قرصة إصبع القدم ، يقوم الهيبارين بالحيوان من خلال الوريد القضيبي مع 30 U من الهيبارين. حلق الفئران عبر كامل البطن ومنطقة الصدر العلوي. إزالة نشارة الفراء من المجال الجراحي. قم بلصق كل طرف لضمان عدم الحركة أثناء الجراحة. قم بعمل شق أفقي في خط الوسط في جلد أسفل البطن ، مما يعرض عضلات البطن. قم بعمل شق أفقي ثان في خط الوسط في عضلات البطن لكشف الأعضاء الداخلية. كشف القص ، وتثبيته مع مرقئ ، وسحبه الجمجمة لفضح الكبد والوريد البابي. قنية الوريد البابي باستخدام قسطرة وعائية قياس 16. نعلق حقنة 60 مل من محلول ملحي الهيبارين إلى قسطرة الأوعية وإنشاء شق في الوريد الأجوف السفلي والشريان الأورطي البطني للتنفيس. اغسل الكمية الكاملة من المحلول الملحي عبر الوريد البابي.ملاحظة: يجب أن يظل ضغط التنظيف حوالي 10 مم زئبق. قم بعمل قطع أفقي في الحجاب الحاجز ، متبوعا بقطع قريب من خلال الأضلاع على جانبي القص للكشف عن التجويف الصدري. أخرج القلب من التجويف وضعه على الفور على طبق بتري مع محلول ملحي على الجليد. تحديد قوس الأبهر ، والمشبك مع مرقئ ، وكشف الشريان الأورطي النازل عن طريق تنظيف أي نسيج ضام متبقي. قم بعمل قطع أفقي في منتصف الطريق عبر الشريان الأورطي الهابط وقم بالقنية باستخدام قسطرة وعائية 14 G.ملاحظة: لا تخترق الصمام الأبهري بالقنية. قم بتأمين القنية عن طريق خياطة فوق الكفة وحرر المرقئ. دع القلب يبقى على الجليد حتى يوضع في نظام التروية. 6. بدء التروية اضبط تدفق المضخة التمعجية على 1.0 مل / دقيقة.ملاحظة: يتم التعامل مع القنية الأبهرية دائما بزاوية 90 درجة فيما يتعلق بالقلب لتجنب إدخال الفقاعات في الشرايين التاجية (الشكل 1 ب). وزن القلب مع القنية قبل ربط القلب بالنظام.ملاحظة: يجب أن تكون قنية الأبهر خالية تماما من أي فقاعات هواء. قم بتوصيل القنية بالموصل في النظام وابدأ مؤقتا. بمجرد أن يصاب القلب بالانقباض الكامل ، قم بزيادة التدفق بمقدار 0.2 مل / دقيقة مع مراقبة الضغوط عن كثب. توقف عن زيادة التدفق عند الوصول إلى الضغوط المطلوبة أو حتى يتم الوصول إلى 3.5 مل / دقيقة كحد أدنى.نضح الضغط المنخفضبالنسبة للضغوط بين 30-35 مم زئبق ، استخدم تدفقا قدره 4.5 مل / دقيقة. ابدأ تشغيل مضخة حقنة الأدينوزين. نضح الضغط العاليبالنسبة للضغوط بين 70-80 مم زئبق ، استخدم الحد الأدنى للتدفق 5.0 مل / دقيقة. ابدأ تشغيل مضخة حقنة الأدينوزين. 7. البالون داخل البطيني: قم بتوصيل بالون لاتكس صغير (50 ميكرولتر) بقسطرة بالون (قطر 2 مم وطول 15 سم) بطرف مدبب (قطر 1.4 مم). قم بتوصيل القسطرة بجهاز استشعار الضغط عبر موصل قفل luer ، وقم بتأمين الإعداد بالكامل بحامل مشبك. املأ البالون / القسطرة / مستشعر الضغط بحوالي 200 ميكرولتر من المحلول الملحي عبر حقنة متصلة بالطرف العلوي من مستشعر الضغط ، وقم بإزالة الفقاعات من داخل المستشعر والقسطرة والبالون. معايرة مستشعر الضغط باستخدام مقياس ضغط الدم. قم بعمل شق أفقي صغير فوق الأذين الأيسر. تفريغ البالون عن طريق سحب المحقنة في الجزء العلوي من مستشعر الضغط وإدخالها في البطين الأيسر. ابدأ في الحصول على البيانات ونفخ البالون حتى تقرأ الضغوط الانبساطية 0 مم زئبق. 8. أخذ العينات اجمع معدل ضربات القلب وتدفق الأبهر والضغط التاجي بعد أول 20 دقيقة من التروية وكل ساعة بعد ذلك. 9. إنهاء / تنظيف في نهاية التروية ، أخرج القلب من النظام وقم بوزنه لتقدير الوذمة. قطع قمة القلب عن طريق قطع محيطي وتجميد سريع في النيتروجين السائل لتحليلات ما بعد التروية. قطع قطعة محيطية من القلب للتصوير النسيجي وتلطيخ. تخلص من بقية القلب والقنية. شطف جميع مكونات النظام عن طريق إضافة كميات وفيرة من الماء منزوع الأيونات (DI) في الخزان وتشغيل المضخة التمعجية. جمع الماء في دلو خارجي. كرر الخطوة 9.4 مرتين إلى ثلاث مرات. اشطف جميع منافذ العينات وأنابيب مستشعر الضغط جيدا. املأ الخزان ب 600 مل من ماء DI و 3 مل من مضخة المنظفات من الدرجة المختبرية في جميع أنحاء النظام. قم بإيقاف تشغيل سخان المياه وخزان الأكسجين والمضخة التمعجية.

Representative Results

تم حصاد قلوب ذكور فئران لويس البالغة (250-300 جم من وزن الجسم) وتعطيرها عند ضغوط نضح عالية (70-80 مم زئبق) أو منخفضة (30-35 مم زئبق) (ن = 3 لكل مجموعة). تم تحديد آثار ضغط التروية على وظيفة القلب والصحة بشكل عام من خلال جمع معدل ضربات القلب والوذمة ووظيفة البطين الأيسر. تم تحديد علاقة واضحة بين معدل ضربات القلب وضغوط التروية (الشكل 2). كان معدل ضربات القلب أعلى إحصائيا في القلوب عالية الضغط عند مقارنته بالقلوب منخفضة الضغط لجميع النقاط الزمنية ، باستثناء الأول (60 دقيقة ، الشكل 2 أ ، ب). ومن المثير للاهتمام ، يبدو أن القلوب ذات الضغط المنخفض تخضع لفترة من التكيف في بداية التروية ، حيث استغرق الأمر حوالي 30 دقيقة حتى يستقر معدل ضربات القلب ويصل إلى المستويات التي تم الحفاظ عليها خلال بقية التروية (الشكل 2 أ). كما لوحظ اختلاف كبير في ضغط نبض البطين الأيسر (LVPP) بين المجموعات ، حيث كان LVPP للقلوب عالية الضغط أعلى إحصائيا من القلوب منخفضة الضغط في كل نقطة زمنية (الشكل 3B). أدى هذا الطلب المرتفع المستمر على العمل إلى فقدان تدريجي للوظيفة في قلوب الضغط العالي مع انخفاض إحصائي في LVPP شوهد بعد 2 ساعة من التروية (الشكل 3 أ ، ب). بدلا من ذلك ، لم يكن هناك فقدان للوظيفة في القلوب ذات الضغوط المنخفضة ، مع بقاء LVPP دون تغيير طوال وقت التروية (الشكل 3 أ ، ب). على غرار LVPP ، أظهرت القلوب عالية الضغط تقلصا أعلى لعضلات القلب (dP / dtmax) والاسترخاء (dP / dtmin) طوال فترة التروية مقارنة بالقلوب منخفضة الضغط (الشكل 3C ، D). وفقا لذلك ، خضعت القلوب عالية الضغط لفقدان تدريجي للانقباض والقدرة على الاسترخاء ، مع ارتفاع كلا المعلمتين إحصائيا 1 ساعة في وقت التروية مقارنة بالساعة الأخيرة من التروية. بشكل مختلف ، كانت قدرات انقباض عضلات القلب والاسترخاء منخفضة نسبيا في مجموعة الضغط المنخفض وظلت دون تغيير على مدى 4 ساعات من وقت التروية (الشكل 3C ، D). بالإضافة إلى التأثيرات الوظيفية ، تؤدي ضغوط التروية العالية على مدى فترات طويلة من الزمن أيضا إلى تفاقم احتباس السوائل الخلالي داخل الطعوم القلبية ، مما يؤدي إلى الوذمة. تم تحديد هذه الوذمة بشكل شبه كمي في النسبة المئوية لتغير الوزن وأدت إلى زيادة وزن القلوب ذات الضغط العالي إحصائيا عند مقارنتها بالقلوب التي تتخلل الضغوط المنخفضة (الشكل 2 ج). الشكل 1: إعداد نظام التروية. (أ) الإعداد الكلي للتروية. تمثل الخطوط المتقطعة الترتيب الذي تم به توصيل مكونات النظام لتحسين دوران البيروسات. تمثل الخطوط الصلبة الملونة الترتيب الذي تم توصيل المكونات به لتحسين درجة حرارة البيروسات. ب: الطريقة الصحيحة للتعامل مع القلب بعد القنية لتجنب إفراغ القسطرة وإدخال الهواء في الشرايين التاجية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم. الشكل 2: تأثير الضغط على معدل ضربات القلب والوذمة. أ: معدل ضربات القلب الناتج عن قياسات البالون داخل البطيني. الخط المتصل هو وسيط المجموعات التجريبية. المنطقة المظللة هي النطاق الربيعي. (ب) المساحة الواقعة أسفل المنحنى (AUC) لبيانات معدل ضربات القلب لكل ساعة من التروية. ج: النسبة المئوية للوزن المكتسب بعد 4 ساعات من التروية عند الضغوط المنخفضة والعالية. يتم التعبير عن جميع البيانات كمتوسط ± المدى الربيعي (IQR). * p < 0.01 ، ** p < 0.05 ، ***p < 0.001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم. الشكل 3: تأثير الضغط على وظيفة البطين الأيسر. (أ) الضغط الانقباضي الأقصى المرسوم بمرور الوقت، ويرمز إليه بضغط نبض البطين الأيسر (LVPP). الخط المتصل هو وسيط المجموعات التجريبية. المنطقة المظللة هي النطاق الربيعي. (ب) المنطقة الواقعة تحت منحنى LVPP (AUC) لكل ساعة من التروية. ج: انقباض عضلة القلب مقيسا من المشتقة القصوى لنبضة الضغط. د: ارتخاء عضلة القلب كميا من الحد الأدنى لمشتق نبضة الضغط. يتم التعبير عن جميع البيانات كمتوسط ± المدى الربيعي. * ع < 0.01 ، ** ع < 0.05 ، ***ع < 0.001 ، **** ف < 0.0001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم. أيون التركيز (مليمول / لتر) Na+  135–145 ك +  <6.00 كاليفورنيا +2  1.0–1.3 سل –  96–106 الجدول 1: النطاق المقبول لتركيز الأيونات في البيرفوسات.

Discussion

إن نضح لانجيندورف هو تقنية مرنة للغاية تسمح بالخياطة والتعديل بشكل مثير للإعجاب لتلبية مجموعة واسعة من الاحتياجات التجريبية. يسمح بهذا الخياطة من خلال قابلية التعديل الكبيرة لمعظم معلمات التروية ، بما في ذلك ضغوط التروية. نظرا للطبيعة الرجعية ل Langendorff ، فإن ضغوط التروية تعادل ضغوط التروية التاجية ، والتي تلعب دورا أساسيا في وظيفة القلب. من المعروف أن ضغوط التروية التاجية (CPP) تتحكم بشكل مباشر في عمل القلب ، حيث أن مجموعة واسعة من مؤشرات القلب (أي ضغط البطين الأيسر ، والانقباض (dP /dt max) ، وتوتر الجدار ، وتصلب البطين) تتناسب طرديا مع CPP16،17،18. تاريخيا ، استخدم الحقل ضغوط التروية ، وفي الواقع CPP ، بين 60 مم زئبق و 80 مم زئبق في محاولة لتقليد الظروف الفسيولوجية5،8،15،19،20،21. ومع ذلك ، فإن الطبيعة غير الفسيولوجية للتروية الآلية خارج الجسم الحي إلى الوراء ، إلى جانب ارتفاع الطلب على العمل ، تؤدي إلى فقدان وظيفة القلب مع مرور الوقت (الشكل 3). بدلا من ذلك ، فإن انخفاض ضغوط التروية (30-35 مم زئبق) ، على الرغم من عدم تكرار الظروف الفسيولوجية لقلوب الفئران بدقة في الجسم الحي ، يقلل بطبيعته من الطلب على عمل القلب ويحقق أوقات نضح ممتدة (4 ساعات) دون فقدان الوظيفة مع مرور الوقت (الشكل 3) ، وانخفاض وذمة الكسب غير المشروع (الشكل 2C). يبدو أن استخدام ضغوط التروية المنخفضة ، على الرغم من أنه يدل على انحراف عن CPP الفسيولوجي ، يوفر مزايا مهمة على استخدام ضغوط التروية الفسيولوجية ، حيث أن القضاء على فقدان الوظيفة المعتمد على التقنية أثناء نضح Langendorff يحسن التقنية إلى نظام نموذجي أكثر دقة ويمكن التنبؤ به مع إمكانات كبيرة لتطوير أبحاث القلب والأوعية الدموية. على وجه الخصوص ، أصبحت مجالات البحث التي تفيد و / أو تتطلب أوقات نضح ممتدة للوصول إلى الأهمية العلمية (أي العلاجات الدوائية ، وتحليل الاستجابة المناعية ، وتحرير الجينات ، والحفاظ على الكسب غير المشروع الطبيعي ، وما إلى ذلك) ذات أهمية متزايدة في المعركة ضد الأمراض القلبية الوعائية.

نضح Langendorff هو بلا منازع أداة أساسية في مجال أبحاث القلب والأوعية الدموية. لذلك ، إلى جانب الفوائد الكبيرة التي تطرحها هذه التقنية العلمية على مجتمع البحث ، فإنها تأتي بمستوى مهم من التعقيد العلمي. في الواقع ، هناك العديد من الخطوات الحاسمة ضمن هذا البروتوكول التي تتطلب توحيدا دقيقا ، في المقام الأول لتجنب تلف الكسب غير المشروع القلبي قبل وأثناء وبعد بدء التروية مباشرة. الفرصة الأولى لتلف الكسب غير المشروع غير واضحة أثناء تدفق الوريد البابي. يهدف هذا التدفق بمحلول ملحي هيبارين إلى إزالة أكبر قدر ممكن من الدم الكامل من الطعم القلبي لغرض مزدوج. أولا ، إنه بمثابة وسيلة للقتل الرحيم عن طريق الاستنزاف. ثانيا ، يقلل من فرص التخثر داخل الكسب غير المشروع القلبي أثناء الاسترجاع والقنية والنقل ، حيث من المعروف أن دم الفئران الكامل له أوقات ملابس قصيرة للغاية22,23. ومع ذلك ، بعد المئات من عمليات التروية القلبية الناجحة ، أصبح من الواضح أن الضغط المطبق على كائن الفئران أثناء التنظيف له أهمية مطلقة ، حيث يبلغ ضغط التدفق المثالي حوالي 10 مم زئبق. يبدو أن ارتفاع ضغط تدفق الوريد البابي يؤدي إلى تلف الأوعية الدموية في الطعم القلبي ، مما يؤدي إلى زيادة مقاومة الأوعية الدموية (Equation 1). تؤدي المقاومة الوعائية العالية في الواقع إلى الوصول إلى ضغوط التروية المستهدفة بمعدلات تدفق أقل. يتم نقل هذا الخلل بين الضغط وتدفق الشريان التاجي في ضغط نبض البطين الأيسر المنتج (LVPP) ، مما يؤدي إلى تباين كبير.

المثال التالي لتلف الكسب غير المشروع القلبي المحتمل هو أثناء توصيل الكسب غير المشروع بالنظام عن طريق إدخال فقاعات الهواء في الشريان التاجي. يمكن إدخال فقاعات الهواء بسهولة عن طريق سوء التعامل مع القلب المقن (الشكل 1 ب) أو إزالة الفقاعات بشكل غير صحيح من نظام التروية في المنبع من مصيدة الفقاعات24. نظرا للطبيعة الرجعية لهذا الإعداد ، فإن أي إدخال للهواء سيؤدي إلى انسداد الهواء القلبي ، مما يؤدي إلى إهانات إقفارية ، ورجفان ، وموت الكسب غير المشروع بشكل شائع جدا. أخيرا ، تحدث الخطوة الحاسمة الأخيرة لضمان نجاح البروتوكول أثناء بدء التروية. بشكل مختلف عن الغالبية العظمى من المخطوطات التي تفيد باستخدام Langendorff كتقنية ، يتم بدء التروية في هذا البروتوكول عند تدفقات منخفضة نسبيا (1 مل / دقيقة) مع زيادات تدريجية (+0.2 مل / دقيقة) ، مما يضمن التحكم الكامل في ضغوط التروية5،8،15،19،20،21. هذه الزيادة التدريجية في التدفق ، وبالتالي الضغط ، أمر بالغ الأهمية لأن التغيرات المفاجئة في الضغط تزيد بشكل لا رجعة فيه من مقاومة الأوعية الدموية وتغير توازن التدفق / الضغط الدقيق.

تعتبر المقاومة الوعائية العالية في نضح لانجيندورف الذي يتم التحكم فيه بالضغط أمرا بالغ الأهمية ، حيث يتم الوصول إلى ضغوط التروية المستهدفة عند التدفقات المنخفضة ، وينتج عن الطعوم نقص في الأداء. من المحتمل أن يكون الاعتماد الكبير على هذا التوازن المثالي بين التدفق والضغط هو أكبر قيود هذا البروتوكول ، حيث أن أي ضرر سابق للكسب غير المشروع ، متعمد (أي الحفاظ على البرد الممتد ، وإهانة نقص التروية الدافئة ، واحتشاء عضلة القلب ، وما إلى ذلك) أو غير مقصود ، يؤدي إلى زيادة مقاومة الأوعية الدموية. في الواقع ، هذا البروتوكول مفيد بشكل خاص للبحث حيث تبدأ التجربة بعد بدء التروية (أي العلاجات الدوائية ، وتحليل الاستجابة المناعية ، وتحرير الجينات ، والحفاظ على الكسب غير المشروع الحراري ، وما إلى ذلك) ولكن ليس قبل ذلك. هذا القيد هو مثال ممتاز على أن Langendorff واحد لا يناسب جميع الأغراض ويجب توخي الحذر بشكل خاص لتكييف معلمات التروية لتلبية الاحتياجات التجريبية بشكل أفضل.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل بتمويل سخي ل S.N.T. من المعاهد الوطنية الأمريكية للصحة (K99 / R00 HL1431149; R01HL157803) وجمعية القلب الأمريكية (18CDA34110049). كما نعرب عن امتناننا للتمويل المقدم من المعهد الوطني الأمريكي للصحة (R01DK134590; R24OD034189) ، والمؤسسة الوطنية للعلوم (EEC 1941543) ، وزمالة إليانور ومايلز شور في كلية الطب بجامعة هارفارد ، ومؤسسة عائلة بولسكي ، وجائزة كلافلين للباحث المتميز نيابة عن اللجنة التنفيذية للأبحاث التابعة ل MGH ، و Shriners Children’s Boston (Grant #BOS-85115).

Materials

5-0 Suture Fine Scientific Tools 18020-50
14 G Angiocath Becton Dickinson 381867
16 G Angiocath Becton Dickinson 381957
24 mm Heart Chamber adaptors Radnoti 140132
Balloon Catheter  Radnoti 170423
BD Slip Tip Sterile Syringes- 10 mL Fisher Scientific 14-823-16E
BD Slip Tip Sterile Syringes- 1 mL Fisher Scientific 14-823-434
BD Slip Tip Sterile Syringes- 50 mL Fisher Scientific 14-820-11
Bovine Serum Albumin Sigma A7906
Bubble Trap Compliance Chamber Radnoti 130149
Calcium Chloride Sigma C7902
Clamp Holder United Scientic RTCLMP1
Dextran Sigma 31389
DIN8 Extension Cable Iworx SKU C-DIN-EXT
Falcon High Clarity 50 mL conical tubes Fisher Scientific 14-432-22
GSC Go Science Crazy Cast Iron Support Ring Stand Fisher Scientific S13748
Heart  Chamber Radnoti 140160
Heated Water Circulator bath Cole Parmer N/A
Heparin sodium Injection Medplus G-0409-2720-0409-2721
Hydrocortisone Solu-Cortef MGH Pharmacy
Insulin Humulin R MGH Pharmacy
Insvasive Fluid Filled Blood Pressure Sensor Iworx SKU BP-10x
Iworx Data Acquisition System Iworx IX-RA-834
Krebs-Henseleit Buffer Sigma K3753
Left Ventricular Pressure Balloon Radnoti 170404
Masterflex L/S Easy-Load II Pump Head for Precision Tubing, PPS Housing, SS Rotor VWR MFLX77200-60
Masterflex L/S Standard Digital Pump Systems VWR MFLX07551-30
Membrane Oxygenating Chamber Radnoti 130144
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher Scientific 15140122
Polyethylene Tubing Fisher Scientific 14-170-12H
Precision Pump Tubing-16 VWR MFLX96410-16
Sodium Bicarobonate Sigma 5761
Standard PHD ULTRA CP Syringe Pump Harvard Aparatus 88-3015
Tygon Transfer Tubing VWR MFLX95702-03

References

  1. Cardiovascular Diseases (cvds). World Health Organization Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/cardiovascular-diseases-(cvds) (2021)
  2. Amini, M., Zayeri, F., Salehi, M. Trend analysis of cardiovascular disease mortality, incidence, and mortality-to-incidence ratio: Results from global burden of disease study 2017. BMC Public Health. 21 (1), 401 (2021).
  3. Aune, S. E., Yeh, S. T., Zelinski, D. P., Angelos, M. G. Measurement of hydrogen peroxide and oxidant stress in a recirculating whole blood-perfused rat heart model. Resuscitation. 82 (2), 222-227 (2011).
  4. Lateef, R., Al-Masri, A., Alyahya, A. Langendorff’s isolated perfused rat heart technique: A review. Int J Basic Clin Pharmacol. 4 (6), 1314-1322 (2015).
  5. Herr, D. J., Aune, S. E., Menick, D. R. Induction and assessment of ischemia-reperfusion injury in Langendorff-perfused rat hearts. J Vis Exp. (101), e52908 (2015).
  6. Vervoorn, M., et al. Extended normothermic ex situ heart perfusion without functional decline. J Heart Lung Transplant. 43 (4), S156 (2024).
  7. Moeslund, N., et al. Ex-situ oxygenated hypothermic machine perfusion in donation after circulatory death heart transplantation following either direct procurement or in-situ normothermic regional perfusion. J Heart Lung Transplant. 42 (6), 730-740 (2023).
  8. Testai, L., Martelli, A., Cristofaro, M., Breschi, M. C., Calderone, V. Cardioprotective effects of different flavonoids against myocardial ischaemia/reperfusion injury in Langendorff-perfused rat hearts. J Pharm Pharmacol. 65 (5), 750-756 (2013).
  9. Watanabe, M., Okada, T. Langendorff perfusion method as an ex vivo model to evaluate heart function in rats. Methods Mol Biol. 1816, 107-116 (2018).
  10. Chang, X., et al. Cardioprotective effects of salidroside on myocardial ischemia-reperfusion injury in coronary artery occlusion-induced rats and Langendorff-perfused rat hearts. Int J Cardiol. 215, 532-544 (2016).
  11. Neely, J. R., Liebermeister, H., Battersby, E. J., Morgan, H. E. Effect of pressure development on oxygen consumption by isolated rat heart. Am J Physiol. 212 (4), 804-814 (1967).
  12. Matsuura, H., et al. Positive inotropic effects of atp released via the maxi-anion channel in Langendorff-perfused mouse hearts subjected to ischemia-reperfusion. Front Cell Dev Biol. 9, 597997 (2021).
  13. Louradour, J., et al. Simultaneous assessment of mechanical and electrical function in Langendorff-perfused ex-vivo mouse hearts. Front Cardiovasc Med. 10, 1293032 (2023).
  14. Ueoka, A., et al. Testosterone does not shorten action potential duration in Langendorff-perfused rabbit ventricles. Heart Rhythm. 19 (11), 1864-1871 (2022).
  15. Reichelt, M. E., Willems, L., Hack, B. A., Peart, J. N., Headrick, J. P. Cardiac and coronary function in the Langendorff-perfused mouse heart model. Exp Physiol. 94 (1), 54-70 (2009).
  16. Abel, R. M., Reis, R. L. Effects of coronary blood flow and perfusion pressure on left ventricular contractility in dogs. Circ Res. 27 (6), 961-971 (1970).
  17. Arnold, G., Morgenstern, C., Lochner, W. The autoregulation of the heart work by the coronary perfusion pressure. Pflugers Arch. 321 (1), 34-55 (1970).
  18. Iwamoto, T., Bai, X. J., Downey, H. F. Coronary perfusion related changes in myocardial contractile force and systolic ventricular stiffness. Cardiovasc Res. 28 (9), 1331-1336 (1994).
  19. Rossello, X., Hall, A. R., Bell, R. M., Yellon, D. M. Characterization of the Langendorff perfused isolated mouse heart model of global ischemia-reperfusion injury: Impact of ischemia and reperfusion length on infarct size and LDH release. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 21 (3), 286-295 (2016).
  20. Headrick, J. P., Peart, J., Hack, B., Flood, A., Matherne, G. P. Functional properties and responses to ischaemia-reperfusion in Langendorff perfused mouse heart. Exp Physiol. 86 (6), 703-716 (2001).
  21. Noly, P. E., Naik, S., Tang, P., Lei, I. Assessment of ex vivo murine biventricular function in a Langendorff model. J Vis Exp. (190), e64384 (2022).
  22. Garcia-Manzano, A., Gonzalez-Llaven, J., Lemini, C., Rubio-Poo, C. Standardization of rat blood clotting tests with reagents used for humans. Proc West Pharmacol Soc. 44, 153-155 (2001).
  23. Lewis, J. H., Van Thiel, D. H., Hasiba, U., Spero, J. A., Gavaler, J. Comparative hematology and coagulation: Studies on rodentia (rats). Comp Biochem Physiol A Comp Physiol. 82 (1), 211-215 (1985).
  24. Motayagheni, N. Modified Langendorff technique for mouse heart cannulation: Improved heart quality and decreased risk of ischemia. MethodsX. 4, 508-512 (2017).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Pendexter, C. A., Bolger-Chen, M., Lopera Higuita, M., Cronin, S. E. J., Rabi, S. A., Osho, A. A., Tessier, S. N. Modified Langendorff Perfusion for Extended Perfusion Times of Rodent Cardiac Grafts. J. Vis. Exp. (208), e66815, doi:10.3791/66815 (2024).

View Video