Durante el desarrollo de la corteza cerebral, las neuronas y las células gliales se originan en la zona ventricular que recubre el ventrículo y migran hacia la superficie cerebral. Muchos genes están involucrados en este proceso. Este protocolo introduce la técnica para la obtención de imágenes en time-lapse de las neuronas migratorias y los progenitores gliales.
Durante el desarrollo de la corteza cerebral, las neuronas y las células gliales se originan en la zona ventricular que recubre el ventrículo y migran hacia la superficie cerebral. Este proceso es crucial para el correcto funcionamiento del cerebro, y su desregulación puede dar lugar a trastornos del neurodesarrollo y psiquiátricos después del nacimiento. De hecho, se ha descubierto que muchos genes responsables de estas enfermedades están involucrados en este proceso y, por lo tanto, revelar cómo estas mutaciones afectan la dinámica celular es importante para comprender la patogénesis de estas enfermedades. Este protocolo introduce una técnica para la obtención de imágenes en time-lapse de las neuronas migratorias y los progenitores gliales en cortes de cerebro obtenidos de embriones de ratón. Las células se marcan con proteínas fluorescentes mediante electroporación en el útero , que visualiza células individuales migrando desde la zona ventricular con una alta relación señal-ruido. Además, este sistema de transferencia de genes in vivo nos permite realizar fácilmente experimentos de ganancia o pérdida de función en los genes dados mediante co-electroporación de su expresión o vectores de knockdown/knockout. Utilizando este protocolo, se puede analizar el comportamiento migratorio y la velocidad de migración de las células individuales, información que nunca se obtiene de cerebros fijos.
Durante el desarrollo de la corteza cerebral, la glía radial (apical) en la zona ventricular paleal (VZ) que recubre el ventrículo lateral produce primero neuronas y luego progenitores gliales con algún período de superposición1. Las neuronas también se generan a partir de progenitores intermedios o glía radial basal en la zona subventricular (SVZ) adyacente a la VZ, los cuales se originan en la glía radial (apical) 2,3. En ratones, las células gliales radiales producen solo neuronas en el día embrionario (E) 12-14, tanto neuronas como progenitores gliales en E15-16, y progenitores gliales a partir de E174. La mayor población de progenitores gliales generados durante estas etapas embrionarias se diferencia preferentemente en astrocitos, aunque algunas células también se diferencian en oligodendrocitos5. Las neuronas y los progenitores de astrocitos generados en estas etapas migran hacia la superficie del cerebro y entran en la placa cortical (futura materia gris cortical). La migración neuronal de la VZ a la placa cortical se produce en múltiples fases. Las neuronas primero adoptan una morfología multipolar justo por encima de la zona de acumulación celular multipolar (MAZ), superponiéndose a la SVZ o zona intermedia, donde se extienden y retraen vigorosamente múltiples procesos delgados y migran lentamente (migración multipolar)6,7. Después de aproximadamente 24 h, las neuronas se transforman en una morfología bipolar, extendiendo un proceso de avance grueso hacia la superficie del cerebro y un proceso de arrastre delgado hacia atrás, y migran linealmente hacia la superficie del cerebro utilizando un proceso radial que se extiende desde la glía radial hasta la superficie pial como un andamio, que se denomina modo de locomoción 2,8. Debido a que las neuronas en modo de locomoción siempre alcanzan la superficie más externa de la placa cortical, pasando a través de sus predecesoras justo debajo de la zona marginal, las neuronas se alinean de adentro hacia afuera dependiendo de la fecha de nacimiento en la placa cortical 9,10,11.
Por el contrario, los progenitores de los astrocitos migran rápidamente a la zona intermedia y a la placa cortical, con frecuentes cambios de dirección. Este comportamiento migratorio es completamente diferente a la migración neuronal y se denomina migración errática5. Los progenitores de astrocitos también migran a lo largo de los vasos sanguíneos en un proceso llamado migración guiada por los vasos sanguíneos. Los progenitores de astrocitos cambian entre estos modos de migración y alcanzan la placa cortical 5,12. A pesar de que la posición de los astrocitos no está estrictamente determinada por su fecha de producción, se ha observado una leve tendencia de los astrocitos nacidos temprano a establecerse en la parte superficial de la placa cortical5. Curiosamente, los astrocitos que se asientan en la placa cortical se generan en etapas embrionarias y eventualmente se diferencian en astrocitos protoplasmáticos, mientras que los astrocitos generados postnatalmente no migran activamente, permanecen en la sustancia blanca y se diferencian en astrocitos fibrosos5. Todavía no está claro cómo se produce esta especificación dependiente de la etapa de los subtipos astrocíticos.
Se ha identificado un número creciente de genes implicados en la migración neuronal, entre ellos los implicados en los trastornos del neurodesarrollo y psiquiátricos13,14. Por lo tanto, es crucial dilucidar los efectos de las mutaciones en estos genes en el comportamiento de las neuronas migratorias. Como se mencionó anteriormente, la migración neuronal ocurre en múltiples fases. Las observaciones time-lapse pueden determinar directamente la fase que se ve principalmente afectada (salida del ciclo celular, transición multipolar-bipolar, velocidad de migración de la locomoción, etcétera). Sin embargo, los mecanismos moleculares que subyacen a la especificación, migración y posicionamiento de los astrocitos siguen siendo en gran medida desconocidos. Dado que los astrocitos desempeñan un papel crucial en la sinaptogénesis15 y en la formación de barreras hematoencefálicas durante el desarrollo del cerebro16, los defectos del desarrollo de los astrocitos pueden dar lugar a trastornos del neurodesarrollo. Los estudios de lapso de tiempo sobre los progenitores de astrocitos pueden aclarar estos mecanismos moleculares y su relación con las enfermedades mentales.
Este protocolo proporciona un método para la observación en lapso de tiempo de las células corticales derivadas de VZ. Ya se ha publicado un protocolo de vídeo similar para la observación de la migración neuronal17. Aquí, describimos el método para las neuronas migratorias y los progenitores de astrocitos. Para marcar estas células con proteínas fluorescentes, como las proteínas fluorescentes verdes y rojas (GFP y RFP), se introducen mezclas de plásmidos que contienen componentes apropiados en la VZ cortical mediante electroporación en el útero en etapas apropiadas 18,19,20,21. Los embriones manipulados se extraen en las etapas deseadas, y los cerebros se cortan y se utilizan para observaciones de lapso de tiempo utilizando un microscopio de escaneo láser. La velocidad de migración, la dirección y otros comportamientos, que nunca se abordan con muestras fijas de cerebro, se pueden examinar con este método. Mediante el uso de electroporación en el útero, la expresión y los vectores knockdown/knockout pueden transferirse fácilmente de forma concomitante con vectores de proteínas fluorescentes, lo que nos permite realizar estudios de ganancia y pérdida de función de genes específicos.
Este protocolo introdujo un método para la observación en lapso de tiempo de células derivadas de la VZ paleal (cortical). Para etiquetar las células migratorias de la VZ, utilizamos la electroporación en el útero, en la que las células individuales se marcaron claramente con una relación señal-ruido más alta que en el etiquetado mediado por vectores virales. Utilizando la electroporación intrauterina, cualquier tipo de vector en cualquier combinación puede introducirse fácilmente en las c?…
The authors have nothing to disclose.
El promotor de Tα1 es un regalo de P. Barker y F.D. Miller. El promotor Dcx es un regalo de Q. Lu. hGFAP-Cre fue un regalo de Albee Messing. El sistema vectorial de transposones PiggyBac fue proporcionado por el Instituto Sanger. Los ratones Flt1-DsRed fueron proporcionados por M. Ema (Universidad de Shiga). Este trabajo fue apoyado por JSPS KAKENHI (Subvención Número JP21K07309 a H. Tabata, JP20H05688 y JP22K19365 a K. Nakajima) y la Fundación de Ciencias Takeda, el Fondo Conmemorativo Keio Gijuku Fukuzawa para el Avance de la Educación y la Investigación, los Fondos de Desarrollo Académico Keio Gijuku para K. Nakajima.
Aspirator tube assembly | Drummond | 2-040-000 | |
Atipamezole (5 mg/mL) | Meiji | Mepatia | |
Autoclip | Becton Dickinson | 427630 | 9 mm |
B27 supplement | Gibco | 17504-044 | |
Butorphanol (5 mg/mL) | Meiji | Vetorphale | |
Cell culture insert | Millipore | PICM ORG 50 | |
Confocal microscope | Nikon | A1RHD25 | Equipped with a long working distance lens (S Plan Fluor ELWD 20XC) |
Cryomold | Tissue-Tek | 4566 | |
Culture chamber | Tokken | TK-NBCMP | Custom-made |
Electroporator | NEPA Gene | NEPA21 | |
Fast Green | Sigma-Aldrich | F7258 | |
Gas mixer | Tokken | TK-MIGM01-02 | |
Glass base dish | Iwaki | 3910-035 | Diameter of glass base is 27 mm |
Glass capillaries | Narishige | GD-1 | |
HBS (2x) | Sigma-Aldrich | 51558 | |
HBSS(-) | Wako | 084-08345 | |
Heater Unit | Tokken | TK-0003HU20 | Custom-made, including hood and heater |
hGFAP-Cre | Addgene | #40591 | A gift from Albee Messing |
ImageJ | https://imagej.net/ij/ | ||
L-glutamine (200 mM) | Gibco | 25030 | |
Low melting temperature agarose | Lonza | 50100 | |
Medetomidine (1 mg/mL) | Meiji | Medetomin | |
Microinjector | Narishige | IM-300 | |
Midazolam (5 mg/mL) | Sandoz | Midazolam | |
MTrackJ | https://imagescience.org/meijering/software/mtrackj/ | ||
Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 | |
pCAG-hyPBase | The hyPBase cDNA from pCMV-hyPBase (a gift from Sanger Institute) was inserted into the downstream of the CAG promoter of pCAGGS (a gift from J. Miyazaki). | ||
pDcx-Dre | The Dcx promoter from Dcx4kbEGFP70 (a gift from Q. Lu) was exchanged with CAG promoter of pCAG-NLS-HA-Dre34 (a gift from Pawel Pelczar, Addgene #51272). | ||
Penicillin + Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
Plasmid purification kit | Invitrogen | PureLink HiPure plasmid midiprep kit (K210005) | |
pPB-CAG-LNL-RFP | CAG-LNL cassette from pCALNL-DsRed (a gift from Connie Cepko, Addgene #13769), and TurboRFP cDNA (Evrogen, FP232) were inserted into the cloning site of pPB-CAG.EBNXN (a gift from Sanger Institute). | ||
pPB-CAG-rDIO-EGFP | The sequence containning synthetic rox sites, synthetic DIO cassette, and EGFP cDNA from pEGFP-N1 (Clontech, U55762) in reverse direction were inserted into the cloning site of pPB-CAG.EBNXN (a gift from Sanger Institute). The sequence is provided in the Supplementary File. | ||
Puller | Narishige | PN-31 | |
StackRed | a plugin for ImageJ | http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/stackreg/ | |
Suture needle | Nazme | C-24-521-R No.1 | 1/2 circle, length 14 mm |
Suture thread | Nazme | C-23-B2 | Silk, size 5-0 |
Timed pregnant ICR (wild-type) mice | Japan SLC | ICR mouse | |
TrackMate | https://imagej.net/plugins/trackmate/index | ||
Tweezer-type electrode | BEX or NEPA Gene | CUY650P5 | |
Tα1-EGFP | EGFP cDNA from pEGFP-N1 (Clontech, U55762) was inserted into the downstream of the Tα1 promoter in plasmid 253 (a gift from P. Barker and F.D.Miller) | ||
Vibrating microtome | Leica or Zeiss | Vibrating blade microtome VT1000S or Hyrax V50. |