Summary

투과 전자 현미경을 위한 망막 오가노이드 시료 준비

Published: June 07, 2024
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Summary

이 프로토콜은 투과 전자 현미경을 위한 망막 오가노이드 샘플에 대한 최적화되고 정교한 준비 절차를 제공합니다. 성숙한 망막 오가노이드의 시냅스 분석과 관련된 응용 분야에 적합합니다.

Abstract

망막 오가노이드(RO)는 특정 조건에서 유도만능줄기세포(iPSC)와 구별된 인간의 망막 특징을 모방한 3차원 배양 시스템입니다. RO에서의 시냅스 발달 및 성숙은 면역세포화학적, 기능적으로 연구되어 왔습니다. 그러나 시냅스 접촉 초세구조의 직접적인 증거는 제한적이며, 특수 리본 시냅스와 기존의 화학적 시냅스를 모두 포함합니다. 투과 전자 현미경(TEM)은 고해상도와 인간과 다양한 종의 망막 발달 및 시냅스 성숙을 설명하는 존경할 만한 역사가 특징입니다. RO의 시냅스 구조를 탐구하는 강력한 도구이며 RO의 연구 분야에서 널리 사용됩니다. 따라서 나노 스케일에서 RO 시냅스 접촉의 구조를 더 잘 탐구하고 고품질의 현미경 증거를 얻기 위해 간단하고 반복 가능한 RO TEM 샘플 준비 방법을 개발했습니다. 이 백서에서는 프로토콜, 사용된 시약, RO 고정 준비, 사후 고정, 임베딩 및 시각화를 포함한 자세한 단계를 설명합니다.

Introduction

인간과 포유류의 중요한 시각 감각 기관인 망막은 뉴런 소마를 수용하는 3개의 핵층과 기존 시냅스와 특수 리본 시냅스 2,3을 포함한 시냅스 연결1에 의해 형성된 2개의 망상층을 특징으로 하는 뚜렷한 적층 구조를 나타냅니다. 리본 시냅스는 단계적 방식으로 소포 자극을 전달하는 데 중요한 역할을 합니다 2,3. 시각 과정은 뉴런과 시냅스의 다양한 수준을 가로지르는 전기 광학 신호 전달을 포함하며, 궁극적으로 시각 피질 4,5에 도달합니다.

망막 오가노이드(RO)는 유도만능줄기세포(iPSC)에서 유래한 3차원(3D) 배양 시스템을 나타내며, in vitro 1,6,7 망막 조직의 생리학적 상태를 모방합니다. 이 접근법은 망막 질환8, 약물 스크리닝9을 연구하고, 색소성 망막염(retinitis pigmentosa)10 및 녹내장(glaucoma)11과 같은 비가역적 망막 퇴행성 질환에 대한 잠재적 치료법으로 사용될 수 있는 가능성을 제시한다. 강력한 체외 광학 전도 시스템인 RO 내의 시냅스는 효과적인 신호 변환 및 전달을 촉진하는 중요한 구조입니다5.

RO 발달은 형태학적 특성과 분자 발현 프로파일에 따라 크게 3단계로 나눌 수 있습니다 6,12. 1기(D21-D60 경)의 RO는 망막의 신경 전구 세포, 많은 망막 신경절 세포(RGC) 및 인간 태아 발달의 첫 번째 시기에 해당하는 몇 개의 별폭발 무축삭 세포(SAC)로 구성됩니다. 2단계(약 D50-D150)에서 RO는 일부 광수용체 전구체, 인터뉴런 및 시냅토 형성 관련 유전자를 발현하며, 이는 전이 단계를 나타냅니다. 광수용체는 인간 태아 발달의 세 번째 단계에 해당하는 3단계 RO(D100-D150 이후)에서 성숙을 이룬다(D100-D150 이후) 6,12,13. 주목할 만한 점은, 1기 및 2기의 RO와 비교했을 때, 3기의 RO는 리본 시냅스(ribbon synapses)14의 존재를 포함하여 시냅스(synapses)가 12개 성숙한 뚜렷한 라멜라 구조를 가지고 있다. 더욱이, 최근의 한 연구는 성숙한 시냅스가 빛 신호의 전달에 존재한다는 것을 확인했으며, 이는 시냅스가 기능적임을 나타낸다13. 따라서 3단계의 RO는 종종 시냅스 구조를 조사하기 위해 선택됩니다.

면역조직화학은 다양한 분자 단백질의 발현 연구에 널리 적용됩니다. 그러나 광학 현미경의 한계는 한 번에 제한된 수의 특정 세포와 분자만 관찰할 수 있기 때문에 세포와 주변 환경 간의 관계에 대한 포괄적인 분석이 부족하다는 것입니다. 투과 전자 현미경(TEM)은 0.1-0.2nm의 제한된 해상도로 고해상도가 특징이며 광학 현미경을 ~10-20배15배 능가합니다. 그것은 광학 현미경의 결함을 보완하고 인간16,17 및 다양한 종 18,19,20,21에서 망막 발달 및 시냅스 성숙을 설명하는 데 사용됩니다. TEM은 시냅스전(presynaptic) 및 시냅스후(postsynaptic) 구성 요소(18,20)를 직접 구별할 수 있으며, 리본(ribbons) 2,3, 소포(vesicles)22 및 미토콘드리아(mitochondria)(23)와 같은 세포 내 구조를 포괄적으로 관찰할 수 있습니다. 따라서 TEM은 시냅스 유형을 식별하고 나노 스케일에서 RO의 시냅스 접촉의 미세 구조를 탐구하는 데 필수적인 도구입니다.

샘플 준비는 고품질 전자 현미경 사진을 획득하는 데 매우 중요하다는 점에 유의하는 것이 중요합니다. 일부 연구에서 RO 12,13,24에 대해 EM을 수행했지만 자세한 절차는 불분명합니다. 전자 현미경 이미지의 품질은 RO 고정 및 시약 투과의 효과에 크게 좌우되기 때문에 준비 중에 여러 가지 중요한 요소를 고려해야 합니다. 결과적으로, RO의 시냅스 접촉을 더 잘 조사하기 위해 RO 고정, 임베딩 및 관찰 부위 식별의 작동 지점을 보여주는 재현성이 우수한 방법을 제시합니다.

Protocol

1. iPSC에서 RO 얻기25 참고: RO는 이전에 보고된 절차를 수정하여 iPSC에서 파생되었습니다. 박테리아 프로테아제를 사용하여 ~90% 합류점에서 iPSC를 해리합니다( 재료 표 참조). 콜로니를 조각으로 자르고 셀 리프터로 긁어냅니다. 채취 후 세포 클러스터를 0.25mL의 얼음처럼 차가운 Matr…

Representative Results

iPSC 분화를 통한 3D RO의 확립은 망막 질환 메커니즘 및 줄기세포 대체 요법을 연구하기 위한 강력한 도구를 제공합니다. 다른 연구자들이 RO의 시냅스 연결을 기능적 및 면역세포화학적으로 입증했지만, 기존 시냅스와 리본 시냅스의 직접적인 증거는 매우 제한적입니다. 여기에서는 TEM에 의해 RO에서 두 가지 유형의 시냅스의 미세 구조를 조사하는 방법을 제시합니다. 180?…

Discussion

이 기사에서는 TEM에 의한 RO의 기존 및 리본 시냅스 초미구조를 관찰하기 위한 자세한 프로토콜을 제시했습니다. 이 프로토콜은 이전에 설명한 망막 준비 방법에 기초하며, 약간의 변형이 가미되어있다(20). 샘플 처리의 성공률과 TEM 현미경 사진의 품질을 개선하려면 다음 핵심 사항을 고려하십시오. 첫째, RO가 iPSC에서 발생하여 혈관 구조</s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 중국 국가핵심연구개발프로그램(National Key Research and Development Program of China, 2022YFA1105503), 국가핵심신경과학연구소(State Key Laboratory of Neuroscience, SKLN-202103), 중국 저장자연과학재단(Zhejiang Natural Science Foundation of China, Y21H120019), 중국자연과학재단(Natural Science Foundation of China, 82070981)의 보조금으로 일부 지원되었습니다.

Materials

100 mm Petri dish Corning 430167
Acetone Electron Microscopy Science 10000
B27 supplement Gibco A3582801
Cell lifter Santa Cruz sc-395251
Copper grids Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. AZH400HH
DigitalMicrograph Software Gatan, Inc. Software
Dispase StemCell Technologies #07913 Bacterial protease
DMEM/F12 medium Gibco #11320033
Embedding mold Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. GZ10592
Epon-812 resin Electron Microscopy Science #14900
Fetal Bovine Serum (FBS) Biological Industries #04-0021A
Glutaraldehyde Electron Microscopy Science 16020
hiPSC Shownin Biotechnology Co. Ltd. RC01001-A
Lead citrate Beijing Zhongjingkeyi Technology Co., Ltd. GZ02618
L-GlutaMax Life Technologies #35050061 L-glutamine substitute
Matrigel Corning 356234
Microscope slide CITOTEST 80312-3161
N2 supplement Gibco 17502048
Na2HPO4· 12H2O Sigma 71650 A component of PB/PBS
NaH2PO4· H2O Sigma 71507 A component of PB/PBS
Non-essential amino acids Sigma #M7145
Optical microscope Lab Binocular Biological Microscope Xsz-107bnii
OsO4 TED PELLA 4008-160501
Oven Bluepard BPG9040A
Paraformaldehyde Electron Microscopy Science 157-8
Penicillin-Streptomycin Gibco #15140-122
Semi/ultrathin microtome Reichert-Jung 396649
Taurine Sigma #T0625
Toluidine blue Sangon Biotech E670105-0100
Transmission Electron Microscopes HITACHI H-7500
Uranyl acetate TED PELLA CA96049
β-mercaptoethanol Sigma 444203

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Cite This Article
Liu, X., Rao, B., Lin, Q., Gao, M., Zhang, J. Preparing Retinal Organoid Samples for Transmission Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (208), e66590, doi:10.3791/66590 (2024).

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