Summary

RGBradford: Quantificação de proteínas com uma câmera de smartphone

Published: September 08, 2023
doi:

Summary

Este trabalho fornece um protocolo para quantificação de proteínas usando o ensaio de Bradford e um smartphone como dispositivo analítico. Os níveis de proteína nas amostras podem ser quantificados usando dados de cor extraídos de uma foto de uma microplaca tirada com um smartphone.

Abstract

A quantificação de proteínas é um procedimento essencial na pesquisa em ciências da vida. Dentre vários outros métodos, o ensaio de Bradford é um dos mais utilizados. Devido à sua difusão, as limitações e vantagens do ensaio de Bradford foram exaustivamente relatadas, incluindo várias modificações do método original para melhorar seu desempenho. Uma das alterações do método original é o uso de uma câmera de smartphone como instrumento analítico. Aproveitando as três formas do corante Coomassie Brilliant Blue que existem nas condições do ensaio de Bradford, este artigo descreve como quantificar com precisão a proteína em amostras usando dados de cor extraídos de uma única imagem de uma microplaca. Depois de realizar o ensaio em uma microplaca, uma foto é tirada usando uma câmera de smartphone, e os dados de cor RGB são extraídos da imagem usando um aplicativo de software de análise de imagem gratuito e de código aberto. Em seguida, a razão entre a intensidade azul e verde (na escala RGB) de amostras com concentrações desconhecidas de proteína é usada para calcular o conteúdo proteico com base em uma curva padrão. Não há diferença significativa entre os valores calculados com dados de cor RGB e aqueles calculados com dados convencionais de absorbância.

Introduction

Independentemente do uso a jusante (por exemplo, ELISA, cinética enzimática, western blotting, purificação de proteínas e espectrometria de massa), a quantificação de proteínas é crucial para análises precisas em laboratórios de ciências da vida. Além de seu uso como leituras secundárias (ou seja, para calcular níveis relativos de analitos por massa de proteína), os níveis de proteína em uma amostra também podem ser a saída desejada em si. Por exemplo, pode-se estar interessado nos níveis de proteína nos recursos alimentares1 ou na urina2. Existem muitos métodos disponíveis para medir a concentração de proteínas em amostras3, incluindo leituras diretas de absorbância UV4, quelação proteína-cobre 5,6, ensaios colorimétricos de ligação proteína-corante7 e ensaios fluorescentes de ligação proteína-corante8. A relevância da quantificação de proteínas é evidenciada pela presença de dois trabalhos descrevendo métodos de dosagem deproteínas5,7 no top-3 da literatura maiscitada9,10. Apesar do fato de que muitos autores negligenciam sua citação real citando referências não primárias ou não citando nada, os artigos originais descrevendo o ensaio de proteína de Lowry e o ensaio de proteína de Bradford totalizam > 200.000 citações a cada10.

A popularidade do ensaio de Bradford deriva de sua acessibilidade, simplicidade, velocidade e sensibilidade. O ensaio é baseado na interação entre proteínas e o corante Coomassie Brilliant Blue G sob condições ácidas. Sob as condições do ensaio (isto é, pH baixo), o corante existe em três formas: uma forma catiônica vermelha com λmax a 470 nm; uma forma neutra verde com λmax a 650 nm; e uma forma aniônica azul com λmax a 590 nm11,12 (Figura 1). A forma catiônica predomina na ausência de proteínas. À medida que as proteínas interagem com o corante, elas estabilizam a forma aniônica azul, causando uma mudança perceptível na cor da solução, de acastanhada para azul. Normalmente, a mudança na concentração da forma azul do corante é quantificada espectrofotometricamente, cuja absorbância a 590-595 nm é proporcional à quantidade de proteína no ensaio.

Figure 1
Figura 1: Espectros de absorção de Coomassie azul brilhante G nas condições do ensaio de Bradford. Os três picos principais são marcados com setas indicando o λmax das formas vermelha (470 nm), verde (650 nm) e azul (590 nm) do corante. Os espectros foram registrados na ausência de proteína (linha amarela) e na presença de 3 μg (linha cinza) e 10 μg (linha azul) de albumina de soro bovino. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

O amplo uso do ensaio de Bradford levou à identificação de várias limitações (por exemplo, respostas variáveis a diferentes proteínas11 e interferência de lipídios13 e detergentes7) e ao desenvolvimento de modificações para melhorar seu desempenho (por exemplo, adição de detergentes14,15, alcalinização14,16 e uso da razão de absorbâncias17). Além das modificações no próprio ensaio, também tem sido descrito o uso de dispositivos alternativos, como smartphones ou câmeras, para captação de sinais analíticos 18,19,20. De fato, o desenvolvimento de métodos que fazem uso de smartphones como analisadores químicos portáteis tem sido uma área ativa de pesquisa. A motivação para o uso de smartphones decorre da acessibilidade, portabilidade, facilidade de uso e ampla disponibilidade desses dispositivos.

Este trabalho fornece um protocolo para quantificação de proteínas usando o ensaio RGBradford20, que usa um smartphone como dispositivo analítico. Em contraste com a publicação RGBradford original20, aqui, um procedimento que agiliza o processo de extração de cores foi introduzido. Envolve a utilização de um aplicativo de software disponível gratuitamente para extrair informações de cor de cada poço de uma imagem de microplaca automaticamente, economizando tempo e esforço significativos. Esta é uma alternativa ao método anterior de aquisição manual de dados de cores de cada poço, um a um, usando um aplicativo de software editor gráfico20. Em última análise, os níveis de proteína em amostras podem ser quantificados usando dados de cor extraídos de uma foto de uma microplaca tirada com um smartphone.

Protocol

1. Preparação do reagente para ensaio de proteína de Bradford Dissolver 100 mg de Coomassie Brilliant Blue G em 50 mL de etanol 95% (p/v). Misture até que o Coomassie Brilliant Blue G esteja completamente dissolvido.CUIDADO: O etanol é inflamável e causa irritação ocular. Evite chamas e use óculos. À solução anterior, adicionar cuidadosamente 100 ml de ácido fosfórico a 85% (p/v).CUIDADO: O ácido fosfórico é corrosivo para metais e causa corrosão cutânea, da…

Representative Results

A Figura 4 é a figura de uma microplaca da qual foram extraídos dados de cor, e a absorbância a 450 nm e 590 nm foi registrada. Os dados de cor RGB aqui relatados como representativos foram obtidos automaticamente conforme descrito na seção 5. Um padrão típico de dados de cores é um aumento nos valores de azul e uma diminuição nos valores de vermelho e verde (Figura 5). Observe que, apesar da reflexão evidente em todos os poços e de uma microplaca n?…

Discussion

Este artigo descreve o RGBradford, um método que usa uma câmera de smartphone para gravar dados de um ensaio de proteína de Bradford, extrair dados de cor e quantificar com precisão os níveis de proteína em amostras biológicas, como originalmente descrito recentemente20. Uma diferença em relação ao método RGBradford original é que aqui foi usado um procedimento para obter dados de cores automaticamente com um plugin ImageJ22 . A principal novidade do método RGB…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq, Brasil) [processos 428048/2018-8 e 402556/2022-4] e pela Universidade de Brasília (Brasil). O autor agradece ao Dr. Duarte Nuno Carvalho e à Dra. Evelyn Santos (i3s, Porto, Portugal) pelo acesso aos seus smartphones utilizados nesta investigação.

Materials

96-well flat-bottom polystyrene microtiter plates  Jet Biofil, Guangzhou, China TCP011096 Any flat-bottom microplate compativle with optical reading will suffice. 
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich, St. Louis, MO A2153
Coomassie Brilliant Blue G Sigma-Aldrich, St. Louis, MO B0770
Ethyl alcohol
iPhone 11 Apple MWM02BR/A Can be substituted with other smartphone equiped with a camera
iPhone 14 Pro Apple N/A
Phosphoric acid Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 695017
Redmi Note 9 Pro XIAOMI  N/A
S22 Ultra Samsung  N/A
SpectraMax 384 Plus. Microplate reader. Molecular Devices, San Jose, CA PLUS 384 Any microplate reader capable of reading at 450 nm and 590 nm will work. This is optional. The method was actually created to dismiss the need of a microplate reader.

References

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Cite This Article
Moreira, D. C. RGBradford: Protein Quantitation with a Smartphone Camera. J. Vis. Exp. (199), e65547, doi:10.3791/65547 (2023).

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