Este protocolo descreve a fabricação de um material simulador estável e biologicamente relevante para aplicações de imagens biomédicas ópticas e acústicas, apresentando propriedades acústicas e ópticas ajustáveis independentemente.
Estabelecer materiais simuladores biofotônicos que mimetizam tecidos e que forneçam estabilidade a longo prazo são imperativos para permitir a comparação de dispositivos de imagem biomédica entre fornecedores e instituições, apoiar o desenvolvimento de padrões reconhecidos internacionalmente e auxiliar a tradução clínica de novas tecnologias. Aqui, é apresentado um processo de fabricação que resulta em um material copolímero em óleo estável, de baixo custo e que imita tecidos para uso em esforços de padronização fotoacústica, óptica e ultrassônica.
O material base consiste em óleo mineral e um copolímero com números definidos do Chemical Abstract Service (CAS). O protocolo aqui apresentado produz um material representativo com velocidade do som c(f) = 1.481 ± 0,4 m·s-1 a 5 MHz (corresponde à velocidade do som da água a 20 °C), atenuação acústica α(f) = 6,1 ± 0,06 dB·cm-1 a 5 MHz, absorção óptica μ a(λ) = 0,05 ± 0,005 mm-1 a 800 nm, e espalhamento óptico μs‘(λ) = 1 ± 0,1 mm-1 a 800 nm. O material permite sintonia independente das propriedades acústicas e ópticas, variando, respectivamente, a concentração do polímero ou espalhamento de luz (dióxido de titânio) e agentes absorventes (corante solúvel em óleo). A fabricação de diferentes desenhos de fantasmas é exibida e a homogeneidade dos objetos de teste resultantes é confirmada usando imagens fotoacústicas.
Devido ao seu processo de fabricação fácil e repetível e durabilidade, bem como suas propriedades biologicamente relevantes, a receita do material é altamente promissora em iniciativas multimodais de padronização acústico-óptica.
Estabelecer a precisão e a acurácia de novos biomarcadores de imagem óptica por meio de validação técnica 1,2 é fundamental para garantir sua implementação bem-sucedida na prática clínica. Para tanto, os estudos de validação técnica empregam frequentemente simuladores físicos duráveis, que facilitam a avaliação de desempenho interinstrumentos e o controle de qualidade rotineiro. Para o uso generalizado de um material fantasma em pesquisa e tradução clínica, um protocolo de fabricação simples e altamente reprodutível é necessário. Um material simulador biofotônico ideal deve incluir as seguintes propriedades3: (1) propriedades ajustáveis independentemente dentro de intervalos biologicamente relevantes; (2) robustez mecânica; (3) estabilidade a longo prazo; (4) flexibilidade em geometria e arquitetura; (5) manuseio seguro; (6) ingredientes amplamente disponíveis que podem ser comprados de fornecedores científicos padrão; e (7) baixo custo. Atualmente, as aplicações biofotônicas carecem de um protocolo padronizado para um material simulador amplamente aceito que atenda aos requisitos descritos e também inclua propriedades acústicas ajustáveis para aplicações híbridas, como imagens fotoacústicas (PAI).
Materiais simuladores biologicamente relevantes e direcionados para aplicações ópticas e acústicas combinadas incluem hidrogéis 4,5, álcool polivinílico (PVA)6,7,8,9 e plastisol de cloreto de polivinila (PVCP)10,11,12,13,14,15,16 . No entanto, esses materiais são caracterizados por certas limitações que restringem sua aplicação como um material simulador estável. Os hidrogéis, por exemplo, são propensos à desidratação, danos mecânicos e crescimento bacteriano, limitando sua vida de prateleira17,18,19. A adição de produtos químicos pode aumentar a longevidade, mas conservantes comuns, como formaldeído20 ou cloreto de benzalcônio21, são perigosos e requerem medidas de precaução durante o manuseio. Além disso, alvos contendo corantes solúveis em água podem se difundir dentro do material base se não forem encapsulados. Os criogéis de PVA caracterizam-se por maior longevidade e robustez estrutural, mas seu processo de preparação envolve longos ciclos de congelamento-descongelamento22. Isso pode limitar a sintonia independente dos parâmetros acústicos e ópticos23 e, se ligeiramente variado, pode levar a inomogeneidades6, comprometendo a reprodutibilidade. Além disso, a difusão de corantes a partir de inclusões tem sido observada após 1 ano13. O PVCP possui um complexo processo de fabricação que inclui altas temperaturas de até 180-220 °C 13,14,24,25. O PVCP também sofre com a falta de uma cadeia de suprimentos com fornecedores científicos26 e pode conter plastificantes à base de ftalatos, que podem causar danos reprodutivos e de desenvolvimento27, tornando-os substâncias controladas em alguns países.
Composições de copolímero em óleo, como cera gel 28,29,30,31 ou blendas à base de elastômeros estirênicos termoplásticos 32,33,34,35,36, apresentam boa estabilidade longitudinal e propriedades acústicas e ópticas semelhantes às tecidos 31,35,36,37, tendo assim alto potencial como candidato fantasma durável em aplicações multimodais. Além disso, essa classe de material é custo-efetiva, não absorvedora de água, atóxica e biologicamente inerte35,38. A velocidade do som c(f) e o coeficiente de atenuação acústica α(f) podem ser ajustados em uma faixa biologicamente relevante (Tabela 1) pela variação da concentração do polímero 33,35,39, enquanto os coeficientes de absorção óptica μa(λ) e de espalhamento reduzidoμ s‘(λ) podem ser primariamente variados pela adição de corantes solúveis em óleo ou dióxido de titânio (TiO2)39, respectivamente.
Aqui, um protocolo simples e fácil de seguir é apresentado para a criação de simuladores duráveis de copolímero em óleo, adequados para uso em calibração óptica, ultrassônica ou de dispositivos fotoacústicos. Todos os ingredientes têm números definidos do Chemical Abstract Service (CAS) e estão prontamente disponíveis em fornecedores científicos padrão. Potenciais dificuldades no processo de fabricação são destacadas e formas de superá-las são apresentadas. Enquanto o protocolo permite a fabricação de materiais com uma gama de propriedades acústicas e ópticas, o protocolo apresentado produz um material com uma velocidade de som de ~1.481 m·s-1, alinhando-se com a velocidade do som da água à temperatura ambiente (20 °C)40. Esse valor foi selecionado como padrão neutro para representar a ampla gama de propriedades teciduais existentes (Tabela 1), permitindo o estabelecimento de um ponto de referência consistente e confiável para comparação. Ao fornecer este protocolo detalhado, pretendemos ampliar a reprodutibilidade de absorção e fabricação deste promissor tipo de material simulador, facilitando assim estudos de validação biofotônica, acústica e fotoacústica e apoiando o controle de qualidade de rotina em aplicações de imagem pré-clínica e clínica.
Aqui, é apresentado um protocolo que visa fornecer uma receita versátil para um material estável e biologicamente relevante que pode ser usado para criar simuladores para medições de calibração e padronização em aplicações multimodais de imagens biomédicas acústicas e ópticas. O material já demonstrou ser estável ao longo do tempo39, ter alta reprodutibilidade lote a lote, ser seguro de usar e consistir em ingredientes prontamente disponíveis e econômicos de fornecedores científicos padrão. As propriedades do material são ajustáveis independentemente através de regimes acústicos e ópticos relevantes. Além disso, é mecanicamente robusto e insolúvel em água, resistindo assim ao manuseio áspero, e é inerte aos agentes de acoplamento à base de água que são usados em pesquisas ultrassônicas/fotoacústicas. Destacou-se que diferentes desenhos de fantasmas podem ser criados com diferentes tipos de inclusões, compostos por um mesmo material ou por diferentes tipos de materiais. Dadas essas propriedades, o material preenche os critérios-chave acima mencionados para um simulador biofotônico ideal e apresenta vantagens fundamentais em comparação com outros materiais que imitam tecidos existentes3. Ao detalhar o processo exato de fabricação, esperamos minimizar as variações decorrentes do procedimento de fabricação, otimizando assim seu uso para calibrar, validar e rastrear o desempenho de sistemas de imagem.
Duas etapas fundamentais foram identificadas como críticas para o processo de fabricação. Primeiro, os ingredientes precisam ser completamente misturados e uniformemente aquecidos para a criação de um material homogêneo. O uso de um sonicador e agitador magnético para mistura e um banho de óleo para aquecimento garante a distribuição uniforme dos componentes do material dentro da matriz de base. É preciso tomar cuidado para que o banho de óleo não atinja temperaturas muito altas (>180 °C), pois isso resultará na oxidação dos componentes do material, levando à descoloração amarelada. A agitação manual pode suportar o processo de mistura e compensa o aquecimento insuficiente da interface material-ar. O tempo de sonicação e mistura pode precisar ser estendido quando uma concentração maior de TiO2 e/ou polímeros é usada para garantir uma composição homogênea do material. Em segundo lugar, as bolhas de ar precisam ser removidas para evitar a formação de heterogeneidades dentro da matriz de base. Embora isso possa ser conseguido com uma bomba de vácuo ou forno, o despejo cuidadoso de uma altura baixa também deve ser praticado para minimizar o aprisionamento de ar dentro do material.
Uma vantagem significativa do material são suas propriedades termoplásticas (derivadas do polímero SEBS), permitindo que ele seja reaquecido e remoldado sem impacto significativo em suas propriedades acústicas e ópticas39. No entanto, o reaquecimento precisa ser realizado de forma gradual e cuidadosa, pois o material pode facilmente queimar e oxidar se reaquecido muito rapidamente. O reaquecimento também se torna mais difícil quando concentrações mais elevadas de PEBD são utilizadas, uma vez que o PEBD não apresenta o mesmo comportamento termoplástico que o PEBS.
Várias limitações do protocolo permanecem. Devido à alta temperatura de fusão dos polímeros (150 °C), os moldes fantasmas precisam ser feitos de um material resistente ao calor, como vidro ou aço inoxidável. Além disso, o material é bastante viscoso no estado líquido se uma alta concentração de polímero for usada para ajustar as propriedades acústicas, dificultando o preenchimento de pequenos alvos de imagem. Finalmente, a afinação das propriedades acústicas é até agora limitada a uma faixa de velocidade do som de ~1450-1.516 m·s-1 que suporta imitar tecidos como mama ou gordura (c = 1.450-1.480 m·s−1), mas pode ser insuficiente para tecidos como músculo ou rim (c > 1.520 m·s−1). A alteração concomitante da atenuação acústica também deve ser levada em consideração.
Aqui, destacamos a aplicação do material como um simulador estável para aplicações em ultrassom e imagem óptica. No entanto, materiais de copolímero em óleo também têm se mostrado de valor em aplicações de elastografia35, e poderiam potencialmente permitir compatibilidade com outras modalidades de imagem, como a ressonância magnética. O aumento do realismo anatômico dos objetos simuladores pode ser obtido com o uso de moldes impressos em 3D, como demonstrado em estudos semelhantes 29,47,48,49. Os primeiros estudos também demonstraram a capacidade de impressão 3D do próprio material, ampliando ainda mais sua flexibilidade em termos de processamento e fabricação. Esses desenvolvimentos destacam o potencial futuro empolgante do material como um meio simulador estável e amplamente utilizado para aplicações de imagem multimodais.
The authors have nothing to disclose.
A LH foi financiada pelo programa MedAccel da NPL financiado pelo Fundo de Desafio de Estratégia Industrial do Departamento de Negócios, Energia e Estratégia Industrial. A JMG recebeu financiamento da Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, Fundação Alemã de Pesquisa) no âmbito do projeto GR 5824/1. JJ agradece o apoio financeiro do prêmio Academy of Medical Sciences Springboard (REF: SBF007\100007). A SEB reconhece o apoio da Cancer Research UK sob o número de concessão C9545/A29580. AMI, BZ e SR foram apoiados pelo Departamento de Negócios, Energia e Estratégia Industrial do Reino Unido por meio do financiamento do Sistema Nacional de Medição. A Figura 1 e a Figura 2 foram criadas com o BioRender.
Low-density Polyethylene (LDPE) | Alfa Aesar | 43949.30 CAS: 9002-88-4 |
6.70 g 5.8% w/w |
Mineral oil | Sigma Aldrich | 330779-1L CAS: 8042-47-5 |
83.80 g 72.5% w/w |
Nigrosin | Sigma Aldrich | 211680-100G CAS: 11099-03-9 |
0.4 g |
Polystyrene-block-poly(ethylene-ran-butylene)-block-polystyrene (SEBS) | Sigma Aldrich | 200557-250G CAS: 66070-58-4 |
25.14 g 21.7% w/w |
Silicone oil for oil bath | Sigma Aldrich | 85409-1L CAS: 63148-62-9 ~1 L (depending on size of oil bath) |
|
Titanium(IV) oxide, anatase (TiO2) | Sigma Aldrich | 232033 CAS: 1317-70-0 |
0.15 g |
Antioxidant (optional; e.g., butylated hydroxytoluene) | Sigma Aldrich | W218405-1KG-K CAS: 128-37-0 |
may be added to prevent discolouration if higher fabrication temperatures are used |
Oil-solule dyes for inclusions (optional) | e.g., Caligo safe wash relief inks, Cranfield Colours, Cwmbran, UK* | may be added depending on preferred absorption | |
Bath Sonicator | Ultrawave Ltd, UK* | U500H Ultrasonic Cleaning Bath* | ideally with temperature control; recommended operating frequencies between 30-50 kHz) |
Crystallising dish for silicone oil bath (up to +200 °C) | any suitable supplier | (ext. diameter ~140 mm for 250 mL glass beaker) | |
Glass beaker (~250 mL); glass sample dishes/phantom mould | any suitable supplier | ||
Hot plate with magnetic stirrer and thermoregulator (external probe thermocouple) with maximum temperature of > 200 °C | Thermo Fisher Scientific, UK* | Velp Scientifica AREC.X Digital Ceramic Hot Plate Stirrer* | |
Laboratory scales / scientific balances accurate to 0.01 g | any suitable supplier | ||
Metallic spatula | any suitable supplier | ||
Vaccuum oven or vaccum chamber | Memmert, Germany (Vacuum oven)* Cole-Parmer Instrument Company, UK (Vaccum chamber)* |
VO29 (Vacuum oven) DWK Life Sciences (Kimble) Glass Vacuum Desiccator with Collar (Vaccum chamber)* |
|
1. Acoustic characterization system* | |||
Hydrophone | GEC Marconi | 30 mm active element diameter bilaminar membrane hydrophone | |
Oscilloscope | Tektronix UK, Bracknell, UK | DPO 7254 | |
Pulser–receiver | Olympus NDT, Waltham, MA, USA | Olympus 5073PR | |
Sample holder | Newport Spectra-Physics, Didcot, UK | Newport 605-4 Series Low-Distortion Axial Clamping Gimbal Optic Mount | may require additional adaptor for sample holding |
Thermometer | G. H. Zeal, London, UK | UKAS-calibrated IP 39C spirit-in-glass thermometer | |
Ultrasound transducer | Force Technology, Brondby, Denmark | Transducer of active element diameter 10 mm | |
Vernier callipers | any suitable supplier | ||
Water tank filled with deionized water | any suitable supplier | requires sufficent size (e.g., dimensions 112 × 38 × 30 cm3) | |
2.Optical characterization system* | |||
Integrating sphere (two) | Avantes, Apeldoorn, the Netherlands | AvaSphere-50, 50 cm internal diameter | |
Light source | Avantes, Apeldoorn, the Netherlands | Avalight-HAL-s-mini | |
Motorized stage (optional) | Thorlabs, | Thorlabs MTS50 | |
Optical fibres (three) | any suitable supplier | ||
Reflectance standard | Labsphere, North Sutton, USA | 99%, white, 1.25" diameter, USRS-99-010, AS-01158-060 | |
Spectrometer | Avantes, Apeldoorn, the Netherlands | Starline Avaspec-2048 | |
Software | |||
Data acqusition software (e.g., Labview) | National Instruments, Austin, TX, USA | ||
Data analysis software (e.g., Matlab) | Mathworks, Natick, USA | ||
Inverse adding doubling (IAD) program | Source code: http://omlc.org/software/iad/ | ||
*Please note that similar equipment may also be used. |