Ici, nous présentons un protocole permettant d’utiliser un logiciel de vision industrielle pour stabiliser les processus dynamiques pendant l’imagerie TEM, tout en indexant simultanément plusieurs flux de métadonnées sur chaque image dans une chronologie navigable. Nous démontrons comment cette plateforme permet l’étalonnage et la cartographie automatisés de la dose d’électrons au cours d’une expérience.
La microscopie électronique à transmission (MET) permet aux utilisateurs d’étudier les matériaux à leur échelle atomique fondamentale. Les expériences complexes génèrent régulièrement des milliers d’images avec de nombreux paramètres qui nécessitent une analyse longue et compliquée. AXON synchronicity est une solution logicielle de synchronisation de vision industrielle (MVS) conçue pour résoudre les problèmes inhérents aux études TEM. Une fois installé sur le microscope, il permet la synchronisation continue des images et des métadonnées générées par le microscope, le détecteur et les systèmes in situ au cours d’une expérience. Cette connectivité permet l’application d’algorithmes de vision industrielle qui appliquent une combinaison de corrections spatiales, de faisceaux et numériques pour centrer et suivre une région d’intérêt dans le champ de vision et fournir une stabilisation immédiate de l’image. En plus de l’amélioration substantielle de la résolution offerte par une telle stabilisation, la synchronisation des métadonnées permet l’application d’algorithmes de calcul et d’analyse d’images qui calculent des variables entre les images. Ces métadonnées calculées peuvent être utilisées pour analyser les tendances ou identifier les principaux domaines d’intérêt dans un ensemble de données, ce qui permet d’obtenir de nouvelles connaissances et de développer des capacités de vision industrielle plus sophistiquées à l’avenir. L’un de ces modules qui s’appuie sur ces métadonnées calculées est l’étalonnage et la gestion des doses. Le module de dose fournit un étalonnage, un suivi et une gestion de pointe de la fluence électronique (e-/Å 2·s-1) et de la dose cumulative (e–/Å2) qui est délivrée à des zones spécifiques de l’échantillon pixel par pixel. Cela permet une vue d’ensemble complète de l’interaction entre le faisceau d’électrons et l’échantillon. L’analyse des expériences est rationalisée grâce à un logiciel d’analyse dédié dans lequel les ensembles de données composés d’images et de métadonnées correspondantes sont facilement visualisés, triés, filtrés et exportés. Combinés, ces outils facilitent des collaborations efficaces et des analyses expérimentales, encouragent l’exploration de données et améliorent l’expérience microscopique.
Les microscopes électroniques à transmission (MET) et leurs capacités ont énormément bénéficié des progrès réalisés dans les caméras, les détecteurs, les porte-échantillons et les technologies informatiques. Cependant, ces progrès sont entravés par des flux de données déconnectés, des limites de l’exploitation humaine et une analyse fastidieuse des données 1,2. De plus, les expériences in situ et operando adaptent les TEM en laboratoires nanométriques en temps réel, permettant d’étudier des échantillons dans des environnements gazeux ou liquides tout en appliquant simultanément une gamme de stimuli externes 3,4,5. L’adoption de flux de travail aussi complexes n’a fait qu’amplifier ces limites, et l’augmentation de la taille et de la complexité de ces flux de données qui en résulte est un sujet de préoccupation croissante. Ainsi, l’accent est de plus en plus mis sur l’utilisation de l’actionnabilité de la machine pour trouver, accéder, interagir et réutiliser les données, une pratique connue sous le nom de principes FAIR6. La publication de données de recherche conformément au concept des principes FAIR a reçu une attention favorable de la part des agences gouvernementales du monde entier7,8, et l’application des principes FAIR à l’aide d’un logiciel de vision industrielle est une étape clé de leur adoption.
Une plate-forme logicielle de synchronisation de vision industrielle (MVS) a été développée en réponse aux problèmes spécifiques inhérents à la réalisation et à l’analyse d’expériences TEM complexes et riches en métadonnées (en particulier les expériences in situ et operando)9. Une fois installé sur le TEM, le logiciel MVS se connecte, intègre et communique avec la colonne de microscope, les détecteurs et les systèmes in situ intégrés. Cela lui permet de collecter en permanence des images et d’aligner ces images avec leurs métadonnées expérimentales, formant ainsi une base de données consultable complète, une chronologie de l’expérience du début à la fin (Figure 1). Cette connectivité permet au logiciel MVS d’appliquer des algorithmes qui suivent et stabilisent intelligemment une région d’intérêt (ROI), même lorsque les échantillons subissent des changements morphologiques. Le logiciel applique les ajustements nécessaires aux corrections de scène, de faisceau et numériques pour stabiliser le retour sur investissement grâce à ses fonctions de contrôle de la dérive et d’assistance à la mise au point . En plus d’enrichir les images avec les métadonnées brutes produites à partir des différents systèmes expérimentaux, le logiciel peut produire de nouvelles métadonnées informatiques en utilisant des algorithmes d’analyse d’images pour calculer des variables entre les images, ce qui lui permet de corriger automatiquement la dérive de l’échantillon ou les changements de focus.
Les images TEM et les métadonnées associées recueillies au moyen du logiciel MVS sont organisées sous la forme d’une chronologie expérimentale qui peut être ouverte et visualisée par n’importe qui au moyen de la version gratuite hors ligne du logiciel d’analyse, Studio (ci-après appelé le logiciel d’analyse)10. Au cours d’une expérience, le logiciel MVS synchronise et enregistre trois types d’images de la caméra ou du détecteur du microscope, qui sont affichées en haut de la chronologie sous la visionneuse d’images : acquisition unique (images individuelles à acquisition unique acquises directement à partir du logiciel TEM), raw (images du flux en direct du détecteur ou de la caméra qui n’ont fait l’objet d’aucune correction numérique de dérive; ces images peuvent avoir été corrigées physiquement via mouvement de la scène ou déplacement du faisceau) et corrigé de la dérive (images du flux en direct du détecteur ou de la caméra qui ont été dérivées numériquement). Les données collectées au cours d’une expérience ou d’une session peuvent être affinées en sections plus petites ou en extraits de données, appelés collections, sans perte de métadonnées intégrées. À partir du logiciel d’analyse, les images, les piles d’images et les métadonnées peuvent être directement exportées dans une variété d’images au format ouvert et de types de feuilles de calcul pour analyse à l’aide d’autres outils et programmes.
Le cadre de contrôle, de stabilisation et d’intégration des métadonnées du microscope permis par le logiciel MVS permet également la mise en œuvre de programmes ou de modules de vision industrielle supplémentaires, conçus pour atténuer les limitations des flux de travail TEM actuels. L’un des premiers modules développés pour tirer parti de cette plate-forme de synchronisation est l’étalonnage de la dose d’électrons et le suivi spatial des zones exposées au faisceau dans l’échantillon. Toutes les images TEM sont formées à partir de l’interaction entre l’échantillon et le faisceau d’électrons. Cependant, ces interactions peuvent également entraîner des impacts négatifs et inévitables sur l’échantillon, tels que la radiolyse et les dommages par heurts 11,12, et nécessitent un équilibre délicat entre l’application d’une dose d’électrons suffisamment élevée pour générer l’image et la minimisation des dommages causés par le faisceau 13,14.
Bien que de nombreux utilisateurs s’appuient sur les mesures de courant d’écran pour estimer la dose d’électrons, il a été démontré que cette méthode sous-estime largement le courant de faisceauréel 15. Les valeurs de dose qualitatives peuvent être obtenues via le courant d’écran sur le même microscope avec les mêmes réglages, mais la reproduction de ces conditions de dose à l’aide de microscopes ou de réglages différents est très subjective. De plus, tout ajustement des paramètres d’imagerie effectué par l’utilisateur au cours de l’expérience, tels que la taille du spot, l’ouverture, le grossissement ou l’intensité, nécessite une mesure distincte du courant d’écran pour calculer la dose résultante. Les utilisateurs doivent soit limiter rigoureusement les conditions d’imagerie utilisées au cours d’une expérience donnée, soit mesurer et enregistrer méticuleusement chaque condition de lentille utilisée, ce qui complique considérablement et étend l’expérience au-delà de ce qui est réalisable pour le fonctionnement normal du microscope16,17.
Dose, appelé logiciel de dose pour ce protocole, est un module logiciel d’étalonnage de dose qui utilise un support d’étalonnage dédié conçu pour permettre des mesures de courant automatisées. Une coupelle de Faraday, l’étalon-or pour un étalonnage précis du courant de faisceau15, est intégrée à la pointe du support d’étalonnage. Le logiciel MVS effectue une série d’étalonnages du courant de faisceau et de la zone de faisceau pour chaque condition d’objectif et intègre ces valeurs sur les images au niveau des pixels.
Dans cet article vidéo, les protocoles logiciels MVS conçus pour améliorer tous les domaines du flux de travail TEM sont présentés à l’aide d’échantillons de nanomatériaux représentatifs. Un échantillon de nanoparticules de zéolite sensible au faisceau14 est utilisé pour démontrer les flux de travail d’étalonnage et de gestion des doses. Nous réalisons une expérience de chauffage in situ représentative en utilisant un échantillon de nanocatalyseur Au/FeOx 18,19 qui subit des changements morphologiques importants lorsqu’il est chauffé. Cette expérience in situ met en évidence les algorithmes de stabilisation du logiciel et sa capacité à rassembler plusieurs flux de métadonnées, ce qui constitue un défi inhérent aux études in situ et operando. Bien que cela ne soit pas décrit dans le protocole, en raison de sa sensibilité unique à la dose d’électrons, nous discutons d’exemples représentatifs de l’utilité du logiciel pour les études EM liquides (protocoles pour lesquels des protocoles ont déjà été rapportés dans la littérature20,21,22), et comment ces techniques peuvent être appliquées pour améliorer la compréhension de l’effet de la dose sur les expériences EM liquide. Enfin, nous montrons comment l’analyse des données est rationalisée à l’aide du logiciel d’analyse hors ligne pour visualiser, filtrer et exporter une variété de fichiers d’images, de vidéos et de données dans d’autres formats accessibles.
Figure 1 : Exemples d’interface utilisateur pour les logiciels MVS et d’analyse. (A) Le volet de visualisation et le panneau de commande de l’image du logiciel de synchronisation. Une connexion entre le TEM et le logiciel de synchronisation est établie en activant le bouton Connecter, qui diffuse les images et les métadonnées du microscope dans le logiciel de synchronisation. À partir de la visionneuse d’images, l’opérateur peut effectuer diverses opérations assistées par vision industrielle, telles que Drift Correct et Focus Assist. Il offre également la possibilité d’appliquer des images de balises et une session de révision sans perturber la collecte de données. (B) Capture d’écran du logiciel d’analyse d’image mettant en évidence l’emplacement du port de vue d’image, de la chronologie et du panneau Métadonnées et analyse. Le logiciel d’analyse est accessible à tout moment au cours d’une expérience pour examiner les images acquises jusqu’à ce point de temps à l’aide du bouton Session de révision. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
L’interprétation des résultats expérimentaux de la TEM dépend souvent de nombreux paramètres expérimentaux interconnectés, tels que les réglages du microscope, les conditions d’imagerie et, dans le cas d’expériences operando ou in situ, les modifications de l’environnement ou des stimuli 1,23. L’analyse précise de grands ensembles de données TEM, sur lesquels ces paramètres peuvent être continuellement modifiés, exige une attention particulière de la part de l’opérateur pour enregistrer avec précision chaque condition et chaque réglage pour chaque image dans un journal de laboratoire ou une autre source de documentation externe. À mesure que les ensembles de données de GDT gagnent en taille et en complexité, la tenue manuelle des dossiers devient ingérable et des informations clés peuvent être omises ou mal enregistrées. Le logiciel MVS décrit ici consolide les métadonnées générées au cours d’une expérience à partir du microscope, du détecteur/caméra et d’autres systèmes (tels que les porte-échantillons in situ) et les aligne avec leurs images respectives.
En plus de la consolidation des métadonnées, le logiciel applique des algorithmes de vision industrielle pour suivre et stabiliser le champ de vision grâce à une combinaison de corrections spatiales, de faisceaux et numériques à l’aide de ses fonctions Drift Correct et Focus Assist . Lorsque la fonction Drift Correct est activée, une image de « modèle » de corrélation croisée est générée à l’aide de la première image extraite dans le logiciel MVS. Le modèle est ensuite comparé aux images entrantes pour calculer la direction et l’ampleur de la dérive ou du mouvement de l’échantillon. Avec ces informations, le logiciel MVS applique automatiquement les corrections nécessaires pour conserver les caractéristiques de l’image au même endroit en ajustant au moins l’un des trois paramètres suivants: emplacement de la scène, déplacement du faisceau ou de l’image et correction d’image numérique. La fonction Focus Assist utilise une combinaison d’algorithmes pour attribuer une valeur de mise au point, appelée score de mise au point à chaque image, et ces scores sont comparés pour déterminer l’ampleur et la direction du réglage de la mise au point à appliquer pour maintenir la mise au point de l’échantillon. En mode d’imagerie STEM, le logiciel MVS tente de maximiser le contraste grâce à une version propriétaire de la variance normalisée pour attribuer le score de mise au point. En mode TEM, une somme radiale d’intensité est calculée dans la FFT et utilisée pour calculer le score de mise au point. La capacité du logiciel MVS à optimiser la mise au point est limitée lorsqu’il ne peut pas calculer avec précision le score de mise au point correct pour une image. Cela se produit généralement lorsque le microscope est mal aligné ou que l’échantillon est significativement flou pendant l’étalonnage, empêchant le logiciel de calculer correctement la valeur correcte du score de mise au point de départ. Le logiciel MVS peut avoir des difficultés à calculer le score de mise au point pour les échantillons avec des franges de réseau bien définies, car les franges de réseau dans la FFT peuvent « submerger » l’algorithme de notation de mise au point; Ainsi, si un échantillon sort de la mise au point, le score de mise au point peut ne pas refléter avec précision le changement de mise au point. Inversement, travailler à de faibles grossissements ou avec un échantillon qui a un signal FFT faible peut également rendre difficile le calcul d’un bon score de mise au point. Pour atténuer ces difficultés, le logiciel MVS contient un certain nombre d’algorithmes supplémentaires qui peuvent être sélectionnés par l’utilisateur pour calculer le score de mise au point si les paramètres par défaut ne conviennent pas à l’échantillon. Ceux-ci doivent être testés et appliqués au cas par cas pour déterminer les meilleurs algorithmes pour une expérience donnée.
Les changements morphologiques dans la structure de l’échantillon au fil du temps sont pris en compte à l’aide d’un facteur de morphing de modèle. Ce filtre est réglable par l’opérateur, de sorte que les algorithmes d’enregistrement tiennent compte des changements morphologiques au fil du temps. En outre, le logiciel surveille l’image continue, les paramètres du microscope et les paramètres de la caméra ou du détecteur pour mettre à jour automatiquement le modèle lorsqu’il est déclenché par des modifications de la structure de l’échantillon et après toute modification induite par l’opérateur des paramètres du microscope, de la caméra ou du détecteur. Comme le montrent la figure 4, la figure 5, le fichier supplémentaire 7 et le fichier supplémentaire 8, le logiciel MVS fournit une stabilisation efficace et immédiate, permettant une imagerie haute résolution d’échantillons en mouvement ou en changement dynamiques. Bien que le logiciel soit capable de contrôler des taux très élevés de dérive ou de mouvement d’échantillon, tels que ceux qui se produisent lors de l’application d’une rampe de chauffage au cours d’une expérience in situ, il existe des limites aux corrections de scène maximales ou aux déplacements de faisceau que le logiciel peut contrôler si l’échantillon se déplace ou dérive très rapidement. Cette limite est fonction du taux de mise à jour de l’image, de la taille du champ de vision et du taux de dérive. Pour un champ de vision et un taux de mise à jour de l’image donnés, il existe un taux de dérive maximal qui peut être corrigé, et si les mouvements physiques ne peuvent pas suivre, le processus peut se terminer ou devenir instable. À partir des modèles d’enregistrement générés lorsque des fonctionnalités telles que Drift Correct sont appliquées, des métadonnées calculées supplémentaires peuvent être générées. Par exemple, la corrélation de correspondance est un enregistrement numérique de l’ampleur du changement entre les modèles d’une série et est utilisée pour identifier les points d’une chronologie expérimentale dans laquelle l’échantillon a changé. Une valeur de corrélation de correspondance élevée correspond à un échantillon qui a subi des modifications de sa morphologie, et une valeur de corrélation de correspondance faible correspond à un échantillon dont la structure reste relativement statique. La corrélation de correspondance est particulièrement utile pour les études in situ car elle peut être tracée graphiquement, ce qui permet à l’utilisateur de localiser rapidement les images de la série correspondant à un changement significatif de l’échantillon. Il est important, cependant, de comprendre que des valeurs de corrélations de correspondance élevées peuvent également correspondre à des changements dans les conditions d’imagerie, tels que le déplacement de la scène ou la modification du grossissement, si ces actions sont effectuées alors que la fonction de correction de la dérive reste active.
Le flux de travail d’étalonnage présenté ici utilise un support d’étalonnage unique et une routine d’étalonnage semi-automatisée pour étalonner avec précision le faisceau dans diverses conditions de lentille avec une intervention minimale de l’opérateur. La routine d’étalonnage de la dose est accessible via le logiciel MVS installé sur le TEM. Le logiciel MVS lit automatiquement les paramètres pertinents du microscope pour enregistrer toutes les mesures à référence pour des expériences ultérieures. Sur certains TEM, il n’est pas possible de lire les réglages d’ouverture ou de monochromateur, et ceux-ci doivent être saisis dans les paramètres du logiciel MVS par l’opérateur pendant les étalonnages et pendant l’utilisation. Des rappels sont intégrés au logiciel pour vous aider à maintenir ces paramètres d’entrée de l’opérateur à jour en suivant les instructions du programme. Le développement d’un support avec un collecteur de courant intégré, plutôt que de s’appuyer sur un support intégré ailleurs dans la colonne du microscope, est un choix de conception délibéré. Cela permet au collecteur de courant d’être positionné sur le même plan qu’un échantillon, éliminant ainsi les erreurs de mesure du courant causées par la déviation du faisceau ou les différences dans l’absorption des électrons par les ouvertures à différentes positions du faisceau. Le logiciel MVS suit une routine automatisée pour mesurer le courant et la surface du faisceau pour toute combinaison de conditions de lentille. Le logiciel peut ensuite corréler ces étalonnages mesurés avec la caméra ou le courant de l’écran et extrapoler tout changement de grossissement, etc. à la surface du faisceau pendant l’expérience. Une fois générés, ces fichiers d’étalonnage peuvent être utilisés immédiatement et sont automatiquement enregistrés pour une utilisation ultérieure si le logiciel détecte les mêmes paramètres utilisés lors d’une session ultérieure. Bien que la longévité du fichier d’étalonnage varie d’un microscope à l’autre, les auteurs ont constaté qu’ils sont capables d’utiliser les mêmes fichiers d’étalonnage pendant plusieurs mois sans observer de changements substantiels aux valeurs actuelles. Il existe des routines intégrées surveillant le profil d’émission des armes à feu pour aider à maintenir la pertinence de ces étalonnages, en particulier sur les pistolets à émission FEG à froid.
La normalisation des mesures de dose entre les microscopes et le suivi automatisé de l’exposition du faisceau d’un échantillon sont des fonctions essentielles du logiciel MVS, car elles permettent des comparaisons quantitatives des conditions de dose entre les expériences à effectuer sur différents systèmes de microscope. La dégradation induite par la dose d’un échantillon de zéolite (ZSM-5), obtenue au cours d’expériences identiques utilisant différents microscopes, entraîne la disparition complète des taches FFT après une dose électronique cumulative ou seuil maximale (~60.000 e-/Å 2 lors de l’application d’un débit de dose de ~500 e–/Å2·s) pour les deux configurations. Ces résultats comparatifs démontrent que le logiciel de dose facilite les mesures de dose quantitatives reproductibles. La petite différence dans la dose cumulée à laquelle la disparition complète du point FFT est observée pour chaque expérience est probablement le résultat des différentes tensions d’accélération utilisées par les deux microscopes, avec des tensions d’accélération plus faibles entraînant plus de voies de dommages par rayonnement, et des tensions d’accélération plus élevées entraînant généralement plus de dommages par knock-on24. Les résultats de la littérature pour la dose critique de nanoparticules ZSM-5 vont de 9 000 à 14 000 e–/Å2 en utilisant les premières disparitions de taches FFT, plutôt que la disparition complète de toutes les taches FFT25,26. Dans nos résultats, la première disparition du point FFT correspond à une dose cumulée d’environ 25 000 e–/Å2. Les études précédentes se sont appuyées sur des mesures de courant obtenues à l’aide d’un écran au phosphore, ce qui est bien documenté pour sous-estimer les mesures de courant de faisceau par rapport à une tasse de Faraday15. La dose critique déterminée peut varier d’un facteur de deux ou plus, selon le pic de FFT utilisé pour suivre la dose. Cela indique que les fréquences spatiales plus élevées se dégradent en premier et peuvent entraîner des valeurs différentes en fonction de l’accès à la zone utilisée lors des mesures (nos résultats se sont concentrés sur les taches FFT du cristal de zéolite entier, plutôt que sur des caractéristiques structurelles spécifiques)25,26. Ces différences dans les techniques et l’étalonnage actuel expliquent la différence de valeurs entre les deux expériences rapportées dans nos résultats et les études de littérature antérieures.
Bien que les interactions entre les doses d’électrons soient un facteur important dans de nombreuses expériences TEM, les études in situ et spécifiquement liquide-EM sont particulièrement sensibles à ses effets. La radiolyse des liquides par le faisceau d’électrons entraîne une cascade d’espèces chimiquement réactives qui peuvent interagir avec l’échantillon, compliquant l’analyse. Le débit de dose ou la fluence utilisée au cours d’une expérience EM liquide et la dose cumulative peuvent avoir une influence sur la concentration d’espèces radicalaires générées par radiolyseliquide 27,28. Ainsi, la collecte et l’enregistrement des métadonnées cumulatives des doses et des débits de dose tout au long d’une expérience permettent une corrélation directe entre les images et l’historique des doses d’un échantillon, et constituent un moyen plus précis d’élucider et de contrôler l’impact du faisceau d’électrons dans ces expériences. Bien que cela ne soit pas couvert par ce protocole, un exemple de l’utilité des caractéristiques de gestion de la dose pour la ME liquide est présenté à la figure 6.
Figure 6 : Croissance induite par faisceau de nanoparticules d’or au cours d’une expérience EM liquide in situ. (A) Vue d’ensemble STEM à faible grossissement de la croissance des particules résultante avec une superposition de couleur de la carte des doses cumulées dans toute la région. Les zones rouges dans la superposition indiquent les régions d’exposition à forte dose cumulative et les zones jaunes indiquent les régions où l’exposition est plus faible. La mise en surbrillance d’un pixel individuel avec le curseur ou le dessin d’une boîte sur une zone à l’aide des outils de dessin inclus indique la dose cumulée pour ce pixel ou cette zone. La barre d’échelle est de 2 μm. (B,C) Images STEM à fort grossissement des zones indiquées par les cases orange (b,c) dans A. La zone b, exposée à une dose cumulée plus élevée (10,811 e-/Å 2) contient des particules plus grosses que celles trouvées dans la zone c, qui a été exposée à une dose cumulée plus faible (0,032 e–/Å 2). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Les métadonnées sur le débit de dose enrichi et les doses cumulées simplifient l’analyse des voies de croissance et de dégradation des nanomatériaux dose-dépendantes. La figure 6 montre la réduction induite par faisceau d’une solution d’ions chlorure d’or aurique (HAuCl3) dans l’eau au cours d’expériences liquide-EM. À partir de la superposition de la carte de dose en couleur de la figure 6A, il est facile de visualiser que la dose cumulative d’électrons influence la taille et la forme résultantes des nanoparticules 29,30,31,32. L’aperçu des STIM à faible grossissement montre les régions exposées à une dose cumulative élevée (rouge) et faible (jaune). Les particules dans la région exposée à des doses plus élevées sont plus grosses que celles dans les régions exposées à des doses cumulatives plus faibles. Étant donné que les métadonnées de dose sont directement intégrées dans chaque image au niveau des pixels, les effets complexes de la dose d’électrons dans les expériences liquide-EM peuvent maintenant être systématiquement analysés d’une manière qui n’était jamais réalisable auparavant.
Dans ce protocole, nous avons démontré que le logiciel MVS fournit une solution complète pour étalonner, surveiller et suivre à la fois la dose d’électrons et la dose totale délivrée à un échantillon pixel par pixel. Cette capacité ouvre la voie à un nouveau paradigme pour l’imagerie d’échantillons sensibles à la dose et la compréhension des interactions avec les faisceaux d’électrons. C’est particulièrement excitant pour les expériences liquide-EM, car cela permettra une interrogation plus efficace sur le rôle que joue la dose d’électrons et améliorera la reproductibilité expérimentale. Nous espérons que ce nouveau cadre permettra la collecte précise de l’information sur le débit de dose et les doses accumulées, facilitera le partage de ces données avec la communauté pour une interprétation plus précise des résultats de la GDT et fera progresser la collaboration scientifique et le partage des données en permettant la production de rapports et l’analyse des principaux rapports et analyses de FAIR.
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été effectué en partie à l’Analytical Instrumentation Facility (AIF) de la North Carolina State University, qui est soutenu par l’État de Caroline du Nord et la National Science Foundation (numéro d’attribution ECCS-2025064). L’AIF est membre du North Carolina Research Triangle Nanotechnology Network (RTNN), un site de la National Nanotechnology Coordinated Infrastructure (NNCI). Les auteurs remercient Damien Alloyeau, directeur de recherche CNRS à l’Université Paris Cité, pour avoir fourni les résultats de l’étude du seuil de dose de zéolite CFEG 200 kV.
ARM200F CFEG | JEOL | Transmission Electron Microscope (200 kV) | |
AXON DOSE Calibration Holder | Protochips, Inc. | AXA-FC-TFS | Dose calibration and management hardware package for ThermoFisher ScientificTEM |
AXON DOSE Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | AX-MOD-DOSE-01-1YR | Dose calibration and management software |
AXON Studio Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | No Part Number. Available to download at success.protochips.com |
Offline analysis software for AXON datasets. A free copy of the AXON Studio software is available for down load at: success.protochips.com |
AXON Synchronicity Core | Protochips, Inc. | AXON-CORE | Hardware component of the synchronization software. |
AXON Synchronicity Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | AX-MOD-SYNCPRO-01-1YR | Synchronization software |
Fusion In-Situ Heating E-chip | Protochips, Inc. | E-FHDC-VO-10 | Sample Support E-chip with carbon film. Used with in situ heating system |
Fusion Select In Situ Heating System | Protochips, Inc. | FFAD-6200-EXP | In-situ MEMs heating system for ThermoFisher Scientific TEM. |
Gold(III) chloride (50% gold basis) hydrate 50790 | Sigma Aldrich | 27988-77-8 | Used to prepare Au/FeOx nanocatalyst. Coprecipitation synthesis procedure followed in C. Sze et al. Materials Letters. 36 (1–4), 11–16 (1998) |
Iron (III) Oxide 310050 (Fe2O3) | Sigma Aldrich | 1309-37-1 | Used to prepare Au/FeOx nanocatalyst. Coprecipitation synthesis procedure followed in C. Sze et al. Materials Letters. 36 (1–4), 11–16 (1998) |
Titan ChemiSTEM | ThermoFisher Scientific | Transmission Electron Microscope (300 kV) | |
Zeolite ZSM-5 | Zeolyst | CBV 8014 | Nanocatalyst sample: 80 SiO2/Al2O3 Mole Ratio |