Hier presenteren we een protocol om machine-vision-software te gebruiken om dynamische processen tijdens TEM-beeldvorming te stabiliseren, terwijl tegelijkertijd meerdere stromen metadata naar elke afbeelding worden geïndexeerd in een navigeerbare tijdlijn. We laten zien hoe dit platform geautomatiseerde kalibratie en mapping van de elektronendosis in de loop van een experiment mogelijk maakt.
Transmissie-elektronenmicroscopie (TEM) stelt gebruikers in staat om materialen op hun fundamentele, atomaire schaal te bestuderen. Complexe experimenten genereren routinematig duizenden afbeeldingen met tal van parameters die tijdrovende en gecompliceerde analyse vereisen. AXON-synchroniciteit is een machine-vision synchronisatie (MVS) softwareoplossing die is ontworpen om de pijnpunten aan te pakken die inherent zijn aan TEM-studies. Eenmaal geïnstalleerd op de microscoop, maakt het de continue synchronisatie mogelijk van beelden en metadata gegenereerd door de microscoop, detector en in situ systemen tijdens een experiment. Deze connectiviteit maakt de toepassing van machine-vision-algoritmen mogelijk die een combinatie van ruimtelijke, straal- en digitale correcties toepassen om een interessant gebied binnen het gezichtsveld te centreren en te volgen en onmiddellijke beeldstabilisatie te bieden. Naast de aanzienlijke verbetering van de resolutie die door een dergelijke stabilisatie wordt geboden, maakt metadatasynchronisatie de toepassing mogelijk van computationele en beeldanalyse-algoritmen die variabelen tussen afbeeldingen berekenen. Deze berekende metadata kunnen worden gebruikt om trends te analyseren of belangrijke interessegebieden binnen een dataset te identificeren, wat leidt tot nieuwe inzichten en de ontwikkeling van meer geavanceerde machine-vision-mogelijkheden in de toekomst. Een dergelijke module die voortbouwt op deze berekende metadata is dosiskalibratie en -beheer. De dosismodule biedt state-of-the-art kalibratie, tracking en beheer van zowel de elektronenfluentie (e-/Å 2·s-1) als de cumulatieve dosis (e-/Å2) die pixel-voor-pixel aan specifieke delen van het monster wordt geleverd. Dit maakt een uitgebreid overzicht mogelijk van de interactie tussen de elektronenbundel en het monster. Experimentanalyse wordt gestroomlijnd door middel van speciale analysesoftware waarin datasets bestaande uit afbeeldingen en bijbehorende metagegevens eenvoudig kunnen worden gevisualiseerd, gesorteerd, gefilterd en geëxporteerd. Gecombineerd vergemakkelijken deze tools efficiënte samenwerkingen en experimentele analyse, moedigen ze datamining aan en verbeteren ze de microscopie-ervaring.
Transmissie-elektronenmicroscopen (TEM’s) en hun mogelijkheden hebben enorm geprofiteerd van de vooruitgang in camera’s, detectoren, monsterhouders en computertechnologieën. Deze vooruitgang wordt echter belemmerd door losgekoppelde gegevensstromen, beperkingen van de menselijke werking en omslachtige gegevensanalyse 1,2. Bovendien passen in situ– en operando-experimenten TEM’s aan tot real-time laboratoria op nanoschaal, waardoor monsters in gas- of vloeistofomgevingen kunnen worden bestudeerd en tegelijkertijd een reeks externe stimuli 3,4,5 kunnen worden toegepast. De adoptie van dergelijke complexe workflows heeft deze beperkingen alleen maar vergroot, en de daaruit voortvloeiende toename van de omvang en complexiteit van deze gegevensstromen is een gebied van groeiende zorg. Er is dus een groeiende nadruk op het gebruik van machine-actionability om gegevens te vinden, te openen, samen te werken en te hergebruiken, een praktijk die bekend staat als de FAIR-principes6. Het publiceren van onderzoeksgegevens in overeenstemming met het FAIR-principesconcept heeft gunstige aandacht gekregen van overheidsinstanties over de hele wereld7,8, en de toepassing van de FAIR-principes met behulp van machine-vision-software is een belangrijke stap in hun adoptie.
Een machine-vision synchronisatie (MVS) softwareplatform is ontwikkeld als antwoord op de specifieke pijnpunten die inherent zijn aan het uitvoeren en analyseren van complexe, metadata-zware TEM-experimenten (met name in situ en operando experimenten)9. Eenmaal geïnstalleerd op de TEM, verbindt, integreert en communiceert de MVS-software met de microscoopkolom, detectoren en geïntegreerde in-situ systemen. Dit stelt het in staat om continu afbeeldingen te verzamelen en die afbeeldingen uit te lijnen met hun experimentele metadata, waardoor een uitgebreide doorzoekbare database wordt gevormd, een tijdlijn van het experiment van begin tot eind (figuur 1). Deze connectiviteit stelt de MVS-software in staat om algoritmen toe te passen die op intelligente wijze een interessegebied (ROI) volgen en stabiliseren, zelfs wanneer monsters morfologische veranderingen ondergaan. De software past indien nodig aanpassingen toe aan podium-, balk- en digitale correcties om de ROI te stabiliseren via de functies Drift Control en Focus Assist . Naast het verrijken van de afbeeldingen met de onbewerkte metadata die worden geproduceerd door de verschillende experimentele systemen, kan de software nieuwe, computationele metadata produceren met behulp van beeldanalyse-algoritmen om variabelen tussen afbeeldingen te berekenen, waardoor het automatisch kan corrigeren voor monsterdrift of veranderingen in focus.
TEM-afbeeldingen en de bijbehorende metagegevens die via de MVS-software worden verzameld, zijn georganiseerd als een experimentele tijdlijn die door iedereen kan worden geopend en bekeken via de gratis, offline versie van de analysesoftware, Studio (hierna de analysesoftware genoemd)10. Tijdens een experiment synchroniseert en registreert de MVS-software drie soorten beelden van de camera of detector van de microscoop, die bovenaan de tijdlijn onder de beeldviewer worden weergegeven: single acquisition (individuele single acquisition-beelden die rechtstreeks uit de TEM-software zijn verkregen), raw (beelden van de detector / camera livestream waarvoor geen digitale driftcorrecties zijn toegepast; deze beelden kunnen fysiek zijn gecorrigeerd via podiumbeweging of bundelverschuiving) en drift gecorrigeerd (beelden van de detector/camera livestream die digitaal zijn afgedreven). Gegevens die tijdens een experiment of sessie worden verzameld, kunnen verder worden verfijnd tot kleinere secties of gegevensfragmenten, ook wel verzamelingen genoemd, zonder verlies van ingesloten metagegevens. Vanuit de analysesoftware kunnen afbeeldingen, afbeeldingsstapels en metagegevens rechtstreeks worden geëxporteerd naar een verscheidenheid aan open afbeeldingen en spreadsheettypen voor analyse met behulp van andere tools en programma’s.
Het raamwerk van microscoopbesturing, stabilisatie en metadata-integratie mogelijk gemaakt door de MVS-software maakt ook de implementatie van extra machine-vision-programma’s of -modules mogelijk, ontworpen om beperkingen in de huidige TEM-workflows te verlichten. Een van de eerste modules die is ontwikkeld om te profiteren van dit synchronisatieplatform is elektronendosiskalibratie en ruimtelijke tracking van aan de bundel blootgestelde gebieden in het monster. Alle TEM-beelden worden gevormd uit de interactie tussen het monster en de elektronenbundel. Deze interacties kunnen echter ook resulteren in negatieve, onontkoombare effecten op het monster, zoals radiolyse en knock-on schade 11,12, en vereisen een zorgvuldige balans tussen het toepassen van een voldoende hoge elektronendosis om het beeld te genereren en het minimaliseren van de resulterende bundelschade 13,14.
Hoewel veel gebruikers vertrouwen op schermstroommetingen om de elektronendosis te schatten, is aangetoond dat deze methode de werkelijke bundelstroom op grote schaal onderschat15. Kwalitatieve dosiswaarden kunnen worden verkregen via de schermstroom op dezelfde microscoop met dezelfde instellingen, maar het reproduceren van deze dosiscondities met behulp van verschillende microscopen of instellingen is zeer subjectief. Bovendien vereisen alle aanpassingen van de beeldparameter die de gebruiker tijdens het experiment heeft aangebracht, zoals spotgrootte, diafragma, vergroting of intensiteit, een afzonderlijke meting van de schermstroom om de resulterende dosis te berekenen. Gebruikers moeten ofwel de beeldvormingsomstandigheden die tijdens een bepaald experiment worden gebruikt, strikt beperken of elke gebruikte lensconditie nauwkeurig meten en registreren, waardoor het experiment aanzienlijk wordt bemoeilijkt en verder wordt uitgebreid dan haalbaar is voor een normale werking van de microscoop16,17.
Dosis, voor dit protocol dosissoftware genoemd, is een softwaremodule voor dosiskalibratie die gebruik maakt van een speciale kalibratiehouder die is ontworpen om geautomatiseerde stroommetingen mogelijk te maken. Een Faraday-beker, de gouden standaard voor nauwkeurige bundelstroomkalibratie15, is geïntegreerd in de punt van de kalibratiehouder. De MVS-software voert een reeks bundelstroom- en bundelgebiedkalibraties uit voor elke lensconditie en integreert die waarden op de beelden op pixelniveau.
In dit videoartikel worden MVS-softwareprotocollen die zijn ontworpen om alle gebieden van de TEM-workflow te verbeteren, gepresenteerd met behulp van representatieve nanomateriaalmonsters. Een bundelgevoelig zeoliet nanodeeltjesmonster14 wordt gebruikt om de kalibratie- en dosisbeheerworkflows te demonstreren. We voeren een representatief in situ verwarmingsexperiment uit met behulp van een Au/FeOx nanokatalysator18,19 monster dat significante morfologische veranderingen ondergaat bij verhitting. Dit in situ experiment benadrukt de stabilisatiealgoritmen van de software en het vermogen om meerdere stromen metadata te verzamelen, wat een inherente uitdaging is voor in situ en operando studies. Hoewel niet beschreven in het protocol, vanwege de unieke gevoeligheid voor elektronendosis, bespreken we representatieve voorbeelden van het nut van de software voor vloeistof-EM-studies (protocollen waarvoor eerder zijn gerapporteerd in de literatuur20,21,22), en hoe deze technieken kunnen worden toegepast om het begrip van het effect van dosis op vloeistof-EM-experimenten te verbeteren. Ten slotte laten we zien hoe gegevensanalyse wordt gestroomlijnd met behulp van de offline analysesoftware om een verscheidenheid aan afbeeldings-, video- en gegevensbestanden te visualiseren, filteren en exporteren naar andere toegankelijke indelingen.
Figuur 1: Voorbeelden van gebruikersinterfaces voor MVS en analysesoftware . (A) Het beeldweergavevenster en het bedieningspaneel van de synchronisatiesoftware. Een verbinding tussen de TEM en de synchronisatiesoftware wordt tot stand gebracht door de Connect-knop te activeren, die de afbeeldingen en metadata van de microscoop naar de synchronisatiesoftware streamt. Vanuit de image viewer kan de machinist verschillende machine-vision ondersteunde bewerkingen uitvoeren, zoals Drift Correct en Focus Assist. Het biedt ook de mogelijkheid om tagafbeeldingen en beoordelingssessies toe te passen zonder de gegevensverzameling te verstoren. (B) Schermafbeelding van de beeldanalysesoftware die de locatie van de afbeeldingsweergavepoort, tijdlijn en het deelvenster Metagegevens en analyse markeert. De analysesoftware kan op elk moment tijdens een experiment worden geopend om de tot dat tijdstip verkregen afbeeldingen te bekijken met behulp van de knop Sessie controleren . Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
De interpretatie van TEM-experimentele resultaten is vaak afhankelijk van vele onderling verbonden experimentele parameters, zoals microscoopinstellingen, beeldvormingsomstandigheden en in het geval van operando- of in situ-experimenten, veranderingen in de omgeving of stimuli 1,23. Nauwkeurige analyse van grote TEM-datasets, waarover deze parameters voortdurend kunnen worden gewijzigd, vereist aanzienlijke aandacht van de operator om elke voorwaarde en instelling voor elke afbeelding nauwkeurig vast te leggen in een laboratoriumjournaal of een andere externe documentatiebron. Naarmate TEM-datasets groter en complexer worden, wordt handmatige archivering onbeheersbaar en kan belangrijke informatie worden gemist of onnauwkeurig worden vastgelegd. De hier beschreven MVS-software consolideert de metadata die tijdens een experiment worden gegenereerd door de microscoop, de detector / camera en andere systemen (zoals in situ monsterhouders) en stemt ze uit op hun respectieve afbeeldingen.
Naast metadataconsolidatie past de software machine-vision-algoritmen toe om het gezichtsveld te volgen en te stabiliseren door een combinatie van ruimtelijke, straal- en digitale correcties met behulp van de Drift Correct – en Focus Assist-functies . Wanneer de Drift Correct-functie is ingeschakeld, wordt een cross-correlatie ‘sjabloon’-afbeelding gegenereerd met behulp van de eerste afbeelding die in de MVS-software wordt getrokken. De sjabloon wordt vervolgens vergeleken met binnenkomende afbeeldingen om de richting en grootte van de monsterdrift of -beweging te berekenen. Met deze informatie past de MVS-software automatisch de nodige correcties toe om de beeldfuncties op dezelfde plaats te houden door ten minste een van de drie parameters aan te passen: podiumlocatie, bundel- of beeldverschuiving en digitale beeldcorrectie. De Focus Assist-functie maakt gebruik van een combinatie van algoritmen om een focuswaarde toe te wijzen, de focusscore aan elke afbeelding genoemd, en die scores worden vergeleken om de grootte en richting van de onscherpte-aanpassing te bepalen die moet worden toegepast om het monster scherp te houden. In de STEM-beeldvormingsmodus probeert de MVS-software het contrast te maximaliseren door middel van een eigen versie van genormaliseerde variantie om de focusscore toe te wijzen. In de TEM-modus wordt een radiale som van de intensiteit berekend in de FFT en gebruikt om de focusscore te berekenen. Beperkingen aan het vermogen van de MVS-software om de focus te optimaliseren, treden op wanneer deze de juiste focusscore voor een afbeelding niet nauwkeurig kan berekenen. Dit gebeurt meestal wanneer de microscoop verkeerd is uitgelijnd of het monster tijdens de kalibratie aanzienlijk onscherp is, waardoor de software de juiste waarde voor de startfocusscore niet correct kan berekenen. De MVS-software kan moeite hebben met het berekenen van de focusscore voor monsters met goed gedefinieerde roosterranden, omdat de roosterranden in de FFT het focusscorealgoritme kunnen ‘overweldigen’; Als een steekproef dus onscherp wordt, geeft de focusscore mogelijk niet nauwkeurig de verandering in focus weer. Omgekeerd kan het werken met lage vergrotingen of met een monster met een laag FFT-signaal het ook een uitdaging maken om een goede focusscore te berekenen. Om deze problemen te verminderen, bevat de MVS-software een aantal extra algoritmen die door de gebruiker kunnen worden geselecteerd voor het berekenen van de focusscore als de standaardinstellingen niet geschikt zijn voor de steekproef. Deze moeten van geval tot geval worden getest en toegepast om de beste algoritmen voor een bepaald experiment te bepalen.
Morfologische veranderingen in de steekproefstructuur in de loop van de tijd worden verantwoord met behulp van een sjabloonmorfingsfactor. Dit filter is instelbaar door de operator, zodat registratie-algoritmen rekening houden met morfologische veranderingen in de loop van de tijd. Bovendien bewaakt de software het continue beeld, de microscoopinstellingen en de camera- of detectorinstellingen om de sjabloon automatisch bij te werken wanneer deze wordt geactiveerd door wijzigingen in de monsterstructuur en na door de operator veroorzaakte wijzigingen in de parameters van de microscoop, camera of detector. Zoals weergegeven in figuur 4, figuur 5, aanvullend bestand 7 en aanvullend bestand 8, biedt de MVS-software effectieve, onmiddellijke stabilisatie, waardoor beeldvorming met hoge resolutie van dynamisch bewegende of veranderende monsters mogelijk is. Hoewel de software in staat is om zeer hoge driftsnelheden of monsterbewegingen te regelen, zoals die optreden bij het toepassen van een verwarmingshelling tijdens een in situ experiment, zijn er beperkingen aan de maximale fasecorrecties of bundelverschuivingen die de software kan regelen als het monster beweegt of zeer snel drijft. Deze limiet is een functie van de beeldupdatesnelheid, de grootte van het gezichtsveld en de driftsnelheid. Voor een bepaald gezichtsveld en beeldupdatesnelheid is er een maximale driftsnelheid die kan worden gecorrigeerd, en als de fysieke bewegingen het niet kunnen bijhouden, kan het proces eindigen of onstabiel worden. Uit de registratiesjablonen die worden gegenereerd wanneer functies zoals Drift Correct worden toegepast, kunnen extra berekende metagegevens worden gegenereerd. Matchcorrelatie is bijvoorbeeld een numerieke registratie van de mate van verandering tussen sjablonen in een reeks en wordt gebruikt om punten in een experimentele tijdlijn te identificeren waarin de steekproef is gewijzigd. Een hoge matchcorrelatiewaarde komt overeen met een steekproef die veranderingen in zijn morfologie heeft ondergaan, en een lage matchcorrelatiewaarde komt overeen met een steekproef waarvan de structuur relatief statisch blijft. Matchcorrelatie is met name waardevol voor in situ studies omdat het grafisch kan worden uitgezet, waardoor de gebruiker snel afbeeldingen in de reeks kan lokaliseren die overeenkomen met significante steekproefverandering. Het is echter belangrijk om te begrijpen dat correlatiewaarden met een hoge overeenkomst ook kunnen overeenkomen met veranderingen in beeldvormingsomstandigheden, zoals het verplaatsen van het podium of het wijzigen van de vergroting, als deze acties worden uitgevoerd terwijl de driftcorrectiefunctie actief blijft.
De hier gepresenteerde kalibratieworkflow maakt gebruik van een unieke kalibratiehouder en een semi-geautomatiseerde kalibratieroutine om de bundel nauwkeurig te kalibreren onder verschillende lensomstandigheden met minimale tussenkomst van de operator. De dosiskalibratieroutine is toegankelijk via de MVS-software die op de TEM is geïnstalleerd. De MVS-software leest automatisch de relevante microscoopinstellingen om alle metingen op te slaan als referentie voor latere experimenten. Op sommige TEM’s is het niet mogelijk om de diafragma- of monochromatorinstellingen te lezen en deze moeten door de operator tijdens kalibraties en tijdens gebruik in de MVS-software-instellingen worden ingevoerd. Er zijn herinneringen ingebouwd in de software om deze operatorinvoerinstellingen up-to-date te houden door de programmaprompts te volgen. De ontwikkeling van een houder met een ingebouwde stroomcollector, in plaats van te vertrouwen op een houder die elders in de microscoopkolom is geïntegreerd, is een bewuste ontwerpkeuze. Hierdoor kan de stroomcollector op hetzelfde vlak als een monster worden geplaatst, waardoor fouten in de stroommeting worden geëlimineerd die worden veroorzaakt door bundelafbuiging of verschillen in de absorptie van elektronen door openingen op verschillende bundelposities. De MVS-software volgt een geautomatiseerde routine om de straalstroom en het gebied te meten voor elke combinatie van lensomstandigheden. De software kan deze gemeten kalibraties vervolgens correleren met de camera- of schermstroom en eventuele veranderingen in vergroting enz. extrapoleren naar het straalgebied tijdens het experiment. Eenmaal gegenereerd, kunnen deze kalibratiebestanden onmiddellijk worden gebruikt en worden ze automatisch opgeslagen voor later gebruik als de software dezelfde instellingen detecteert die tijdens een toekomstige sessie worden gebruikt. Hoewel de levensduur van het kalibratiebestand varieert van microscoop tot microscoop, hebben de auteurs ontdekt dat ze dezelfde kalibratiebestanden gedurende enkele maanden kunnen gebruiken zonder substantiële veranderingen in de huidige waarden waar te nemen. Er zijn ingebouwde routines die het emissieprofiel van pistolen bewaken om deze kalibraties relevant te houden, vooral op koude FEG-emissiepistolen.
Normalisatie van dosismetingen tussen microscopen en geautomatiseerde tracking van de blootstelling van een monster aan de bundel zijn kritieke functies van de MVS-software, omdat ze kwantitatieve vergelijkingen van dosiscondities tussen experimenten op verschillende microscoopsystemen mogelijk maken. Dosisgeïnduceerde afbraak van een zeolietmonster (ZSM-5), verkregen tijdens identieke experimenten met verschillende microscopen, resulteert in volledige verdwijning van de FFT-vlekken na een maximale cumulatieve of drempel-elektronendosis (~ 60.000 e-/Å 2 bij toepassing van een dosistempo van ~ 500 e–/Å2·s) voor beide opstellingen. Deze vergelijkende resultaten tonen aan dat de dosissoftware reproduceerbare, kwantitatieve dosismetingen mogelijk maakt. Het kleine verschil in de cumulatieve dosis waarbij volledige FFT-spotverdwijning voor elk experiment wordt waargenomen, is waarschijnlijk een gevolg van de verschillende versnellingsspanningen die door de twee microscopen worden gebruikt, met lagere versnellingsspanningen die resulteren in meer stralingsschadepaden en hogere versnellingsspanningen die doorgaans resulteren in meer knock-on schade24. Literatuurresultaten voor de kritische dosis ZSM-5 nanodeeltjes variëren van 9.000-14.000 e-/Å2 met behulp van de eerste FFT-vlekverdwijningen, in plaats van de volledige verdwijning van alle FFT-vlekken 25,26. In onze resultaten komt de eerste FFT-spotverdwijning overeen met een cumulatieve dosis van ongeveer 25.000 e–/Å2. Eerdere studies waren gebaseerd op stroommetingen verkregen met behulp van een fosforscherm, dat goed gedocumenteerd is om bundelstroommetingen te onderschatten in vergelijking met een Faraday cup15. De vastgestelde kritische dosis kan met een factor twee of meer variëren, afhankelijk van welke FFT-piek wordt gebruikt om de dosis te volgen. Dit geeft aan dat de hogere ruimtelijke frequenties eerst degraderen en kunnen resulteren in verschillende waarden, afhankelijk van de zonetoegang die tijdens de metingen wordt gebruikt (onze resultaten waren gericht op FFT-vlekken van het hele zeolietkristal, in plaats van specifieke structurele kenmerken)25,26. Deze verschillen in technieken en huidige kalibratie verklaren het verschil in waarden tussen de twee experimenten die in onze resultaten en eerdere literatuurstudies zijn gerapporteerd.
Hoewel de interacties tussen elektronen een belangrijke factor zijn in veel TEM-experimenten, zijn in situ en specifiek vloeistof-EM-studies bijzonder gevoelig voor de effecten ervan. Radiolyse van vloeistoffen door de elektronenbundel resulteert in een cascade van chemisch reactieve soorten die kunnen interageren met het monster, wat de analyse bemoeilijkt. Zowel het dosistempo of de fluentie die tijdens een vloeistof-EM-experiment wordt gebruikt als de cumulatieve dosis kunnen van invloed zijn op de concentratie van radicale soorten die worden gegenereerd als gevolg van vloeibare radiolyse27,28. Het verzamelen en registreren van zowel cumulatieve dosis- als dosissnelheidsmetagegevens gedurende een experiment maakt dus een directe correlatie mogelijk tussen afbeeldingen en de dosisgeschiedenis van een monster, en is een nauwkeurigere manier om de impact van de elektronenbundel in deze experimenten op te helderen en te beheersen. Hoewel niet behandeld in dit protocol, wordt een voorbeeld van het nut van de dosisbeheersingskenmerken voor vloeistof-EM weergegeven in figuur 6.
Figuur 6: Bundel-geïnduceerde groei van gouden nanodeeltjes tijdens een in situ vloeistof-EM experiment. (A) Low-magnification STEM overzicht van de resulterende deeltjesgroei met een kleuroverlay van de cumulatieve dosiskaart in het hele gebied. Rode gebieden in de overlay geven gebieden aan met een hoge cumulatieve dosisblootstelling en gele gebieden geven gebieden met een lagere blootstelling aan. Als u een afzonderlijke pixel met de cursor markeert of een vak over een gebied tekent met de meegeleverde tekengereedschappen, wordt de cumulatieve dosis voor die pixel of dat gebied aangegeven. De schaalbalk is 2 μm. (B,C) Hogere vergroting STEM-afbeeldingen van de gebieden die worden aangegeven door de oranje vakken (b,c) in A. Gebied b, blootgesteld aan een hogere cumulatieve dosis (10,811 e-/Å 2) bevat grotere deeltjes dan die in gebied c, dat werd blootgesteld aan een lagere cumulatieve dosis (0,032 e–/Å2). Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Het verrijkte dosistempo en de cumulatieve dosismetagegevens vereenvoudigen de analyse van dosisafhankelijke groei- en afbraakroutes van nanomaterialen. Figuur 6 toont de bundel-geïnduceerde reductie van een oplossing van goud auric chloride (HAuCl3) ionen in water tijdens vloeistof-EM experimenten. Uit de kleurdosiskaartoverlay in figuur 6A is het gemakkelijk om te visualiseren dat de cumulatieve elektronendosis de resulterende grootte en vorm van de nanodeeltjes 29,30,31,32 beïnvloedt. Het STEM-overzicht met lage vergroting toont regio’s die zijn blootgesteld aan een hoge (rode) en lage (gele) cumulatieve dosis. De deeltjes in het gebied dat wordt blootgesteld aan hogere doses zijn groter dan die in de regio’s die worden blootgesteld aan lagere cumulatieve doses. Omdat de dosismetagegevens direct in elke afbeelding op pixelniveau zijn ingebed, kunnen de complexe effecten van elektronendosis in vloeistof-EM-experimenten nu systematisch worden geanalyseerd op een manier die nooit eerder haalbaar was.
In dit protocol hebben we aangetoond dat MVS-software een uitgebreide oplossing biedt voor het kalibreren, bewaken en volgen van zowel de elektronendosis als de totale dosis die pixel voor pixel aan een monster wordt geleverd. Dit vermogen ontsluit een nieuw paradigma voor het afbeelden van dosisgevoelige monsters en het begrijpen van de elektronenbundelinteracties. Het is vooral opwindend voor vloeistof-EM-experimenten, omdat het een effectievere ondervraging mogelijk maakt van de rol die de elektronendosis speelt en de experimentele reproduceerbaarheid verbetert. Het is onze hoop dat dit nieuwe kader de nauwkeurige verzameling van dosistempo en geaccumuleerde dosisinformatie mogelijk zal maken, het delen van deze gegevens met de gemeenschap zal vergemakkelijken voor een nauwkeurigere interpretatie van TEM-resultaten en wetenschappelijke samenwerking en gegevensuitwisseling zal bevorderen door FAIR-hoofdrapportage en -analyse mogelijk te maken.
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd gedeeltelijk uitgevoerd in de Analytical Instrumentation Facility (AIF) aan de North Carolina State University, die wordt ondersteund door de staat North Carolina en de National Science Foundation (awardnummer ECCS-2025064). De AIF is lid van het North Carolina Research Triangle Nanotechnology Network (RTNN), een site in de National Nanotechnology Coordinated Infrastructure (NNCI). De auteurs willen Damien Alloyeau, CNRS Research Director aan de Universiteit Paris Cité, bedanken voor het verstrekken van de 200 kV CFEG zeoliet dosisdrempel studieresultaten.
ARM200F CFEG | JEOL | Transmission Electron Microscope (200 kV) | |
AXON DOSE Calibration Holder | Protochips, Inc. | AXA-FC-TFS | Dose calibration and management hardware package for ThermoFisher ScientificTEM |
AXON DOSE Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | AX-MOD-DOSE-01-1YR | Dose calibration and management software |
AXON Studio Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | No Part Number. Available to download at success.protochips.com |
Offline analysis software for AXON datasets. A free copy of the AXON Studio software is available for down load at: success.protochips.com |
AXON Synchronicity Core | Protochips, Inc. | AXON-CORE | Hardware component of the synchronization software. |
AXON Synchronicity Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | AX-MOD-SYNCPRO-01-1YR | Synchronization software |
Fusion In-Situ Heating E-chip | Protochips, Inc. | E-FHDC-VO-10 | Sample Support E-chip with carbon film. Used with in situ heating system |
Fusion Select In Situ Heating System | Protochips, Inc. | FFAD-6200-EXP | In-situ MEMs heating system for ThermoFisher Scientific TEM. |
Gold(III) chloride (50% gold basis) hydrate 50790 | Sigma Aldrich | 27988-77-8 | Used to prepare Au/FeOx nanocatalyst. Coprecipitation synthesis procedure followed in C. Sze et al. Materials Letters. 36 (1–4), 11–16 (1998) |
Iron (III) Oxide 310050 (Fe2O3) | Sigma Aldrich | 1309-37-1 | Used to prepare Au/FeOx nanocatalyst. Coprecipitation synthesis procedure followed in C. Sze et al. Materials Letters. 36 (1–4), 11–16 (1998) |
Titan ChemiSTEM | ThermoFisher Scientific | Transmission Electron Microscope (300 kV) | |
Zeolite ZSM-5 | Zeolyst | CBV 8014 | Nanocatalyst sample: 80 SiO2/Al2O3 Mole Ratio |