Summary

[Platzierung von extrakraniellen Stimulationselektroden und Messung des zerebralen Blutflusses und intrakranieller elektrischer Felder bei anästhesierten Mäusen

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Wir beschreiben ein Protokoll zur Beurteilung von Dosis-Wirkungs-Kurven für extrakranielle Stimulation in Bezug auf elektrische Feldmessungen des Gehirns und einen relevanten Biomarker-zerebralen Blutfluss. Da bei diesem Protokoll eine invasive Elektrode in das Gehirn eingeführt wird, ist eine Vollnarkose erforderlich, wobei die Spontanatmung der kontrollierten Atmung vorgezogen wird.

Abstract

Der Nachweis von zerebralen Blutflussreaktionen (CBF) auf verschiedene Formen der neuronalen Aktivierung ist entscheidend für das Verständnis der dynamischen Gehirnfunktion und der Variationen in der Substratversorgung des Gehirns. In dieser Arbeit wird ein Protokoll zur Messung von CBF-Reaktionen auf transkranielle Wechselstromstimulation (tACS) beschrieben. Die Dosis-Wirkungs-Kurven werden sowohl aus der CBF-Änderung, die mit tACS (mA) auftritt, als auch aus dem intrakraniellen elektrischen Feld (mV/mm) geschätzt. Wir schätzen das intrakranielle elektrische Feld basierend auf den verschiedenen Amplituden, die von Glasmikroelektroden in jeder Seite des Gehirns gemessen werden. In dieser Arbeit beschreiben wir den Versuchsaufbau, der entweder die Verwendung von bilateralen Laser-Doppler-Sonden (LD) oder Laser-Speckle-Imaging (LSI) zur Messung des CBF beinhaltet; Daher erfordert dieser Aufbau eine Anästhesie für die Elektrodenplatzierung und -stabilität. Wir zeigen eine Korrelation zwischen der CBF-Antwort und dem Strom in Abhängigkeit vom Alter, wobei eine signifikant größere Reaktion bei höheren Strömen (1,5 mA und 2,0 mA) bei jungen Kontrolltieren (12-14 Wochen) im Vergleich zu älteren Tieren (28-32 Wochen) gezeigt wird (p < 0,005 Differenz). Wir zeigen auch eine signifikante CBF-Reaktion bei elektrischen Feldstärken <5 mV/mm, was ein wichtiger Aspekt für eventuelle Studien am Menschen ist. Diese CBF-Reaktionen werden auch stark durch den Einsatz von Anästhesie im Vergleich zu wachen Tieren, die Atmungskontrolle (d. h. intubierte vs. spontane Atmung), systemische Faktoren (d. h. CO2) und die lokale Leitung innerhalb der Blutgefäße beeinflusst, die durch Perizyten und Endothelzellen vermittelt wird. Ebenso können detailliertere Bildgebungs-/Aufzeichnungstechniken die Feldgröße vom gesamten Gehirn auf nur eine kleine Region beschränken. Wir beschreiben die Verwendung von extrakraniellen Elektroden für die Anwendung der tACS-Stimulation, einschließlich sowohl hausgemachter als auch kommerzieller Elektrodendesigns für Nagetiere, die gleichzeitige Messung des CBF und des intrakraniellen elektrischen Feldes unter Verwendung bilateraler Glas-DC-Aufzeichnungselektroden und die bildgebenden Ansätze. Wir wenden diese Techniken derzeit an, um ein Closed-Loop-Format zur Augmentierung des CBF in Tiermodellen für Alzheimer und Schlaganfall zu implementieren.

Introduction

Die transkranielle Elektrostimulation (tES; mit Sinuswellenstimulation, tACS) ist ein gängiger, externer, nicht-invasiver Ansatz zur Neuromodulation des Gehirns 1,2. Zuvor stellten wir die Hypothese auf, dass tES (und insbesondere tACS) bei bestimmten Dosen den zerebralen Blutfluss (CBF) in den darunter liegenden Hirnregionen erhöhen kann3. Ferner kann eine Dosis-Wirkungs-Beziehung zwischen entweder dem angelegten externen Strom oder dem intrakraniellen elektrischen Feld und den resultierenden CBF-Reaktionen bestehen. Die meisten klinischen Stimulationsprotokolle haben sich jedoch auf ein maximal angenehmes Stimulationsniveau der Haut (d. h. ~ 2 mA) für geplante Zeiträume (d. h. 30-45 Minuten) als Behandlungsprotokoll konzentriert 4,5. Bei Nagetieren ist es möglich, mit invasiven, extrakraniellen Hirnelektroden, die direkt auf den Schädel aufgebracht werden, die durch tES6 induzierten elektrischen Felder im Gehirn zu untersuchen. Das Ziel dieses Ansatzes ist es daher, die Auswirkungen der Intensität von tACS bei relevanten Frequenzen auf CBF-Veränderungen in Bezug auf die Dosis-Wirkungs-Beziehung zu bestimmen. Diese Dosis-Wirkungs-Kurve basiert auf einer kurzen physiologischen Biomarker-direkten Messung des CBF-in Bezug auf das elektrische Feld, das auf das Gehirn ausgeübt wird3. Wir haben bereits gezeigt, dass es bei größeren Amplituden, die typischerweise außerhalb des Bereichs der elektrischen Felder im Gehirn liegen, die klinisch durch tACS induziert werden, eine nahezu lineare Korrelation zwischen dem induzierten elektrischen Feld und dem CBF im Kortexgibt 3. Eine Stimulation mit geringerem Feld (d. h. 1-5 mV/mm Intensität) kann jedoch für den Einsatz beim Menschen relevanter und praktikabler sein. Daher haben wir unsere Techniken modifiziert, um kleinere CBF-Veränderungen zu erkennen.

In dieser Arbeit wird ein Protokoll zur Analyse der Auswirkungen von tES-Wechselströmen (tACS) mit geringerer Feldstärke auf CBF (d. h. 0,5-2,0 mA Strom, 1-5 mV/mm elektrisches Feld) beschrieben, die von wachen Nagetieren toleriert werden können5. Dieses Protokoll beinhaltet die Verwendung von neuartiger Laser-Speckle-Bildgebung während der tACS sowie von zwei intrakraniellen Glaselektroden, um sowohl die Ausbreitung des aktiven tACS im Gehirn (wie vom CBF überwacht) als auch die intrakranielle elektrische Feldintensität zu bestimmen, die sowohl als Diagramm als auch als tatsächliches experimentelles Foto gezeigt wird (Abbildung 1). Es gibt viele mögliche physiologische Wirkungen von tES im Gehirn, einschließlich direkter neuronaler Modulation, neuronaler Plastizität und Astrozytenaktivierung 7,8. Obwohl der CBF mit tDCS 9,10 gemessen wurde, waren diese Messungen langsam, indirekt und unzureichend, um die Dosis-Wirkungs-Funktion im Gehirn zu beurteilen. Daher können wir durch die Verwendung geeigneter Kurzzeit-Biomarker (d. h. CBF, elektrische Felder) und schneller Ein-/Aus-Sequenzen von tACS die Dosis-Wirkungs-Funktion genauer abschätzen. Darüber hinaus können wir verschiedene Techniken zur Messung des CBF anwenden, darunter sowohl fokale Laser-Doppler-Sonden (LD) als auch Laser-Speckle-Imaging (LSI) mit definierten Regionen von Interesse.

Figure 1
Abbildung 1: Diagramm der transkraniellen Stimulation und fotografisches Beispiel. (A) Diagramm des Aufbaus der transkraniellen Stimulation. Das Diagramm zeigt einen Mäuseschädel mit koronalen und sagittalen Nähten. Die transkraniellen Elektroden werden lateral und symmetrisch auf dem Schädel platziert und mit chirurgischem Kleber und leitfähiger Paste zwischen den Elektroden und dem Schädel befestigt. Diese Elektroden sind mit einem für den Menschen kompatiblen Konstantstrom-Stimulationsgerät verbunden, das die Frequenz, Amplitude und Dauer der Stimulation festlegen kann. Zur Beurteilung der intrakraniellen elektrischen Felder werden bilaterale Glaselektroden (~2 MΩ) in der Großhirnrinde (d.h. innerhalb von 1 mm des inneren Aspekts des Schädels durch kleine Gratlöcher) platziert, die mit Mineralöl versiegelt sind und AgCl-Gründe im Nackenmuskel aufweisen (dargestellt als größere Drähte in der Mitte, die in das subkutane Halsgewebe eingegraben sind). Diese Glaselektroden sind mit einem Gleichstromverstärker verbunden, und ihre Ausgänge werden über einen Digitizer mit mindestens vier Kanälen aufgezeichnet. Für Aufnahmen werden auch bilaterale Laser-Doppler-Sonden auf dem Schädel platziert. Der gesamte Schädel wird entweder mit einem Laser-Speckle-Imaging-Gerät oder einer hochauflösenden (mindestens 1.024 x 1.024 Pixel, 12-14 Bit Pixeltiefe) gekühlten Kamera zur intrinsischen optischen Signaldetektion abgebildet. Die Hämoglobin-Isosbestfrequenz wird typischerweise (d. h. 562 nm) für die Beleuchtung für die Blutflussbildgebung gewählt. (B) Eine Nahaufnahme eines tatsächlichen Experiments, das die bilateralen Laser-Doppler-Sonden (links), die (bilateralen) intrakraniellen Glasaufzeichnungs-Mikroelektroden, die durch die Bohrlöcher platziert sind, und die tACS-Stimulationselektroden seitlich zeigt. Abkürzung: tACS = transkranielle Wechselstromstimulation. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.

Um die Mechanismen zu bewerten, können wir auch Wechselwirkungen mit anderen physiologischen Prozessen untersuchen, die den CBF ebenfalls verändern, wie z.B. die K+-induzierte Spreading-Depolarisation11. Darüber hinaus ist es auch möglich, anstelle von geplanten Sitzungen zu regelmäßigen Zeiten ein geschlossenes Kreislaufsystem zu entwickeln, das auf zusätzlichen Biomarkern für eine Vielzahl von Krankheiten basiert, wie es für die Epilepsiebehandlungvorgeschlagen wurde 12 (d. h. klinische Neuropace-Geräte). Zum Beispiel basiert die Closed-Loop-Hirnstimulation bei der Parkinson-Krankheit in der Regel auf den intrinsischen, abnormalen lokalen Feldpotentialen (LFPs), die dieser Krankheit innewohnen, wenn nicht genügend Dopamin (typischerweise β-Band-LFPs)13 vorhanden ist.

Protocol

Alle Tierbehandlungen wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee an der Duke University oder der entsprechenden lokalen Behörde, die die Forschung mit Tieren reguliert, genehmigt. In der Materialtabelle finden Sie Details zu allen Materialien, Instrumenten und Geräten, die in diesem Protokoll verwendet werden. 1. Vorbereitung des Instruments Stellen Sie sicher, dass alle erforderlichen Gegenstände und chirurgischen Instrumente vorhande…

Representative Results

Repräsentative Ergebnisse sind in Abbildung 4, Abbildung 5 und Abbildung 6 dargestellt. Abbildung 4 zeigt ein Beispiel für die vier Kanäle mit den beiden intrakraniellen Aufzeichnungselektroden auf den oberen Kanälen und den CBF-Antworten auf den unteren Kanälen. Das tACS ist symmetrisch über den gesamten Schädel, aber im Allgemeinen ist die intrakranielle Feldantwort bei angelegten Wechselstroms…

Discussion

Dieses Protokoll konzentriert sich auf die in vivo, anästhesierte Messung der CBF-Antwort als Biomarker zur Abschätzung der Gehirnantwort auf tES14. Zu den längerfristigen Biomarkern des tES-Ansprechens gehören histologische Behandlungseffekte, wie z. B. die Verhinderung oder Veränderung der Bildung von Amyloid-Plaques (d. h. mit Gamma-Stimulation bei 40 Hz in mehreren AD-Modellen)16,17,18,19,</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Studie wurde durch die folgenden Zuschüsse (an D.A.T.) unterstützt: NIA RO1 AG074999, NIA R21AG051103, VA I21RX002223 und VA I21 BX003023.

Materials

Alcohol pads HenryShein 112-6131
Baby mineral oil Johnson & Johnson
BD 1 mL syringe Becton Dikinson REF 305699
C3 Flat Surface Electrodes Neuronexus
C57BI mice from NIH colonies 
Copper skull electrods In house preparation
Digidata 1440, Clampex Axon Instruments
Dumont #5 forceps FST #5
Dumont #7 forceps curved Dumont RS-5047
Eye ointment Major LubiFresh P.M. NDC-0904-6488-38
Flaming/Brown micropipette puller Sutter instrument Co. Model P-87
Forceps 11.5 cm slight curve  serrated Roboz RS-8254
Intramedic needle 23 G Becton Dikinson REF 427565
KCl 1 M In house preparation
Laser Doppler Probes Moor Instruments 0.46 mm laser doppler probes
Laser Speckle Imaging Device RWD RFLSI-ZW
Micro curette 13 cm FST 10080-05
Micro Dissecting Scissors, 11.5 cm Roboz RS-5914
Mouse anesthesia fixation Stoelting
Neuroconn-DS Neurocare DC-Stimulator Plus
PhysioSuite Monitoring Kent Scientific
Q-tips Fisherbrand 22363167
Saline 0.9% NaCl solution Baxter 281322
Sensicam QE PCO Instruments
Software Axon Instruments Clampex
Surgical glue Covetrus 31477
Surgical tape 3M Transpore T9784

References

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Cite This Article
Degan, S., Feng, Y., Hoffmann, U., Turner, D. A. Placement of Extracranial Stimulating Electrodes and Measurement of Cerebral Blood Flow and Intracranial Electrical Fields in Anesthetized Mice. J. Vis. Exp. (196), e65195, doi:10.3791/65195 (2023).

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