Malaria wordt overgedragen door inoculatie van het sporozoietstadium van Plasmodium door geïnfecteerde muggen. Transgeen Plasmodium heeft ons in staat gesteld de biologie van malaria beter te begrijpen en heeft rechtstreeks bijgedragen aan de ontwikkeling van malariavaccins. Hier beschrijven we een gestroomlijnde methodologie om transgene Plasmodium berghei sporozoïeten te genereren.
Malaria is een dodelijke ziekte die wordt veroorzaakt door de parasiet Plasmodium en wordt overgedragen door de beet van vrouwelijke Anopheles-muggen . Het sporozoietstadium van Plasmodium dat door muggen in de huid van gewervelde gastheren wordt afgezet, ondergaat een fase van verplichte ontwikkeling in de lever voordat klinische malaria wordt geïnitieerd. We weten weinig over de biologie van de ontwikkeling van Plasmodium in de lever; toegang tot het sporozoietstadium en het vermogen om dergelijke sporozoïeten genetisch te modificeren zijn cruciale hulpmiddelen voor het bestuderen van de aard van Plasmodium-infectie en de resulterende immuunrespons in de lever. Hier presenteren we een uitgebreid protocol voor het genereren van transgene Plasmodium berghei sporozoïeten. We modificeren P. berghei genetisch in het bloedstadium en gebruiken deze vorm om Anopheles-muggen te infecteren wanneer ze een bloedmaaltijd nemen. Nadat de transgene parasieten zich in de muggen hebben ontwikkeld, isoleren we het sporozoietstadium van de parasiet uit de speekselklieren van de mug voor in vivo en in vitro experimenten. We demonstreren de validiteit van het protocol door sporozoïeten te genereren van een nieuwe stam van P. berghei die het groen fluorescerende eiwit (GFP) subeenheid 11 (GFP11) tot expressie brengt, en laten zien hoe het kan worden gebruikt om de biologie van malaria in het leverstadium te onderzoeken.
Ondanks de vooruitgang in de ontwikkeling van geneesmiddelen en onderzoek naar malariapreventie en -behandeling, blijft de wereldwijde ziektelast van malaria hoog. Elk jaar sterven meer dan een half miljoen mensen aan malaria, met de hoogste sterftecijfers onder kinderen die in malaria-endemische regio’s wonen,zoals Afrika ten zuiden van de Sahara. Malaria wordt veroorzaakt door de parasiet Plasmodium, die op mensen wordt overgedragen door de beet van vrouwelijke Anopheles-muggen die de parasiet in hun speekselklieren dragen. Het infectieuze stadium van Plasmodium – de sporozoïeten – wordt tijdens een bloedmaaltijd afgezet in de huid van de gewervelde gastheren en reist door de bloedbaan om levercellen te infecteren, waar ze een verplichte ontwikkeling ondergaan (pre-erytrocytaire malaria vormen) voordat ze de erytrocyten infecteren. De infectie van de erytrocyten initieert het bloedstadium van malaria en is verantwoordelijk voor het geheel van de morbiditeit en mortaliteit die met de ziekte gepaardgaan2,3.
De obligate aard van de pre-erytrocytaire ontwikkeling van Plasmodium heeft het tot een aantrekkelijk doelwit gemaakt voor profylactische inspanningen op het gebied van vaccin- engeneesmiddelenontwikkeling4. Een voorwaarde voor het bestuderen van de biologie van pre-erytrocytaire malaria, evenals de ontwikkeling van vaccins of geneesmiddelen gericht op het leverstadium, is toegang tot Plasmodium sporozoïeten. Bovendien heeft ons vermogen om genetisch gemodificeerde Plasmodium-sporozoïeten te genereren een belangrijke rol gespeeld in het succes van dergelijke onderzoeksinspanningen 5,6,7,8,9. Transgene Plasmodium-lijnen die fluorescerende of lichtgevende reportereiwitten tot expressie brengen, hebben ons in staat gesteld hun ontwikkeling in vivo en in vitro te volgen 10,11. Genetisch verzwakte parasieten (GAP’s), gegenereerd door de deletie van meerdere genen in Plasmodium, zijn ook enkele van de meest veelbelovende vaccinkandidaten12,13.
Malariamodellen van knaagdieren en niet-menselijke primaten hebben ons geholpen de mechanismen van gastheer-parasietinteracties bij menselijke malaria te begrijpen vanwege de overeenkomsten in biologie en levenscyclus tussen Plasmodium-soorten 14. Het gebruik van Plasmodium-soorten die knaagdieren infecteren, maar geen mensen (bijv. P. berghei) maakt het mogelijk om de volledige levenscyclus van parasieten te behouden en infectieuze sporozoïeten te genereren voor het bestuderen van malaria in het leverstadium in een gecontroleerde omgeving met bioveiligheidsniveau 1. Er bestaan al verschillende afzonderlijke protocollen voor het genereren van transgene Plasmodium-parasieten in het bloedstadium15, infectie van muggen 16 en isolatie van sporozoïeten17. Hier schetsen we een uitgebreid protocol dat deze methodologieën combineert om transgene P. berghei-sporozoïeten te genereren en te isoleren, met de nieuwe transgene stam PbGFP11 als voorbeeld. PbGFP 11 transporteert de 11e β-streng van super-folder groen fluorescerend eiwit (GFP), GFP11, naar de parasitofore vacuole (PV) die wordt gegenereerd in de hepatocyten van de gastheer. PbGFP 11 wordt gebruikt in combinatie met transgene hepatocyten (Hepa1-6-achtergrond) die residuen tot expressie brengen die het GFP 1-10-fragment (GFP 1-10) in het cytoplasma vormen (Hepa GFP 1-10-cellen). PbGFP11 rapporteert PV-lysis in de hepatocyten van de gastheer door zelfcomplementatie en de hervorming van functioneel GFP en het groene fluorescentiesignaal18. Merk op dat GFP 11 is gecodeerd als een reeks van zeven tandemsequenties in PbGFP11 om het resulterende fluorescentiesignaal te versterken. Bij het kleuren van PbGFP11 sporozoïeten met de cytoplasmatische kleurstof CellTrace Violet (CTV), kunnen we de parasieten volgen. De lysis van dergelijke CTV-gekleurde intracellulaire parasieten zelf resulteert in lekkage van CTV in het cytoplasma van de gastheercel en kleuring van de gastheercel. Naast het visualiseren en onderscheiden van de lysis van Plasmodium PV en/of de parasiet in gastheerhepatocyten, kan dit systeem op betrouwbare wijze worden gebruikt om de immuunroutes te bestuderen die verantwoordelijk zijn voor een van deze processen, door de genetische of therapeutische verstoring van de moleculaire componenten van dergelijke routes.
We hebben het bovenstaande protocol in ons laboratorium gebruikt om verschillende lijnen van transgene P. berghei-parasieten te maken. Hoewel geoptimaliseerd voor P. berghei, hebben we dit protocol ook met succes gebruikt om transgene P. yoelii-sporozoïeten te genereren. Na het injecteren van de getransfecteerde schizonten in muizen, zijn parasieten meestal niet later dan 3 d.p.i. detecteerbaar in alle groepen, inclusief de controle zonder plasmide. De selectie wordt pas gestart nadat parasite…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health-subsidie AI168307 aan SPK. We danken de UGA CTEGD Flow Cytometry Core en de UGA CTEGD Microscopy Core. We erkennen ook de bijdragen van Ash Pathak, Anne Elliot en het personeel van UGA Sporocore bij het optimaliseren van het protocol. We willen Dr. Daichi Kamiyama bedanken voor waardevolle inzichten, discussie en de ouderplasmiden die GFP11 en GFP 1-10 bevatten. We willen ook de leden van het Kurup-lab bedanken voor hun constante steun, geduld en aanmoediging.
30 G x 1/2" Syringe needle | Exel international | 26437 | |
Alsever's solution | Sigma-Aldritch | A3551-500ML | |
Amaxa Basic Parasite Nucleofector Kit 2 | Lonza | VMI-1021 | |
Avertin (2,2,2-Tribromoethanol) | TCI America | T1420 | |
Blood collection tubes | BD bioscience | 365967 | for serum collection |
C-Chip disposable hematocytometer | INCYTO | DHC-N01-5 | |
CellVeiw Cell Culture Dish | Greiner Bio-One | 627860 | |
Centrifuge 5425 | Eppendorf | 5405000107 | |
Centrifuge 5910R | Eppendorf | 5910R | For gradient centrifugation |
Delta Vision II – Inverted microscope system | Olympus | IX-71 | |
Dimethyl Sulfoxide | Sigma | D5879-500ml | |
Fetal bovine serum | GenClone | 25-525 | |
GFP11 plasmid | Kurup Lab | pSKspGFP11 | Generated from PL0017 plasmid |
Giemsa Stain | Sigma-Aldritch | 48900-1L-F | |
Hepa GFP1-10 cells | Kurup Lab | Hepa GFP1-10 | Generated from Hepa 1-6 cells (ATCC Cat# CRL-1830) |
Mouse Serum | Used for mosquito dissection media | ||
NaCl | Millipore-Sigma | SX0420-5 | 1.5 M and 0.15 M for percoll solution |
Nucleofector II | Amaxa Biosystems (Lonza) | Program U-033 used for RBC electroporation | |
Pasteur pipette | VWR | 14673-043 | |
Penicillin/Streptomycin | Sigma-Aldritch | P0781-100ML | |
Percoll (Density gradient stock medium) | Cytivia | 17-0891-02 | Details in protocol |
PL0017 Plasmid | BEI Resources | MRA-786 | |
Pyrimethamine (for oral administration) | Sigma | 46706 | Preparation details: Add 17.5 mg Pyrimethamine to 2.5 mL of DMSO. Vortex, if needed to dissolve completely; Adjust pH of 225 mL of dH2O to 4 using HCL. Add Pyrimethamine in DMSO to water and bring to 250 mL. Add 10 g of sugar to encourage regular consumption of drugged water. Pyrimethamine is light sensitive. Use dark bottle or aluminum foil covered bottle when treating mice. |
RPMI 1640 | Corning | 15-040-CV | |
SoftWoRx microscopy software | Applied Precision | v6.1.3 |