Мышиные модели могут быть полезными инструментами для исследования биологии пигментного эпителия сетчатки (RPE). Установлено, что у мышей может развиться целый ряд патологий РПЭ. Здесь мы описываем протокол фенотипирования для выяснения и количественной оценки патологий RPE у мышей с использованием световой, просвечивающей электронной и конфокальной микроскопии.
Возрастная макулярная дегенерация (ВМД) является изнурительным заболеванием сетчатки у стареющего населения. Широко распространено мнение, что дисфункция пигментного эпителия сетчатки (РПЭ) является ключевым патобиологическим событием при ВМД. Чтобы понять механизмы, которые приводят к дисфункции RPE, исследователи могут использовать модели мышей. Предыдущими исследованиями было установлено, что у мышей могут развиваться патологии РПЭ, некоторые из которых наблюдаются в глазах людей с диагнозом ВМД. Здесь мы описываем протокол фенотипирования для оценки патологий RPE у мышей. Этот протокол включает в себя подготовку и оценку поперечных срезов сетчатки с использованием световой микроскопии и просвечивающей электронной микроскопии, а также плоских креплений RPE с помощью конфокальной микроскопии. Мы подробно описываем распространенные типы патологий RPE у мышей, наблюдаемые с помощью этих методов, и способы их количественной оценки с помощью объективных методов статистического тестирования. В качестве доказательства концепции мы используем этот протокол фенотипирования RPE для количественной оценки патологий RPE, наблюдаемых у мышей с сверхэкспрессией трансмембранного белка 135 (Tmem135) и старых мышей C57BL / 6J дикого типа. Основная цель этого протокола — представить стандартные методы фенотипирования RPE с объективными количественными оценками для ученых, использующих мышиные модели ВМД.
Возрастная макулярная дегенерация (ВМД) является распространенным заболеванием, приводящим к слепоте, которое поражает население старше 55 лет1. Многие исследователи считают, что дисфункция пигментного эпителия сетчатки (RPE) является ранним и важным патобиологическим событием при ВМД2. RPE представляет собой монослой поляризованных клеток, которым поручено поддерживать гомеостаз соседних фоторецепторов и хориоидальных кровеносных сосудов3. Существует множество моделей для исследования связанных с заболеванием механизмов в RPE, включая моделиклеточных культур 4,5 и мышей 6,7,8. В недавнем отчете были описаны стандартизированные протоколы и критерии контроля качества для моделей клеточных культур RPE4, но ни в одном отчете не было предпринято попыток стандартизировать фенотипирование RPE на моделях мышей. На самом деле, во многих публикациях, посвященных мышиным моделям ВМД, отсутствует полное описание РПЭ или количественная оценка патологий РПЭ в них. Общая цель этого протокола состоит в том, чтобы представить стандартные методы фенотипирования RPE с непредвзятыми количественными оценками для ученых, использующих модели мышей AMD.
В предыдущих публикациях отмечалось наличие нескольких патологий RPE у мышей с помощью трех методов визуализации. Например, световая микроскопия позволяет исследователям просматривать общую морфологию сетчатки мышей (рис. 1A) и выявлять патологии RPE, такие как истончение RPE, вакуолизация и миграция. Истончение RPE в модели мыши AMD иллюстрируется отклонением высоты RPE от соответствующих элементов управления (рис. 1B). Вакуолизацию РПЭ можно разделить на две отдельные категории: микровакуолизация (рис. 1C) и макровакуолизация (рис. 1D). Микровакуолизация РПЭ суммируется наличием вакуолей в РПЭ, которые не влияют на его общую высоту, тогда как макровакуолизация обозначается наличием вакуолей, выступающих во внешние сегменты фоторецепторов. Миграция РПЭ отличается фокальным агрегатом пигмента над монослоем РПЭ в поперечном сечении сетчатки (рис. 1Е). Следует отметить, что мигрирующие клетки RPE в донорских глазах ВМД проявляют иммунореактивность к маркерам иммунных клеток, таким как кластер дифференцировки 68 (CD68)9, и могут представлять собой иммунные клетки, поглощающие обломки RPE, или RPE, подвергающиеся трансдифференцировке 9. Другой метод визуализации, называемый просвечивающей электронной микроскопией, может позволить исследователям визуализировать ультраструктуру RPE и его базальной мембраны (рис. 2A). Этот метод может идентифицировать преобладающее отложение суб-RPE у мышей, известное как базальное ламинарное отложение (BLamD) (рис. 2B)10. Наконец, конфокальная микроскопия может выявить структуру клеток RPE с помощью визуализации плоских креплений RPE (рис. 3A). Этот метод позволяет выявить дисморфию СИЗД, отклонение РПЭ от его классической сотовой формы (рис. 3Б). Он также может обнаруживать многоядерность RPE, наличие трех или более ядер в ячейке RPE (рис. 3C). Для краткого изложения типов патологий RPE, присутствующих в современных моделях мышей AMD, мы отсылаем исследователей к этим обзорам из литературы 6,7.
Исследователи, изучающие ВМД, должны знать о преимуществах и недостатках использования мышей для исследования патологий РПЭ до протокола фенотипирования. Мыши выгодны из-за их относительно короткой продолжительности жизни и экономической эффективности, а также их генетической и фармакологической манипулятивности. У мышей также наблюдаются дегенеративные изменения RPE, включая миграцию RPE, дисморфию и многоядерность, которые наблюдаются в донорских глазахAMD 11,12,13,14,15,16,17; это говорит о том, что подобные механизмы могут лежать в основе развития этих патологий RPE у мышей и людей. Тем не менее, есть ключевые различия, которые ограничивают переводимость исследований на мышах на ВМД человека. Во-первых, у мышей нет макулы, анатомически обособленной области сетчатки человека, необходимой для остроты зрения, которая преимущественно поражается при ВМД. Во-вторых, некоторые патологии RPE у мышей, такие как истончение RPE и вакуолизация, обычно не наблюдаются в донорских глазахAMD 18. В-третьих, у мышей не развиваются друзы, что является отличительной чертой патологии ВМД19. Друзы представляют собой липид- и белковые отложения с очень небольшим количеством белков базальной мембраны, которые образуются между базальной пластинкой RPE и внутренним коллагеновым слоем мембраны Бруха (BrM)19. Друзы отличаются от BLamD, распространенного суб-РПЭ у мышей, как по составу, так и по анатомическому расположению. BLamD представляют собой зависимые от возраста и стресса аномалии, обогащенные внеклеточным матриксом, которые образуются между базальной пластинкой RPE BrM и базальными складками RPE20. Интересно, что BLamD имеют схожий белковый состав и внешний вид как у мышей, так и у людей 6,10,21. Недавняя работа предполагает, что BLamD могут влиять на патобиологию ВМД, влияя на прогрессирование ВМД до более поздних стадий18,22; таким образом, эти отложения могут представлять собой пораженный RPE в сетчатке мыши. Знание этих преимуществ и ограничений имеет решающее значение для исследователей, заинтересованных в переводе результатов исследований на мышах в AMD.
В этом протоколе мы обсуждаем методы подготовки глаз к световой, просвечивающей электронной и конфокальной микроскопии для визуализации патологий RPE. Мы также описываем, как непредвзято количественно оценивать патологии RPE для статистического тестирования. В качестве доказательства концепции мы используем протокол фенотипирования RPE для исследования структурных патологий RPE, наблюдаемых у мышей с избыточной экспрессией трансмембранного белка 135- (Tmem135) и старых мышей дикого типа (WT) C57BL / 6J. Таким образом, мы стремимся описать методологию фенотипирования, чтобы охарактеризовать RPE в моделях мышей AMD, поскольку в настоящее время нет доступных стандартных протоколов. Исследователи, заинтересованные в изучении и количественной оценке патологий фоторецепторов или сосудистой оболочки, которые также поражаются на моделях мышей с ВМД, могут не счесть этот протокол полезным для своих исследований.
В этой статье мы представили протокол фенотипирования для оценки структурных патологий RPE мышиных моделей. Мы описали этапы, необходимые для обработки глаз для различных методов визуализации, включая световую, просвечивающую электронную и конфокальную микроскопию, а также количестве…
The authors have nothing to disclose.
Авторы выражают благодарность Сатоши Киносите и Университету Висконсина (UW) за подготовку наших тканей к световой микроскопии. Это ядро поддерживается Департаментом патологии и лабораторной медицины UW, Онкологическим центром Карбоне Университета Висконсина (P30 CA014520) и Офисом директора NIH (S10OD023526). Конфокальная микроскопия проводилась в оптическом ядре биохимии UW, который был создан при поддержке Фонда биохимии Университета Вашингтона. Эта работа также была поддержана грантами Национального глазного института (R01EY022086 А. Икеда; R01EY031748 К. Боузу Рикману; P30EY016665 на кафедру офтальмологии и визуальных наук Университета Вашингтона; P30EY005722 в офтальмологический центр Дьюка; NIH T32EY027721 М. Ландовски; F32EY032766 М. Ландовски), председательство Тимоти Уильяма Траута (А. Икеда), Премия AMD Free Family FFB (К. Боуз Рикман); и неограниченный грант от Исследования по предотвращению слепоты (Глазной центр Дьюка).
0.1 M Cacodylate Buffer pH7.2 | PolyScientiifc R&D Company | S1619 | |
100 Capacity Slide Box | Two are needed for this protocol (one for H&E-stained slides and one for RPE flat mounts.) | ||
100% Ethanol | MDS Warehouse | 2292-CASE | Can be used to make diluted ethanol solutions in this protocol. |
1-Way Stopcock, 2 Female Luer Locks | Qosina | 11069 | |
1x Phosphate Buffer Solution (PBS) | Premade 1x PBS can be used in this protocol. | ||
2.0 mL microtubes | Genesee Scientific | 24-283-LR | |
24 Cavity Embedding Capsule Substitute Mold | Electron Microscopy Sciences | 70165 | |
24 inch PVC Tubing with Luer Ends | Fisher Scientific | NC1376778 | |
400 Mesh Gilder Thin Bar Square Mesh Grids | Electron Microscopy Sciences | T400-Cu | |
95% Ethanol | MDS Warehouse | 2293-CASE | |
Absorbent Underpads with Waterproof Moisture Barrier (23 inches by 24 inches) | VWR | 56616-031 | |
Adjustable 237 ml Spray Bottle | VWR | 23609-182 | |
Alexa Fluor488 Conjugated Donkey anti-Rabbit IgG | Thermo Fisher Scientific | A-21206 | |
Aluminum Foil | |||
BD Precision glide 19 Gauge Syringe Needle | Sigma-Aldrich | Z192546 | |
Bracken Forceps; Curved; Fine Cross Serrations; 4" Length, 1 mm Tip Width | Roboz Surgical Instrument | RS-5211 | Known as curved forceps in this protocol. |
Camel Hair Brush | Electron Microscopy Sciences | 65575-02 | |
Carbon Dioxide Euthanasia Chamber | |||
Carbon Dioxide Flow Meter | |||
Carbon Dioxide Tank | |||
Castaloy Prong Extension Clamps | Fisher Scientific | 05-769-7Q | |
Cast-Iron L-shaped Base Support Stand | Fisher Scientific | 11-474-207 | |
Cell Prolifer Program | Available to download: https://cellprofiler.org/releases | ||
Clear Nail Polish | Electron Microscopy Sciences | 72180 | |
Colorfrost Microscope Slides Lavender | VWR | 10118-956 | |
Computer | |||
DAPI | Sigma-Aldrich | D9542-5MG | |
Distilled H20 | Water from Milli-Q Purification System was used in this protocol. | ||
Dumont Thin Tip Tweezers; Pattern #55 | Roboz Surgical Instrument | RS-4984 | Known as fine-tipped forceps in this protocol, and 3 are needed for this protocol (two for dissections and one for electron microscope processing). |
Electron Microscopy Grid Holder | Electron Microscopy Sciences | 71147-01 | |
EPON 815 Resin | Electron Microscopy Sciences | 14910 | |
Epredia Mark-It Tissue Marking Yellow Dye | Fisher Scientific | 22050460 | Please follow manufacturer's protocol when using this tissue marking dye. |
Epredia Mounting Media | Fisher Scientific | 22-110-610 | Use for mounting H&E slides. |
Fiber-Lite Mi-150 Illuminator Series,150 w Halogen Light Source | Dolan-Jenner Industries | Mi-150 | Light source for dissecting microscope. |
Fiji ImageJ Program | Available to download: https://imagej.net/downloads | ||
Flexaframe Castaloy Hook Connector | Thermo Scientific | 14-666-18Q | |
Fume hood | |||
Glutaraldehyde 2.5% in Phosphate Buffer, pH 7.4, 32% | Electron Microscopy Sciences | 16537-05 | |
JEM-1400 Transmission Electron Microscope (JEOL) with an ORIUS (1000) CCD Camera | |||
Laboratory Benchtop Shaker | Two are needed for these experiments. One should be at room temperature while the other should be in a 4 degree Celsius cold room. | ||
Laser Cryo Tag Labels | Electron Microscopy Sciences | 77564-05 | |
Lead Citrate | Electron Microscopy Sciences | 17800 | |
Leica EM UC7Ultramicrotome | |||
Leica Reichert Ultracut S Microtome | |||
LifterSlips | Thermo Fisher Scientific | 22X22I24788001LS | Use these coverslips for the RPE flat mounts as they have raised edges and accommodate the thickness of the RPE. |
Mayer's Hematoxylin | VWR | 100504-406 | |
McPherson-Vannas Micro Dissecting Spring Scissors | Roboz Surgical Instrument | RS-5600 | Known as micro-dissecting scissors in protocol. |
Methanol | Fisher Scientific | A412-4 | |
Mice | Any AMD mouse model and its respective controls can work for this protocol. | ||
Micro Dissecting Scissors; Standard Version; Curved; Sharp Points; 24 mm Blade Length; 4.5" Overall Length | Roboz Surgical Instrument | RS-5913 | Known as curved scissors in this protocol. |
Microsoft Excel | |||
Microtube racks | |||
Nikon A1RS Confocal Microscope | |||
Normal Donkey Serum | SouthernBiotech | 0030-01 | |
Number 11 Sterile Disposable Scalpel Blades | VWR | 21909-380 | |
Osmium Tetroxide | Electron Microscopy Sciences | 19150 | |
Paraformaldehyde, 32% | Electron Microscopy Sciences | 15714-S | |
Pencil | |||
Petri Dish | VWR | 21909-380 | |
Pipette Tips | |||
Pipettes | |||
Polyclonal Anti-ZO-1 Antibody | Thermo Fisher Scientific | 402200 | |
Propylene Oxide | Electron Microscopy Sciences | 20412 | |
Razor Blade | VWR | 10040-386 | |
Shallow Tray for Mouse Perfusions | |||
Shandon Eosin Y Alcoholic | VWR | 89370-828 | |
Sharpie Ultra Fine Tip Black Permanent Marker | Staples | 642736 | |
Slide Rack for Staining | Grainger | 49WF31 | |
Squared Cover Glass Slips | Fisher Scientific | 12-541B | |
Staining Dish with Cover | Grainger | 49WF30 | Need 15 for H&E staining procedure. |
Target All-Plastic Disposable Luer-Slip 50 mL Syringe | Thermo Scientific | S7510-50 | Use only the syringe barrel. |
Timer | Fisher | 1464917 | |
Uranyl Acetate | Electron Microscopy Sciences | 22400 | |
Vacuum Oven | |||
Vectashield Mounting Medium | Vector Laboratories | H-1000 | Use for mounting RPE flat mounts. |
Xylene | Fisher Scientific | 22050283 | |
Zeiss Axio Imager 2 Light Microscope | This microscope has the capacity to generate stitched 20x images. If a light microscope does not have this capacity, then take images of the entire retina that are slightly overlapping each other. Use Adobe Photoshop to stitch these images together. Please refer to the manuals of the Adobe Photoshop program for image stitching. | ||
Zeiss Stemi 2000 Dissecting Microscope | Electron Microscopy Sciences | 65575-02 |