Summary

Konstruere sykliske peptider ved hjelp av et on-tether sulfoniumsenter

Published: September 28, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen presenterer syntesen av sykliske peptider via bisalkylering mellom cystein og metionin og den lettvinte tiol-yne-reaksjonen utløst av propargylsulfoniumsenteret.

Abstract

I de senere år har sykliske peptider tiltrukket seg økende oppmerksomhet innen narkotikaforskning på grunn av deres gode biologiske aktiviteter, og som en konsekvens blir de nå brukt klinisk. Det er derfor viktig å søke effektive strategier for å syntetisere sykliske peptider for å fremme deres anvendelse innen narkotikaforskning. Dette papiret rapporterer en detaljert protokoll for effektiv syntese av sykliske peptider ved bruk av on-harpiks eller intramolekylær (intermolekylær) bisalkylering. Ved hjelp av denne protokollen ble lineære peptider syntetisert ved å dra nytte av fastfase peptidsyntese med cystein (Cys) og metionin (Met) koblet samtidig på harpiksen. Videre ble sykliske peptider syntetisert via bisalkylering mellom Met og Cys ved hjelp av en tunable tether og et on-tether sulfoniumsenter. Hele den syntetiske ruten kan deles inn i tre hovedprosesser: debeskyttelse av Cys på harpiksen, koblingen av linkeren og sykliseringen mellom Cys og Met i en trifluoreddiksyre (TFA) spaltningsløsning. Videre, inspirert av reaktiviteten til sulfoniumsenteret, ble en propargylgruppe festet til Met for å utløse tiol-yne-tilsetning og danne et syklisk peptid. Deretter ble råpeptidene tørket og oppløst i acetonitril, separert og deretter renset ved høyytelses væskekromatografi (HPLC). Molekylvekten til det sykliske peptidet ble bekreftet ved væskekromatografi-massespektrometri (LC-MS), og stabiliteten til den sykliske peptidkombinasjonen med reduktanten ble videre bekreftet ved bruk av HPLC. I tillegg ble det kjemiske skiftet i det sykliske peptidet analysert ved 1H kjernemagnetisk resonans (1H NMR) spektra. Samlet sett hadde denne protokollen som mål å etablere en effektiv strategi for syntetisering av sykliske peptider.

Introduction

Protein-protein-interaksjoner (PPI)1 spiller en sentral rolle i forskning og utvikling av legemidler. Å konstruere stabiliserte peptider med fast konformasjon ved kjemiske midler er en av de viktigste metodene for å utvikle mimetiske motiver av PPI2. Til dags dato har flere sykliske peptider som retter seg mot PPI blitt utviklet for klinisk bruk3. De fleste peptider er begrenset til en α-helix-konformasjon for å redusere konformasjonsentropien og forbedre metabolsk stabilitet, målbindende affinitet og cellepermeabilitet 4,5. I løpet av de siste 2 tiårene har sidekjedene til Cys6,7, lysin8,9, tryptofan 10, arginin11 og Met 12,13 blitt satt inn i unaturlige aminosyrer for å fikse peptidet i en syklisk konformasjon. Slike sykliske peptider kan målrette mot et unikt kjemisk rom eller spesielle steder, og derved utløse en kovalent reaksjon for å danne protein-peptid kovalent binding14,15,16,17. I en nylig rapport fra Yu et al., ble et kloracetamid forankret på domenet til peptidligander, noe som sikrer en kovalent konjugeringsreaksjon med utmerket proteinspesifisitet18. Videre ble elektrofile stridshoder, som akrylamid og arylsulfonylfluorid (ArSO2F), videre innlemmet i peptider av Walensky et al.19 for å danne stabiliserte peptidkovalente hemmere og forbedre antitumoreffekten av peptidhemmere. Derfor er det svært viktig å introdusere en ekstra funksjonell gruppe for å kovalent modifisere protein-peptidligander20. Disse gruppene reagerer ikke bare med proteiner på sidekjeden, men stabiliserer også den sekundære strukturen til peptidet21. Imidlertid er anvendelsen av kovalent modifiserte proteiner indusert av peptidligander begrenset på grunn av den kompliserte syntetiske ruten og den ikke-spesifikke bindingen av de kjemiske gruppene22,23. Effektive strategier for syntese av sykliske peptider er derfor presserende nødvendig.

Inspirert av de mangfoldige strategiene til sykliske peptider 2,24,25,26, forsøker denne protokollen å utvikle en enkel og effektiv metode for stabilisering av peptider. I tillegg bemerket vi at sidekjedegruppen til et stabilt peptid kunne reagere kovalent med et målprotein når det var romlig nær peptidligandene. Mangelen på kjemisk modifisert Met ble fylt av Deming-gruppen i 2013 ved å utvikle en ny metode for å produsere selektivt modifisert peptidmetionin27. Basert på denne bakgrunnen fokuserte Shi og medarbeidere på utviklingen av ringlukkingen av sidekjeder for å danne et sulfoniumsaltsenter. Når peptidliganden kombineres med målproteinet, reagerer sulfoniumsaltgruppen kovalent med det romlig nære Cys-proteinet. Shi og medarbeidere har de siste årene utviklet en ny metode for stabilisering av syklisk peptid28. Sulfoniumsaltet på det sykliske peptidet ble redusert med et reduksjonsmiddel med en sulfhydrylgruppe som reversibelt ble redusert til Met. Reaksjonen hadde imidlertid lav effektivitet, noe som var skadelig for påfølgende biologiske applikasjonsstudier. I den nåværende studien ble en Met-Cys og propargylbromid-Cys ringlukkingsreaksjon designet, med et enkelt sulfoniumsalt igjen på sidekjeden til det sykliske peptidet. Sulfoniumsaltet fungerte som et nytt stridshode som reagerte kovalent med proteinet Cys under romlig nærhet. Kort fortalt ble et Cys og Met-mutert peptid syklisert ved intramolekylær alkylering, noe som resulterte i generering av et on-tether sulfoniumsenter. I denne prosessen var dannelsen av en sidekjedebro kritisk for sykliske peptider. Samlet sett beskriver denne protokollen en detaljert sulfoniumbasert peptidsyklisering som oppnås ved bruk av enkle reaksjonsforhold og operasjoner. Målet er å utvikle en mulig metode for videre brede biologiske anvendelser.

Protocol

1. Forberedelse av utstyr FORSIKTIG: Morfolin, N,N-dimetylformamid (DMF), diklormetan (DCM), N,N-diisopropyletylamin (DIPEA), TFA, morfolin, piperidin, dietyleter og metanol er giftige, flyktige og etsende. Disse reagensene kan skade menneskekroppen ved innånding, inntak eller hudkontakt. For alle kjemiske eksperimenter, bruk verneutstyr, inkludert engangshansker, eksperimentelle strøk og vernebriller. Konstruer alle peptidsubstrater på Rink-amid 4-metylbenzhydryl…

Representative Results

Alle de lineære peptidene ble syntetisert på Rink-amid MBHA-harpiks ved standard manuell Fmoc fastfasesyntese. En modell syklisk heksapeptid (Ac (cyclo-I)-WMAAAC-NH2) ble konstruert som beskrevet i figur 5A. Spesielt ble et nytt on-tether kiralt senter generert av Met-alkylering, med de to epimerer av syklisk peptid (Ia, Ib) bekreftet av omvendt fase HPLC. Videre ble konvertering og forhold mellom epimerer bestemt ved bruk av integrasjon av omvendt fase HPLC. Syklisk Ac-(cyclo-I…

Discussion

Den syntetiske tilnærmingen beskrevet i dette papiret gir en metode for å syntetisere sykliske peptider ved hjelp av Cys og Met i peptidsekvensen, der de grunnleggende lineære peptidene er konstruert av vanlige fastfase peptidsynteseteknikker. For bisalkylering av sykliske peptider mellom Cys og Met, kan hele syntetiske ruten deles inn i tre hovedprosesser: debeskyttelse av Cys på harpiksen, koblingen av linkeren og sykliseringen mellom Cys og Met i en trifluoreddiksyrespaltningsløsning. Spesielt ble fjerningen av d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner økonomisk støtte fra National Key R&D Program of China (2021YFC2103900); Natural Science Foundation of China tilskudd (21778009, og 21977010); Natural Science Foundation i Guangdong-provinsen (2022A1515010996 og 2020A1515010521): Shenzhen Science and Technology Innovation Committee, (RCJC20200714114433053, JCYJ201805081522131455 og JCYJ20200109140406047); og Shenzhen-Hong Kong Institute of Brain Science-Shenzhen Fundamental Research Institutions grant (2019SHIBS0004). Forfatterne anerkjenner tidsskriftstøtte fra Chemical Science , The Royal Society of Chemistry for referanse 30 og The Journal of Organic Chemistry, American Chemical Society, for referanse 31.

Materials

1,3-bis(bromomethyl)-benzen Energy D0215
1,3-Dimethylbarbituric acid Energy A46873
1H NMR and HSQC Bruker  AVANCE-III 400
1-Hydroxybenzotriazole hydrate Energy E020543
2-(7-azabenzotriazol-1-yl)-N,N,N',N'-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HATU) Energy A1797
2-mercaptopyridine Energy Y31130
6-Aminocaproic acid Energy A010678
Acetic anhydride Energy A01021454
Acetonitrile Aldrich 9758
Ammonium carbonate Energy 12980
Dichloromethane (DCM) Energy W330229
Digital Heating Cooling Drybath  Thermo Scientific 88880029
Diisopropylethylamine (DIPEA) Energy W320014
Dimethyl formamide (DMF) Energy B020051
Dithiothreitol Energy A10027
Electrospray Ionization Mass SHIMADZU2020  LC-MS2020
Fmoc-Ala-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30101
Fmoc-Arg(Pbf)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30201
Fmoc-Cys(Trt)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30501
Fmoc-Gln(Trt)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30601
Fmoc-Glu(OtBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30701
Fmoc-His(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30902
Fmoc-Ile-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31001
Fmoc-Lys(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31201
Fmoc-Met-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31301
Fmoc-Pro-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31501
Fmoc-Ser(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31601
Fmoc-Thr(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31701
Fmoc-Trp(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31801
Fmoc-Tyr(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31901
Fmoc-Val-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R32001
Formic acid Energy W810042
High Performance Liquid
Chromatography
SHIMADZU LC-2030
Methanol Aldrich 9758
Morpholine Aldrich M109062
N,N'-Diisopropylcarbodiimide Energy B010023
Ninhydrin Reagent Energy N7285
Propargyl bromide Energy W320293
Rink Amide MBHA resin Nanjing Peptide Biotech Ltd.
Solid Phase Extraction (SPE) Sample Collection Plates  Thermo Scientific 60300-403
Tetrakis(triphenylphosphine) palladium Energy T1350
Three-way stopcocks Bio-Rad 7328107
Triethylamine Energy B010737
Trifluoroacetic acid (TFA) J&K 101398
Triisopropylsilane (TIS) Energy T1533

References

  1. Arkin, M. R., Tang, Y. Y., Wells, J. A. Small-molecule inhibitors of protein-protein interactions: Progressing toward the reality. Chemistry Biology. 21 (9), 1102-1114 (2014).
  2. Shi, X. D., et al. Reversible stapling of unprotected peptides via chemoselective methionine bis-alkylation/dealkylation. Chemical Science. 9 (12), 3227-3232 (2018).
  3. Muttenthaler, M., King, G. F., Adams, D. J., Alewood, P. F. Trends in peptide drug discovery. Nature Reviews Drug Discovery. 20 (4), 309-325 (2021).
  4. White, C. J., Yudin, A. K. Contemporary strategies for peptide macrocyclization. Nature Chemistry. 3 (7), 509-524 (2011).
  5. Victoria, G. G., Reddy, S. R. Recent advances in the synthesis of organic chloramines and their insights into health care. New Journal of Chemistry. 45, 8386-8408 (2021).
  6. Kim, J. I., et al. Conformation and stereoselective reduction of hapten side chains in the antibody combining site. Journal of the American Chemical Society. 113 (24), 9392-9394 (1991).
  7. Waddington, M. A., et al. An organometallic strategy for cysteine borylation. Journal of the American Chemical Society. 143 (23), 8661-8668 (2021).
  8. Luong, H. X., Bui, H. T. P., Tung, T. T. Application of the all-hydrocarbon stapling technique in the design of membrane-active peptides. Journal of Medicinal Chemistry. 65 (4), 3026-3045 (2022).
  9. Góngora-Benítez, M., Tulla-Puche, J., Albericio, F. Multifaceted roles of disulfide bonds. peptides as therapeutics. Chemical Reviews. 114 (2), 901-926 (2014).
  10. Li, B., et al. Cooperative stapling of native peptides at lysine and tyrosine or arginine with formaldehyde. Angewandte Chemie International Edition. 60 (12), 6646-6652 (2021).
  11. Blaum, B. S., et al. Lysine and arginine side chains in glycosaminoglycan-protein complexes investigated by NMR, cross-Linking, and mass spectrometry: a case study of the factor h-heparin Interaction. Journal of the American Chemical Society. 132 (18), 6374-6381 (2010).
  12. Petitdemange, R., et al. Selective tuning of elastin-like polypeptide properties via methionine oxidation. Biomacromolecules. 18 (2), 544-550 (2016).
  13. Kadlcik, V., et al. Reductive modification of a methionine residue in the amyloid-beta peptide. Angewandte Chemie International Edition. 45 (16), 259 (2006).
  14. Reguera, L., Rivera, D. G. Multicomponent reaction toolbox for peptide macrocyclization and stapling. Chemical Reviews. 119 (17), 9836-9860 (2019).
  15. Reddy, C. B. R., et al. Antiviral activity of 3-(1-chloropiperidin-4-yl)-6-fluoro benzisoxazole 2 against white spot syndrome virus in freshwater crab, Paratelphusa hydrodomous. Aquaculture Research. 47 (8), 2677-2681 (2015).
  16. Embaby, A. M., Schoffelen, S., Kofoed, C., Meldal, M., Diness, F. Rational tuning of fluorobenzene probes for cysteine-selective protein modification. Angewandte Chemie International Edition. 57 (27), 8022-8026 (2018).
  17. Jiang, H. F., Chen, W. J., Wang, J., Zhang, R. S. Selective N-terminal modification of peptides and proteins: recent progresses and applications. Chinese Chemical Letters. 33 (1), 80-88 (2022).
  18. Yu, Y., et al. PDZ-reactive peptide activates ephrin-B reverse signaling and inhibits neuronal chemotaxis. ACS Chemical Biology. 11 (1), 149-158 (2016).
  19. Huhn, A. J., Guerra, R. M., Harvey, E. P., Bird, G. H., Walensky, L. D. Selective covalent targeting of anti-apoptotic BFL-1 by cysteine-reactive stapled peptide inhibitors. Cell Chemical Biology. 23 (9), 1123-1134 (2016).
  20. Chow, H. Y., Zhang, Y., Matheson, E., Li, X. C. Ligation technologies for the synthesis of cyclic peptides. Chemical Reviews. 119 (17), 9971-10001 (2019).
  21. Zhang, H. Y., Chen, S. Y. Cyclic peptide drugs approved in the last two decades (2001-2021). RSC Chemical Biology. 3 (1), 18-31 (2021).
  22. Lee, Y. J., Han, S. H., Lim, Y. B. Simultaneous stabilization and multimerization of a peptide alpha-helix by stapling polymerization. Macromolecular Rapid Communications. 37 (13), 1021-1026 (2016).
  23. Karthikeyan, K., et al. Anti-viral activity of methyl 1-chloro-7-methyl-2-propyl-1h-benzo[d] imidazole-5-carboxylate against white spot syndrome virus in freshwater crab (Paratelphusa hydrodromous). Aquaculture International. 30, 989-998 (2022).
  24. Zhao, H., et al. Crosslinked aspartic acids as helix-nucleating templates. Angewandte Chemie International Edition. 55 (39), 12088-12093 (2016).
  25. Hu, K., et al. An in-tether chiral center modulates the helicity, cell permeability, and target binding affinity of a peptide. Angewandte Chemie International Edition. 55 (28), 8013-8017 (2016).
  26. Hu, K., Sun, C., Li, Z. Reversible and versatile on-tether modification of chiral-center-induced helical peptides. Bioconjugate Chemistry. 28 (7), 2001-2007 (2017).
  27. Kramer, J. R., Deming, T. J. Reversible chemoselective tagging and functionalization of methionine containing peptides. Chemical Communications. 49 (45), 5144-5146 (2013).
  28. Shi, X. D., et al. Reversible stapling of unprotected peptides via chemoselective methionine bisalkylation/dealkylation. Chemical Science. 9 (12), 3227-3232 (2018).
  29. Merrifield, B. Solid phase synthesis. Nobel lecture, 8 December 1984. Bioscience Reports. 5 (5), 353-376 (1985).
  30. Wang, D. Y., et al. A sulfonium tethered peptide ligand rapidly and selectively modifies protein cysteine in vicinity. Chemical Science. 10 (19), 4966-4972 (2019).
  31. Hou, Z. F., et al. A sulfonium triggered thiol-yne reaction for cysteine modification. The Journal of Organic Chemistry. 85 (3), 1698-1705 (2020).
  32. Reguera, L., Rivera, D. G. Multicomponent reaction toolbox for peptide macrocyclization and stapling. Chemical Reviews. 119 (17), 9836-9860 (2019).
check_url/cn/64289?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Song, C., Hou, Z., Jiao, Z., Liu, Z., Lian, C., Zhang, M., Liang, W., Yin, F., Li, Z. Constructing Cyclic Peptides Using an On-Tether Sulfonium Center. J. Vis. Exp. (187), e64289, doi:10.3791/64289 (2022).

View Video