שיטת הכנת דגימות חדשנית מודגמת לניתוח של מקרוקולוניות חיידקים מבוססות אגר באמצעות ספקטרומטריית מסה של הדמיית ספיחה / יינון בלייזר בסיוע מטריצה.
הבנת ההשלכות המטבוליות של אינטראקציות מיקרוביאליות המתרחשות במהלך זיהום מציבה אתגר ייחודי לתחום הדימות הביו-רפואי. ספקטרומטריית מסות הדמיה בסיוע לייזר בסיוע מטריצה (MALDI) מייצגת שיטת הדמיה באתרה נטולת תוויות המסוגלת ליצור מפות מרחביות עבור מגוון רחב של מטבוליטים. בעוד שדגימות רקמה בחתך דק מנותחות כיום באופן שגרתי באמצעות טכנולוגיה זו, ניתוחי ספקטרומטריית מסות הדמיה של מצעים לא מסורתיים, כגון מושבות חיידקים הגדלות בדרך כלל על אגר במחקר מיקרוביולוגי, נותרו מאתגרים בשל תכולת המים הגבוהה והטופוגרפיה הלא אחידה של דגימות אלה. מאמר זה מדגים זרימת עבודה להכנת דגימות כדי לאפשר ניתוח ספקטרומטריית מסות הדמיה של סוגי דגימות אלה. תהליך זה מודגם באמצעות מושבות מקרו-מושבות של תרבית חיידקית משותפת של שני פתוגנים במערכת העיכול: Clostridioides difficile ו- Enterococcus faecalis. חקר אינטראקציות מיקרוביאליות בסביבת אגר מוגדרת היטב זו הוכח גם כמשלים מחקרי רקמות שמטרתם להבין שיתוף פעולה מטבולי מיקרוביאלי בין שני אורגניזמים פתוגניים אלה במודלים של זיהום בעכברים. ניתוחי ספקטרומטריית מסה של המטבוליטים של חומצות האמינו ארגינין ואורניתין מוצגים כנתונים מייצגים. שיטה זו ישימה באופן נרחב לאנליטים אחרים, פתוגנים מיקרוביאליים או מחלות, וסוגי רקמות שבהם נדרשת מידה מרחבית של ביוכימיה תאית או רקמתית.
המיקרוביום האנושי הוא מערכת אקולוגית דינמית ביותר הכוללת אינטראקציות מולקולריות של חיידקים, נגיפים, ארכאה ואיקריוטים מיקרוביאליים אחרים. בעוד שיחסים מיקרוביאליים נחקרו באינטנסיביות בשנים האחרונות, עדיין ניתן להבין הרבה על תהליכים מיקרוביאליים ברמה הכימית 1,2. זה נובע בחלקו מחוסר הזמינות של כלים המסוגלים למדוד במדויק סביבות מיקרוביאליות מורכבות. ההתקדמות בתחום ספקטרומטריית מסות הדמיה (IMS) בעשור האחרון אפשרה מיפוי מרחבי באתרו וללא תוויות של מטבוליטים, שומנים וחלבונים רבים במצעים ביולוגיים 3,4. ספיחה/יינון לייזר בסיוע מטריצה (MALDI) התפתחה כטכניקת היינון הנפוצה ביותר המשמשת בספקטרומטריית מסות הדמיה, הכוללת שימוש בלייזר UV כדי לעבד חומר מפני השטח של קטע רקמה דק למדידה על ידי ספקטרומטריית מסה4. תהליך זה מתאפשר על ידי יישום מטריצה כימית המיושמת באופן הומוגני על פני השטח של הדגימה, ומאפשרת לבצע מדידות רציפות בתבנית רסטר על פני שטח הדגימה. מפות חום של עוצמות יונים אנליטיות נוצרות לאחר מכן לאחר איסוף נתונים. ההתקדמות האחרונה במקורות יינון וטכניקות דגימה אפשרה ניתוח של מצעים לא מסורתיים כגון חיידקים5 ויונקים 6,7,8 דגימות תאיות שגדלו על אגר מזין. המידע המולקולרי המרחבי המסופק על ידי IMS יכול לספק תובנה ייחודית לגבי התקשורת הביוכימית של אינטראקציות מיקרוב-מיקרוב ומיקרובים מארחים במהלך זיהום 9,10,11,12,13,14.
עם זיהום Clostridioides difficile (CDI), C. difficile נחשף לסביבה מיקרוביאלית המשתנה במהירות במערכת העיכול, שבה אינטראקציות מיקרוביאליות צפויות להשפיע על תוצאות זיהום15,16. באופן מפתיע, מעט ידוע על המנגנונים המולקולריים של אינטראקציות בין C. difficile לבין מיקרוביוטה תושב במהלך זיהום. לדוגמה, אנטרוקוקים הם קבוצה של פתוגנים אופורטוניסטיים במיקרוביום המעי ונקשרו לרגישות מוגברת ולחומרה של CDI17,18,19,20. עם זאת, מעט ידוע על המנגנונים המולקולריים של האינטראקציות בין פתוגנים אלה. כדי להמחיש תקשורת של מולקולות קטנות בין החברים האלה במיקרוביום המעי, מקרו-מושבות חיידקים גודלו כאן על אגר כדי לדמות אינטראקציות מיקרואורגניזם והיווצרות ביופילם חיידקי בסביבה מבוקרת. עם זאת, השגת התפלגות מטבולית מייצגת בניתוח ספקטרומטריית מסה של הדמיית MALDI של דגימות תרבית חיידקים היא מאתגרת בשל תכולת המים הגבוהה וטופוגרפיית פני השטח הלא אחידה של דגימות אלה. זה נגרם בעיקר על ידי האופי ההידרופילי מאוד של אגר ואת התגובה משטח אגר לא אחיד במהלך הסרת לחות.
תכולת המים הגבוהה של אגר יכולה גם להקשות על השגת ציפוי מטריצת MALDI הומוגני ויכולה להפריע לניתוח MALDI הבא שבוצע ב- vacuo21. לדוגמה, מקורות MALDI רבים פועלים בלחצים של 0.1-10 Torr, שהוא ואקום מספיק כדי להסיר לחות מהאגר ויכול לגרום לעיוות של הדגימה. שינויים מורפולוגיים אלה באגר הנגרמים על ידי סביבת הוואקום גורמים לבעבוע וסדקים בחומר האגר המיובש. ממצאים אלה מפחיתים את ההיצמדות של האגר למגלשה ויכולים לגרום לפירוק או התקלפות של הדגימה לתוך מערכת ואקום המכשיר. עובי דגימות האגר יכול להיות עד 5 מ”מ מהמגלשה, מה שעלול ליצור מרווח לא מספיק מאופטיקת היונים בתוך המכשיר, ולגרום לזיהום ו/או נזק לאופטיקה של יונים במכשיר. השפעות מצטברות אלה יכולות לגרום להפחתה של אות היונים המשקף את טופוגרפיית פני השטח, במקום את האינטראקציות הביוכימיות המיקרוביאליות הבסיסיות. דגימות אגר חייבות להיות מיובשות בצורה הומוגנית ולהיות מודבקות בחוזקה לשקופית מיקרוסקופ לפני ניתוח בחלל ריק.
מאמר זה מדגים תהליך הכנה לדוגמה לייבוש מבוקר של מושבות מאקרו בתרבית חיידקים הגדלות על מצע אגר. תהליך ייבוש רב שלבי ואיטי זה (יחסית לאלה שדווחו בעבר) מבטיח כי האגר יתייבש באופן אחיד תוך מזעור ההשפעות של בעבוע או פיצוח של דגימות אגר המותקנות על שקופיות מיקרוסקופ. על ידי שימוש בשיטת ייבוש הדרגתית זו, הדגימות נצמדות מאוד לשקופית המיקרוסקופ וניתנות ליישום מטריצה עוקב ולניתוח MALDI. הדבר מודגם באמצעות מושבות חיידקים מודל של C. difficile הגדלות על מודלים של רקמת אגר ומורין המכילות CDI עם וללא נוכחות של פתוגן קומנסלי ואופורטוניסטי, Enterococcus faecalis. ניתוח ספקטרומטריית מסה של MALDI של מודלים חיידקיים ורקמתיים מאפשר מיפוי מרחבי של פרופילי מטבוליטים של חומצות אמינו, ומספק תובנה חדשה לגבי מטבוליזם מיקרוביאלי ביו-אנרגטי ותקשורת.
במהלך ספקטרומטריית מסות הדמיית MALDI, חשוב שיהיה משטח דגימה שטוח כדי לספק קוטר מוקד עקבי של לייזר MALDI האירוע על מצע הדגימה. סטיות בגובה הדגימה עלולות לגרום לקרן הלייזר MALDI לצאת מהמיקוד, ולגרום לשינויים בקוטר הקרן ובעוצמה, שיכולים להשפיע על יעילות היינון של MALDI. שינויים אלה ביעילות היינון יכול?…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) המכון הלאומי למדעי הרפואה הכלליים (NIGMS) תחת הפרס GM138660. J.T.S. נתמך על ידי מלגת הקיץ של משפחת צ’ארלס ומוניקה בורקט מאוניברסיטת פלורידה. J.P.Z. נתמך על ידי מענקי NIH K22AI7220 (NIAID) ו- R35GM138369 (NIGMS). ABS נתמך על ידי מענק הכשרה לביולוגיה תאית ומולקולרית באוניברסיטת פנסילבניה (T32GM07229).
0.2 μm Titan3 nylon syringe filters | Thermo Scientific | 42225-NN | |
1,5-diaminonaphthalene MALDI matrix | Sigma Aldrich | 2243-62-1 | |
20 mL Henke Ject luer lock syringes | Henke Sass Wolf | 4200.000V0 | |
275i series convection vacuum gauge | Kurt J. Lesker company | KJL275807LL | |
7T solariX FTICR mass spectrometer equipped with a Smartbeam II Nd:YAG MALDI laser system (2 kHz, 355 nm) | Bruker Daltonics | ||
Acetic acid solution, suitable for HPLC | Sigma Aldrich | 64-19-7 | |
Acetonitrile, suitable for HPLC, gradient grade, ≥99.9% | Sigma Aldrich | 75-05-8 | |
Ammonium hydroxide solution, 28% NH3 in H2O, ≥99.99% trace metals basis | Sigma Aldrich | 1336-21-6 | |
Autoclavable biohazard bags: 55 gal | Grainger | 45TV10 | |
Biohazard specimen transport bags (8 x 8 in.) | Fisher Scientific | 01-800-07 | |
Brain heart infusion broth | BD Biosciences | 90003-040 | |
C57BL/6 male mice | Jackson Laboratories | ||
CanoScan 9000F Mark II photo and document scanner | Canon | ||
CM 3050S research cryomicrotome | Leica Biosystems | ||
Desiccator cabinet | Sigma Aldrich | Z268135 | |
Diamond tip scriber, Electron Microscopy Sciences | Fisher Scientific | 50-254-51 | |
Drierite desiccant pellets | Drierite | 21005 | |
Ethanol, 200 Proof | Decon Labs | 2701 | |
flexImaging software | Bruker Daltonics | ||
ftmsControl software | Bruker Daltonics | ||
Glass vacuum trap | Sigma Aldrich | Z549460 | |
HTX M5 TM robotic sprayer | HTX Technologies | ||
Indium Tin Oxide (ITO)-coated microscope slides | Delta Technologies | CG-81IN-S115 | |
In-line HEPA filter to vacuum pump | LABCONCO | 7386500 | |
Methanol, HPLC Grade | Fisher Chemical | 67-56-1 | |
MTP slide-adapter II | Bruker Daltonics | 235380 | |
Optimal cutting temperature (OCT) compound | Fischer Scientific | 23-730-571 | |
Peridox RTU Sporicide, Disinfectant and Cleaner | CONTEC | CR85335 | |
PTFE (Teflon) printed slides, Electron Microscopy Sciences | VWR | 100488-874 | |
Rotary vane vacuum pump RV8 | Edwards | A65401903 | |
Tissue-Tek Accu-Edge Disposable High Profile Microtome Blades | Electron Microscopy Sciences | 63068-HP | |
Transparent vacuum tubing | Cole Palmer | EW-06414-30 | |
Ultragrade 19 vacuum pump oil | Edwards | H11025011 | |
Variable voltage transformer | Powerstat | ||
Water, suitable for HPLC | Sigma Aldrich | 7732-18-5 | |
Wide-mouth dewar flask | Sigma Aldrich | Z120790 |