光学的透明度は、ゼブラフィッシュの細胞生物学的および生理学的研究にとって大きな利点です。骨格筋および隣接組織の成長が全身の成長とどのように統合されるかについての新しい洞察を可能にする、個々の動物の細胞増殖を測定するための堅牢な方法が説明されています。
生きた胚、幼虫または幼体のゼブラフィッシュの体全体の個々の細胞を視覚化するために、いくつかの方法を用いることができる。蛍光マークされた原形質膜を持つ生きた魚を共焦点レーザー走査顕微鏡でスキャンして、筋肉組織の体積と存在する筋線維の数を決定できることを示しています。生きた動物の細胞数とサイズを経時的に測定するための効率的なアプローチが説明され、より困難なセグメンテーション法に対して検証されています。筋肉の電気的、したがって収縮性の活動の制御を可能にする方法が記載されている。骨格筋収縮活動の喪失は、筋肉の成長を大幅に減少させました。幼虫では、パターン化された電気的誘発収縮活性の再導入を可能にするプロトコルが記載されている。記載された方法は、個体間変動の影響を最小限に抑え、生物の状況における様々な細胞および生理学的成長パラメータに対する電気的、遺伝的、薬物的、または環境刺激の効果の分析を可能にするであろう。その後、個人に対する定義された早期介入の測定された効果の長期フォローアップを行うことができます。
細胞数の増加(過形成)および/または細胞サイズ(肥大)を含む調節された組織成長は、発生、再生、および生態学的および進化的適応における重要な要素です。ここ数十年で細胞生物学と発生生物学の両方の分子遺伝学的理解が大幅に進歩したにもかかわらず、組織と臓器のサイズの制御の機構的理解はまだ始まったばかりです。知識におけるこの不足の理由の1つは、必要な空間的および時間的精度で生物の組織成長を定量化することの難しさです。
生物全体の成長のさまざまな側面を経時的に繰り返し測定することができ、個々の成長曲線を明らかにすることができます1,2,3,4,5。二重X線吸収測定法(DXA)、コンピューター断層撮影(CT)、磁気共鳴画像法(MRI)などのますます洗練されたスキャン方法により、ヒトとモデル生物の両方の単一の個人における臓器全体および他の身体領域(たとえば、個々の識別された骨格筋)の成長の追跡が可能になります6,7,8,9,10.しかし、これらの方法では個々の細胞を明らかにする分解能がまだないため、細胞の挙動と組織レベルの成長との関連を特定することは困難でした。このようなリンクを作成するために、従来の研究では、類似した個々の動物のコホートに依存することが多く、そのうちのいくつかは連続した時点で犠牲にされ、細胞学的に詳細に分析されます。このようなアプローチでは、(できれば類似しているが、それでも変動する)個人のグループ間で観察された変化を平均化する必要があるため、時間的および空間的分解能の欠如に悩まされ、原因と結果を示唆する細胞レベルで相関イベントを見つけるのが困難です。
無脊椎動物のモデル生物に関する研究は、最初はC.エレガンスとD.メラノガスターでしたが、光学顕微鏡を開発して細胞分解能を達成し、単一の個体の経時的な成長を正確に測定することで、これらの問題を回避しました。このような研究は、これらの小さなモデル生物の成長における著しく不変な細胞系譜挙動を明らかにしました11、12、13、14、15、16、17。しかし、すべての脊椎動物を含む多くの動物は、不確定な細胞系譜を持ち、遺伝的にコードされた成長プログラムを、そのすべての構成組織と器官が適切に一致する機能的な3次元生物に変えるのに役立つ神秘的なフィードバックプロセスによって組織の成長を制御します。これらの複雑な成長過程を理解するためには、選択した時点で遺伝的、薬理学的または他の介入によって実験的に操作され、その後効果を分析できる単一の個体において、組織全体または臓器全体を経時的に画像化することが望ましい。
各脊椎動物の骨格筋は、定義されたサイズ、形状、機能、および骨、腱、神経などの隣接組織との十分に特徴付けられた相互作用を持っています。一部の筋肉は小さく、皮膚のすぐ下にあるため、高解像度の画像検査に適しています。ほとんどの臓器と同様に、各筋肉は、安定した成人のサイズに達する前に、胎児、出生後、および若年期を通じて成長します。しかし、筋肉には、使用と栄養に応じて、成人期にサイズを変える独自の能力もあり18、この特性は、生物のフィットネス、スポーツパフォーマンス、および自立生活に大きな影響を与えます。老年期の筋肉量と機能の低下であるサルコペニアは、人口の高齢化に直面している社会にとってますます懸念されている問題です19,20,21。
私たちらは、ゼブラフィッシュ幼虫のセグメント的に繰り返される体における骨格筋組織の定義されたブロックの成長に、組織の成長、維持、および修復を観察および操作できる数百の細胞を含む明らかに閉じたシステムとして焦点を当てました22,23,24,25,26。いくつかの定量的研究は以前に報告されていますが25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、個々の脊椎動物生物の細胞の詳細で筋肉成長を経時的に測定する詳細で検証された方法は利用できません。ここでは、そのような繰り返し測定を実行する方法のための効率的なプロトコルが検証とともに説明され、変化した電気的活動に応答して肥大および過形成成長の両方の変化を分析するためのその使用例が提供される。
本稿では,色素沈着が画像形成に大きな支障をきたさない段階や遺伝的変異において,一過性の麻酔や固定化が忍容性が高い場合に,生きたゼブラフィッシュ幼生の筋肉量を正確かつ効率的に推定する方法について報告する.これまではレーザー走査型共焦点顕微鏡を採用してきましたが、ここで説明するアプローチは、スピニングディスク共焦点顕微鏡やライトシート顕微鏡、および異なる焦点…
The authors have nothing to disclose.
著者らは、記載されたプロトコルの開発のためのヒューズ研究室のメンバーであるSeetharamaiah Attili、Jana Koth、Fernanda Bajanca、Victoria C. Williams、Yaniv Hinits、Giorgia Bergamin、およびVladimir Snetkov博士の努力、およびプラスミドまたはゼブラフィッシュ系統を共有したHenry Roehl、Christina Hammond、David Langenau、Peter Currieに深く感謝しています。SMHは、プログラムグラントG1001029、MR / N021231 / 1、およびMR / W001381 / 1サポートを持つ医学研究評議会(MRC)の科学者です。MAは、キングスカレッジロンドンでMRC博士課程の博士課程の学生資格を取得しました。この研究は、学者、メンター、そして友人であるデビッドM.ロビンソンの三角関数の入力から恩恵を受けました。
Adhesive, Blu Tack | Bostik | – | – |
Aerosol vacuum | – | – | – |
Agarose | Sigma-Aldrich | A9539 | – |
Agarose, low gelling temperature | Sigma-Aldrich | A9414 | Once melted, keep at 37oC in a block heater to remain in liquid form for repeated use. |
Block heater | Cole-Parmer | SBH130 | – |
BODIPY FL C5-ceramide | Thermo Scientific | D3521 | To be diluted in fish water and used at 5 µM for overnight incubation. |
Crocodile clips and wires | – | – | – |
Fiji/imageJ | National Institutes of Health, NIH | – | – |
Fish medium, Fish water | – | – | Circulating system water collected from the fish facility. |
Fish medium, E3 medium | – | – | E3 is described in The Zebrafish Book. http://zfin.org (5 mM NaCl, 0.17 mM KCl, 0.33 mM CaCl2, and 0.33 mM MgSO4 in distilled water). |
Fluorescence microscope | Leica | Leica MZ16F | Fluorescence microscope of other kind are also expected to be suitable. |
Glass needle | World Precision Instruments, Inc. | 1B100-6 | To be fire-polished to prevent damage of the embryos during manipulation. |
Grass stimulator | Grass Instruments | S88 | Stimulators of other kind are also expected to be suitable. |
Kimwipes, Delicate Task Wipers | Kimberly-Clark Professional | 13258179 | – |
Laser scanning microscope (LSM) | Zeiss | Zeiss LSM 5 Exciter Zeiss LSM 880 |
LSM of other kind are also expected to be suitable. |
Nunc Cell-Culture Treated, 6-well plate | Thermo Scientific | 140675 | – |
Objective, 20×/1.0W water immersion | Zeiss | – | – |
Pasteur Pipette, Graduated 1 mL | Starlab Group | E1414-0100 | – |
Pasteur Pipette, Micro Fine Tip 1 mL | Starlab Group | E1414-1100 | – |
Petri dish, 60 mm | Sigma-Aldrich | P5481 | – |
Plasmid, CMV-Cerulean | Christina L. Hammond (University of Bristol) | pCS2+_cerulean_kanR plasmid injected at 25-75 pg at one-cell stage. Citation: Bussman J, and Schulte-Merker S. (2011) Development 138:4327-4332. doi: 10.1242/dev.068080. | |
Plasmid, pCS-mCherry-CAAX | Henry Roehl (University of Sheffield) | – | For in vitro transcription using the SP6 promoter (plasmids containing other membrane labelling markers can be used); synthesised capped mRNA to be injected at 100-200 pg at one-cell stage. |
Pulse Controller | Hoefer Scientific Instruments | PC750 | – |
Soldering iron | – | – | – |
Tricaine | Sigma-Aldrich | E10521 | Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate/ MS-222; to be dissolved in fish water and used at 0.6 mM. |
Volocity | Perkin Elmer/Quorum Technologies Inc | – | – |
Watchmaker forceps, No. 5 | – | – | – |
Wire, Platinum | Goodfellow | PT005142/12 | 0.40 mm in diameter; an expensive alternative of silver. |
Wire, Silver | Acros Organics | 317730010 | 0.25 mm in diameter (a range of diameter i.e. 0.25-0.5 mm had been tested, which produced similar results). |
Zebrafish, myog:H2B-mRFP | David M. Langenau (Massachusetts General Hospital; Harvard Stem Cell Institute) | – | ZFIN official name: Tg(myog:Hsa.HIST1H2BJ-mRFP), fb121Tg. http://zfin.org/ZDB-ALT-160803-2 Citation: Tang Q, Moore JC, Ignatius MS, Tenente IM, Hayes MN, Garcia EG, Torres Yordán N, Bourque C, He S, Blackburn JS, Look AT, Houvras Y, Langenau DM. Imaging tumour cell heterogeneity following cell transplantation into optically clear immune-deficient zebrafish. Nat Commun. 2016 Jan 21;7:10358. doi: 10.1038/ncomms10358. |
Zebrafish, α-actin:mCherry-CAAX | Peter D. Currrie (ARMI, Monash University) | – | ZFIN official name: Tg(actc1b:mCherry-CAAX), pc22Tg. http://zfin.org/ZDB-ALT-150224-2 Citation: Berger J, Tarakci H, Berger S, Li M, Hall TE, Arner A, and Currie PD. Loss of Tropomodulin4 in the zebrafish mutant träge causes cytoplasmic rod formation and muscle weakness reminiscent of nemaline myopathy. Dis Model Mech. 2014 Dec;7(12):1407-15. doi: 10.1242/dmm.017376. |
Zebrafish, β-actin:HRAS-EGFP | – | – | ZFIN official name: Tg(Ola.Actb:Hsa.HRAS-EGFP), vu119Tg. http://zfin.org/ZDB-ALT-061107-2 Citation: Cooper MS, Szeto DP, Sommers-Herivel G, Topczewski J, Solnica-Krezel L, Kang HC, Johnson I, and Kimelman D. Visualizing morphogenesis in transgenic zebrafish embryos using BODIPY TR methyl ester dye as a vital counterstain for GFP. Dev Dyn. 2005 Feb;232(2):359-68. doi: 10.1002/dvdy.20252. |
ZEN software | Zeiss | – | – |