Protokol, disseke edilmiş fare embriyo yüz süreçlerinden veya kültürlenmiş fare embriyonik palatal mezenkim hücrelerinden tüm hücre protein lizatlarını izole etmek ve fosforile protein seviyelerini değerlendirmek için müteakip batı lekelemesini gerçekleştirmek için bir yöntem sunar.
Memeli kraniyofasiyal gelişimi, çoklu hücre popülasyonlarının frontonazal iskeleti oluşturmak için koordine olduğu karmaşık bir morfolojik süreçtir. Bu morfolojik değişiklikler, genellikle kinazlar tarafından protein fosforilasyonunu içeren çeşitli sinyal etkileşimleri yoluyla başlatılır ve sürdürülür. Burada, memeli kraniyofasiyal gelişimi sırasında proteinlerin fosforilasyonunu incelemek için fizyolojik olarak ilgili bağlamların iki örneği verilmiştir: fare yüz süreçleri, özellikle E11.5 maksiller süreçler ve E13.5 ikincil damak raflarından türetilen kültürlenmiş fare embriyonik damak mezenkimi hücreleri. Protein izolasyonu sırasında ortak defosforilasyon bariyerini aşmak için, fosfoproteinlerin izolasyonuna izin veren standart laboratuvar yöntemlerine adaptasyonlar ve modifikasyonlar tartışılmaktadır. Ek olarak, tüm hücre protein lizatlarının batı lekelenmesini takiben fosfoproteinlerin uygun analizi ve nicelleştirilmesi için en iyi uygulamalar sağlanmaktadır. Bu teknikler, özellikle farmakolojik inhibitörler ve / veya murin genetik modelleri ile kombinasyon halinde, kraniyofasiyal gelişim sırasında aktif olan çeşitli fosfoproteinlerin dinamikleri ve rolleri hakkında daha fazla bilgi edinmek için kullanılabilir.
Memeli kraniyofasiyal gelişimi, çoklu hücre popülasyonlarının frontonazal iskeleti oluşturmak için koordine olduğu karmaşık bir morfolojik süreçtir. Farede, bu süreç embriyonik günde (E) 9.5’te, frontonazal belirginliğin oluşumu ve her biri göç sonrası kraniyal nöral krest hücreleri içeren maksiller ve mandibuler süreçlerin çiftleri ile başlar. Lateral ve medial burun süreçleri, burun çukurlarının görünümü ile frontonazal belirginlikten kaynaklanır ve sonunda burun deliklerini oluşturmak için kaynaşır. Ayrıca, medial burun süreçleri ve maksiller süreçler üst dudağı oluşturmak için kaynaşır. Aynı zamanda, palatogenez, E11.5’teki maksiller süreçlerin oral tarafından farklı çıkıntıların – ikincil damak raflarının – oluşumu ile başlatılır. Zamanla, damak rafları dilin her iki tarafında aşağı doğru büyür, dilin üzerinde zıt bir konuma yükselir ve sonunda burun ve ağız boşluklarını E16.51 ile ayıran sürekli bir damak oluşturmak için orta hatta kaynaşır.
Kraniofasiyal gelişim boyunca bu morfolojik değişiklikler, genellikle kinazlar tarafından protein fosforilasyonunu içeren çeşitli sinyal etkileşimleri yoluyla başlatılır ve sürdürülür. Örneğin, kemik morfogenetik protein reseptörleri (BMPR’ler) ve çeşitli reseptör tirozin kinaz (RTK) aileleri de dahil olmak üzere dönüştürücü büyüme faktörü (TGF)-β reseptörlerinin alt aileleri gibi hücre zarı reseptörleri, kranial nöral krest hücrelerinde ligand bağlanması ve aktivasyonu üzerine otofosforile edilir 2,3,4 . Ek olarak, G proteinine bağlı transmembran reseptörü Smoothized, kraniyal nöral krest hücrelerinde fosforile olur ve Patched1 reseptörüne bağlanan Sonik kirpi (SHH) ligandının aşağı yönünde kraniyofasiyal ektoderm haline gelir ve siliyer membranda Düzgünleştirilmiş birikim ve SHH yolu aktivasyonu5 ile sonuçlanır. Bu tür ligand-reseptör etkileşimleri, kraniyofasiyal bağlamlarda otokrin, parakrin ve / veya jukstacrin sinyalizasyonu yoluyla ortaya çıkabilir. Örneğin, BMP6’nın kondrosit farklılaşması6 sırasında otokrin bir şekilde sinyal verdiği bilinirken, fibroblast büyüme faktörü (FGF) 8, faringeal ark ektoderminde ifade edilir ve faringeal ark mezenkiminde eksprese edilen FGF RTK ailesinin üyelerine parakrin bir şekilde bağlanır7, 8,9,10. Ayrıca, Kraniofasiyal iskelet gelişimi sırasında hem kondrositlerde hem de osteoblastlarda, transmembran Delta ve / veya Pürüzlü ligandlar komşu hücrelerdeki transmembran Çentik reseptörlerine bağlandığında, daha sonra parçalanan ve fosforile edilen yan yana takrin sinyallemesi yoluyla aktive edilir11. Bununla birlikte, hem otokrin hem de parakrin sinyallemede işlev görme esnekliğine sahip kraniyofasiyal gelişim için önemli olan başka ligand ve reseptör çiftleri de vardır. Örnek olarak, murin diş morfogenezi sırasında, trombosit kaynaklı büyüme faktörü (PDGF)-AA ligandının, emaye organ epiteli12’deki RTK PDGFRa’yı aktive etmek için otokrin bir şekilde sinyal verdiği gösterilmiştir. Buna karşılık, gebeliğin ortasındaki murin fasiyal süreçlerinde, PDGF-AA ve PDGF-CC ligandlarını kodlayan transkriptler kraniyofasiyal ektodermde eksprese edilirken, PDGFRα reseptörü altta yatan kranial nöral krest kaynaklı mezenkimde eksprese edilir ve parakrin sinyalizasyonu13,14,15,16,17 ile sonuçlanır. . Sinyal mekanizmasından bağımsız olarak, bu reseptör fosforilasyon olayları genellikle mitojenle aktive edilmiş protein kinaz (MAPK) yolu18,19 gibi hücre içi kinaz kaskadlarını başlatmak için sıklıkla fosforile haline gelen adaptör proteinlerinin ve / veya sinyal moleküllerinin işe alınmasıyla sonuçlanır.
Bu kaskadların terminal hücre içi efektörleri daha sonra transkripsiyon faktörleri, RNA bağlanması, hücre iskeleti ve hücre dışı matriks proteinleri gibi bir dizi substratı fosforile edebilir. Runx220, Hand1 21, Dlx3/5 22,23,24,Gli1-3 25 ve Sox9 26, kraniyofasiyal gelişim bağlamında fosforile edilen transkripsiyon faktörleri arasındadır. Bu translasyonel sonrası modifikasyon (PTM), diğer aktivitelerin yanı sıra alternatif PTM’lere duyarlılığı, dimerizasyonu, stabiliteyi, bölünmeyi ve / veya DNA bağlayıcı afiniteyi doğrudan etkileyebilir20,21,25,26. Ek olarak, RNA bağlayıcı protein Srsf3, kraniyofasiyal gelişim bağlamında fosforile edilir ve nükleer translokasyonuna yol açar27. Genel olarak, RNA bağlayıcı proteinlerin fosforilasyonunun, hücre altı lokalizasyonlarını, protein-protein etkileşimlerini, RNA bağlanmasını ve / veya dizi özgüllüğünü etkilediği gösterilmiştir28. Ayrıca, aktomiyozinin fosforilasyonu, kraniyofasiyal gelişim boyunca sitoiskelet yeniden düzenlemelerine yol açabilir29,30 ve küçük integrin bağlayıcı ligand N’ye bağlı glikoproteinler gibi hücre dışı matriks proteinlerinin fosforilasyonu, iskelet gelişimi sırasında biyomineralizasyona katkıda bulunur 31. Yukarıdaki ve diğer birçok örnekle, kraniyofasiyal gelişim sırasında protein fosforilasyonu için geniş etkileri olduğu açıktır. Ek bir düzenleme seviyesi ekleyerek, protein fosforilasyonu, fosfat gruplarını çıkararak kinazlara karşı koyan fosfatazlar tarafından daha da modüle edilir.
Hem reseptör hem de efektör molekül seviyelerindeki bu fosforilasyon olayları, sinyal yolaklarının yayılması için kritik öneme sahiptir ve sonuçta çekirdekteki gen ekspresyonunda değişikliklere neden olarak, göç, proliferasyon, hayatta kalma ve farklılaşma gibi spesifik hücre aktivitelerini yönlendirerek memeli yüzünün düzgün oluşumuna neden olur. Kinazlar ve fosfatazlarla protein etkileşimlerinin bağlam özgüllüğü, PTM’lerde ortaya çıkan değişiklikler ve bunların hücre aktivitesi üzerindeki etkileri göz önüne alındığında, fosforilasyon olaylarının kraniyofasiyal gelişime katkısının tam olarak anlaşılması için bu parametrelerin fizyolojik olarak ilgili bir ortamda incelenmesi kritik öneme sahiptir. Burada, proteinlerin fosforilasyonunu ve dolayısıyla memeli kraniyofasiyal gelişimi sırasında sinyal yolaklarının aktivasyonunu incelemek için iki bağlam örneği verilmiştir: fare yüz süreçleri, özellikle E11.5 maksiller süreçler ve E13.5 ikincil damak raflarından türetilen kültürlenmiş fare embriyonik damak mezenkimi hücreleri – hem birincil32 hem de ölümsüzleştirilmiş33 . E11.5’te, maksiller süreçler lateral ve medial nazal süreçler1 ile kaynaşma sürecindedir, böylece fare kraniyofasiyal gelişimi sırasında kritik bir zaman noktasını temsil eder. Ayrıca, maksiller süreçler ve damak raflarından türetilen hücreler burada seçilmiştir, çünkü ikinci yapılar birincisinin türevleridir, böylece araştırmacılara protein fosforilasyonunu in vivo ve in vitro olarak ilgili bağlamlarda sorgulama fırsatı sunmaktadır. Bununla birlikte, bu protokol alternatif yüz süreçleri ve gelişimsel zaman noktaları için de geçerlidir.
Fosforile proteinlerin incelenmesinde kritik bir sorun, protein izolasyonu sırasında bol miktarda çevresel fosfatazlar tarafından kolayca fosforilden arındırılmalarıdır. Bu engelin üstesinden gelmek için, fosforile proteinlerin izolasyonuna izin veren standart laboratuvar yöntemlerine adaptasyonlar ve modifikasyonlar tartışılmaktadır. Ek olarak, fosforile proteinlerin uygun analizi ve nicelleştirilmesi için en iyi uygulamalar sağlanmaktadır. Bu teknikler, özellikle farmakolojik inhibitörler ve / veya murin genetik modelleri ile kombinasyon halinde, kraniyofasiyal gelişim sırasında aktif olan çeşitli sinyal yolaklarının dinamikleri ve rolleri hakkında daha fazla bilgi edinmek için kullanılabilir.
Burada açıklanan protokol, araştırmacıların kraniyofasiyal gelişim sırasında kritik fosforilasyona bağımlı sinyal olaylarını sağlam ve tekrarlanabilir bir şekilde araştırmalarını sağlar. Bu protokolde, verilerin uygun şekilde toplanmasını ve sonuçların analizini sağlayan birkaç kritik adım vardır. Fosfoproteinleri fare yüz süreçlerinden ve / veya kültürlenmiş damak mezenkim hücrelerinden izole etmek olsun, tüm reaktifleri ve malzemeleri belirtildiğinde buz üzerinde tutarken hızlı…
The authors have nothing to disclose.
129S4 fareleri, Sina Dağı’ndaki Icahn Tıp Fakültesi’nden Dr. Philippe Soriano’nun bir hediyesiydi. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH) / Ulusal Diş ve Kraniofasiyal Araştırma Enstitüsü (NIDCR) R01 DE027689 ve K02 DE028572’den K.A.F.’ye, F31 DE029976’dan M.A.R.’ye ve F31 DE029364’ten B.J.C.D.’ye sağlanan fonlarla desteklenmiştir.
Equipment | |||
Block for mini dry bath | Research Products International Corp | 400783 | |
ChemiDoc XRS+ imaging system with Image Lab software | Bio-Rad | 1708265 | chemiluminescence imager |
CO2 incubator, air jacket | VWR | 10810-902 | |
Dissecting board, 11 x 13 in | Fisher Scientific | 09 002 12 | |
Electrophoresis cell, 4-gel, for mini precast gels with mini trans-blot module | Bio-Rad | 1658030 | |
Hybridization oven | Fisher Scientific | UVP95003001 | |
Microcentrifuge 5415 D with F45-24-11 rotor (Eppendorf) | Sigma Aldrich | Z604062 | |
Mini dry bath | Research Products International Corp | 400780 | |
Orbital shaker | VWR | 89032-092 | |
pH meter | VWR | 89231-662 | |
Power supply for SDS-PAGE | Bio-Rad | 1645050 | |
Rectangular ice pan, maxi 9 L | Fisher Scientific | 07-210-093 | |
Stemi 508 stereo microscope with stand K LAB, LED ring light | Zeiss | 4350649020000000 | dissecting microscope |
Timer | VWR | 62344-641 | |
Tube revolver | Fisher Scientific | 11 676 341 | |
Vortex mixer | Fisher Scientific | 02 215 414 | |
Water bath | VWR | 89501-472 | |
Western blot box | Fisher Scientific | NC9358182 | |
Materials | |||
Cell culture dishes, 6 cm | Fisher Scientific | 12-565-95 | |
Cell culture plates, 12 well | Fisher Scientific | 07-200-82 | |
Cell lifters | Fisher Scientific | 08-100-240 | |
CO2 | Airgas | CD USP50 | |
Conical tubes, polypropylene, 50 mL | Fisher Scientific | 05-539-13 | |
Dumont #5 fine forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
Embryo spoon | Fine Science Tools | 10370-17 | |
Microcentrifuge tubes, 0.5 mL | VWR | 89000-010 | |
Microcentrifuge tubes, 1.5 mL | VWR | 20170-038 | |
Pasteur pipet, 5.75" | Fisher Scientific | 13-678-6A | |
Pasteur pipet, 9" | VWR | 14672-380 | |
Petri dishes, 10 cm | Fisher Scientific | 08-757-100D | |
Petri dishes, 35 mm | Fisher Scientific | FB0875711YZ | |
Pouches, transparent, polyethylene lining | Fisher Scientific | 01-812-25B | |
PVDF membrane | Fisher Scientific | IPVH00010 | |
Semken forceps | Fine Science Tools | 11008-13 | |
Small latex bulb, 2 mL | VWR | 82024-554 | |
Surgical scissors | Fine Science Tools | 14002-12 | |
Syringe filter, 25 mm, 0.2 μm pore size | Fisher Scientific | 09-740-108 | |
Syringe with luer tip, 10 mL | VWR | BD309604 | |
Transfer pipet | Fisher Scientific | 13-711-22 | |
Western blot cassette opening lever | Bio-Rad | 4560000 | |
Whatmann 3MM chr chromatography paper | Fisher Scientific | 05-714-5 | |
Reagents | |||
4-15% Precast protein gels, 10-well, 30 µL | Bio-Rad | 4561083 | |
β-glycerophosphate disodium salt hydrate | Sigma Aldrich | G5422-25G | stock concentration 1 M |
β-mercaptoethanol | Sigma Aldrich | M3148-100ML | |
Bovine serum albumin, fraction V, heat shock tested | Fisher Scientific | BP1600-100 | |
Bromophenol blue | Fisher Scientific | AC403140050 | |
Complete mini protease inhibitor cocktail | Sigma Aldrich | 11836153001 | stock concentration 25x |
DC protein assay kit II | Bio-Rad | 500-0112 | |
DMEM, high glucose | Gibco | 11965092 | |
E7, mouse monoclonal beta tubulin primary antibody, concentrate 0.1 mL | Developmental Studies Hybridoma Bank | E7 | 1:1,000 |
ECL western blotting substrate | Fisher Scientific | PI32106 | low picogram range |
ECL western blotting substrate | Genesee Scientific | 20-302B | low femtogram range |
Electrophoresis buffer, 5 L | Bio-Rad | 1610772 | stock concentration 10x |
Ethanol, 200 proof, 1 gallon | Decon Laboratories, Inc. | 2705HC | EtOH |
Ethylenediaminetetraacetic acid, Di Na salt dihydr. (crystalline powd./electrophor.) | Fisher Scientific | BP120-500 | EDTA |
Fetal bovine serum, characterized, US origin, 500 mL | HyClone | SH30071.03 | |
Glycerol (certified ACS) | Fisher Scientific | G33-4 | |
HRP-conjugated secondary antibody, goat anti-mouse IgG | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 115-035-146 | 1:20,000 |
HRP-conjugated secondary antibody, goat anti-rabbit IgG | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 111-035-003 | 1:20,000 |
Hydrochloric acid solution, 6N (certified) | Fisher Scientific | SA56-500 | HCl |
Igepal Ca – 630 non-ionic detergent | Fisher Scientific | ICN19859650 | Nonidet P-40 |
Isopropanol (HPLC) | Fisher Scientific | A451-1 | |
L-glutamine | Gibco | 25030081 | stock concentration 200 mM |
Methanol | Fisher Scientific | A454-4 | |
p44/42 MAPK (Erk1/2) primary antibody | Cell Signaling Technology | 9102S | 1:1,000; anti-Erk1/2 |
PDGF-BB recombinant ligand, rat | Fisher Scientific | 520BB050 | |
PDGF Receptor β primary antibody | Cell Signaling Technology | 3169S | 1:1,000 |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140122 | stock concentration 100 U/mL, 100 µg/mL |
Phenylmethanesulfonyl fluoride, 99% | Fisher Scientific | AC215740100 | PMSF; stock concentration 100 mM |
Phospho-p44/42 MAPK (Erk1/2) primary antibody | Cell Signaling Technology | 9101S | 1:1,000, anti-phospho-Erk1/2 |
Phospho-PDGF Receptor α /PDGF Receptor β primary antibody | Cell Signaling Technology | 3170S | 1:1,000 |
Potassium chloride (white crystals) | Fisher Scientific | BP366-500 | KCl |
Potassium phosphate monobasic (white crystals) | Fisher Scientific | BP362-500 | KH2PO4 |
SDS solution, 10% | Bio-Rad | 161-0416 | |
Sodium chloride (crystalline/biological,certified) | Fisher Scientific | S671-3 | NaCl |
Sodium fluoride (powder/certified ACS) | Fisher Scientific | S299-100 | NaF; aliquot for one time use; stock concentration 1 M |
Sodium orthovanadate, 99% | Fisher Scientific | AC205330500 | Na3VO4; stock concentration 100 mM |
Sodium phosphate dibasic anhydrous (granular or powder/certified ACS) | Fisher Scientific | S374-500 | Na2HPO4 |
Tissue culture PBS | Fisher Scientific | 21-031-CV | |
Transfer buffer, 5 L | Bio-Rad | 1610771 | stock concentration 10x |
Tris base (white crystals or crystalline powder/molecular biology) | Fisher Scientific | BP152-1 | |
Trypsin | BioWorld | 21560033 | |
Tween 20 | Fisher Scientific | BP337-500 | |
Western blot molecular weight marker | Bio-Rad | 1610374 | |
Software | |||
ImageJ software | National Institutes of Health | ||
Animals | |||
Female 129S4 mice | gift of Dr. Philippe Soriano, Icahn School of Medicine at Mount Sinai |