Summary

厚い自由浮遊組織切片におけるアストロサイトの領域体積とタイリングの解析

Published: April 20, 2022
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Summary

このプロトコールは、マウス脳の自由浮遊組織切片の切片化、染色、および画像化のための方法を記載し、続いて、アストロサイト領域体積およびアストロサイト領域オーバーラップまたはタイリングの分析の詳細な説明を記載する。

Abstract

アストロサイトは、脳内のほぼすべてのタイプの細胞および構造と相互作用することを可能にする驚くべき程度の形態学的複雑さを有する。これらの相互作用を通じて、アストロサイトはシナプス形成、神経伝達、イオン恒常性など、多くの重要な脳機能を積極的に調節します。げっ歯類の脳では、アストロサイトは出生後最初の3週間でサイズと複雑さを増し、脳をタイル状にするために、重複しない明確な領域を確立します。このプロトコルは、マウス脳からの自由浮遊組織切片を用いて、アストロサイト領域体積およびアストロサイトタイリングを分析するための確立された方法を提供する。まず、このプロトコルは、自由に浮遊する組織切片の組織収集、凍結切断、および免疫染色のステップを記述する。第2に、このプロトコルは、市販の画像解析ソフトウェアを用いて、アストロサイトの領域体積および領域重複体積の画像取得および分析を記述する。最後に、この原稿では、これらの方法の利点、重要な考慮事項、一般的な落とし穴、および制限について説明します。このプロトコルは、アストロサイトのスパースまたはモザイク蛍光標識を有する脳組織を必要とし、一般的なラボ機器、共焦点顕微鏡、および市販の画像解析ソフトウェアで使用するように設計されています。

Introduction

アストロサイトは、脳内で多くの重要な機能を果たす精巧に分岐した細胞です1。マウス皮質では、放射状グリア幹細胞は、後期胚期および出生後早期の段階2の間にアストロサイトを生じる。出生後最初の3週間の間に、アストロサイトはサイズと複雑さを増し、シナプスと直接相互作用する何千もの細かい枝を発達させます1。同時に、アストロサイトは隣接するアストロサイトと相互作用して、ギャップジャンクションチャネル4を介した通信を維持しながら、脳3をタイル状にするための離散的で重複しない領域を確立する。アストロサイトの形態および組織は、侮辱または傷害に続く多くの疾患状態において破壊され5、適切な脳機能のためのこれらのプロセスの重要性を示す。正常な発達、老化、および疾患中のアストロサイトの形態学的特性の分析は、アストロサイトの生物学および生理学に関する貴重な洞察を提供することができる。さらに、遺伝子操作後のアストロサイト形態の解析は、アストロサイトの形態学的複雑さの確立と維持を支配する細胞および分子メカニズムを識別するための貴重なツールです。

マウス脳におけるアストロサイト形態の解析は、アストロサイト分岐の複雑さとアストロサイトタイリングの両方によって複雑になる。中間フィラメントグリア線維性酸性タンパク質(GFAP)をアストロサイト特異的マーカーとして用いた抗体染色は、主要な枝のみを捕捉し、アストロサイトの形態学的複雑さを非常に過小評価している1。グルタミン酸トランスポーター1(GLT-1;slc1a2)、グルタミン合成酵素、またはS100βなどの他の細胞特異的マーカーは、アストロサイト枝6を標識するより良い仕事をするが、新しい問題を導入する。アストロサイトの領域は大部分が重なり合っていないが、周辺縁にはわずかな程度の重なりが存在する。分岐の複雑さのために、隣接するアストロサイトが同じ色でラベル付けされている場合、一方のアストロサイトがどこで終わり、もう一方が始まるかを区別することは不可能である。内因性蛍光タンパク質によるアストロサイトのスパースまたはモザイク標識は、両方の問題を解決します:蛍光マーカーは、すべての枝を捕捉するために細胞を満たし、それらの隣人と区別することができる個々のアストロサイトのイメージングを可能にします。ウイルス注射、プラスミドエレクトロポレーション、またはトランスジェニックマウス系統を含む、遺伝子操作の有無にかかわらず、アストロサイトのまばらな蛍光標識を達成するために、いくつかの異なる戦略が使用されてきた。これらの戦略の実行に関する詳細は、以前に発表された研究およびプロトコル1、78910111213に記載されている。

この記事では、まばらなアストロサイトの集団において、蛍光標識を用いてマウス脳からのアストロサイト領域体積を測定する方法について説明します(図1)。マウス皮質におけるアストロサイトの平均直径は約60μmであるため、個々のアストロサイト全体を捕捉する効率を向上させるために、厚さ100μmの切片が使用される。免疫染色は必須ではありませんが、共焦点イメージングおよび分析のために内因性蛍光シグナルを増強するために推奨されます。免疫染色はまた、微細なアストロサイト枝のより良い検出を可能にし、画像取得中の内因性タンパク質のフォトブリーチングを低減する可能性がある。厚い切片への抗体の浸透を改善し、切片化からイメージングまでの組織体積を維持するために、自由に浮遊する組織切片が使用される。アストロサイト領域容積の解析は、市販の画像解析ソフトを用いて行う。さらに、このプロトコルは、隣接するアストロサイトが異なる蛍光標識を発現するモザイク標識を有する組織切片におけるアストロサイトタイリングの分析方法を記述する。このプロトコルは、正常な脳発達中のアストロサイト増殖、ならびにアストロサイト発達に対する遺伝子操作の影響を特徴付けるために、いくつかの最近の研究1,8,9において首尾よく使用されている。

Protocol

全てのマウスを、ノースカロライナ大学チャペルヒル校および比較医学部の施設動物ケアおよび使用委員会(IACUC)(IACUCプロトコル番号21-116.0)に従って使用した。出生後21日目に両性のマウス(P21)をこれらの実験に使用した。CD1マウスを市販品として入手し(材料表)、MADM9 WT:WTおよびMADM9 WT:KOマウスは、先に9に記載されていた。 注:このプロトコ?…

Representative Results

図 1 に、このプロトコルの主要なステップとワークフローの概略図を示します。 図 2 は、画像解析ソフトウェアを使用してサーフェスを生成し、サーフェスに近いスポットを生成し、凸包を生成するための主要な手順のスクリーンショットを示しています。 図3は 、アストロサイトの領域の重複/タイリングを決定するため?…

Discussion

このプロトコルは、マウス皮質におけるアストロサイトの領域体積およびアストロサイトタイリングを分析するための確立された方法を記述し、灌流から始まり画像解析で終わるすべての主要なステップを詳述する。このプロトコルは、アストロサイトのまばらまたはモザイク集団で蛍光タンパク質を発現するマウスの脳を必要とする。この要件の外では、灌流設定と埋め込み型に加えられ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

顕微鏡検査はUNC神経科学顕微鏡コア(RRID:SCR_019060)で実施され、NIH-NINDS神経科学センター支援助成金P30 NS045892およびNIH-NICHD知的発達障害研究センター支援助成金U54 HD079124からの資金提供によって部分的に支援されました。図 1 は BioRender.com を使用して作成されました。図4の画像及びデータは、出版社の許可を得て、以前の刊行物9 から転載したものである。

Materials

#5 forceps Roboz RS-5045
1 mL TB Syringe Becton Dickinson (BD) 309623
10x TBS (tris-buffered saline) 30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT)
12-well plate Genesee Scientific 25-106MP
1x TBS 100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT
1x TBS + Heparin 28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C
24-well plate Genesee Scientific 25-107MP
30% Sucrose in TBS 15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS 40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C
Avertin 0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making
Blocking and antibody buffer 10% goat serum in TBST; store at 4 °C
CD1 mice Charles River 022
Collection vial for brains Fisher Scientific 03-337-20
Confocal acquisition software Olympous FV31S-SW
Confocal microscope Olympus FV3000RS
Coverslips Fisher Scientific 12544E
Cryostat Thermo Scientific CryoStar NX50
Cryostat blade Thermo Scientific 3052835
DAPI Invitrogen D1306
Embedding mold Polysciences 18646A-1
Freezing Medium 2:1 30% sucrose:OCT; store at RT
GFP antibody Aves Labs GFP1010
Glycerol Thermo Scientific 158920010
Goat anti-chicken 488 Invitrogen A-11039
Goat anti-rabbit 594 Invitrogen A11037
Goat Serum Gibco 16210064
Heparin Sigma-Aldrich H3149
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich 258148
Imaris Bitplane N/A Version 9.8.0
MATLAB MathWorks N/A
Metal lunch tin AQUARIUS N/A From Amazon, "DIY Large Fun Box"
Methylbutanol Sigma-Aldrich 152463
Micro Dissecting Scissors Roboz RS-5921
Mouting medium 20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months
Nailpolish VWR 100491-940
N-propyl gallate Sigma-Aldrich 02370-100G
O.C.T. Fisher Scientific 23-730-571
Oil Olympus IMMOIL-F30CC Specific to microscope/objective
Operating Scissors 6" Roboz RS-6820
Orbital platform shaker Fisher Scientific 88861043 Minimum speed needed: 25 rpm
Paintbrush Bogrinuo N/A From Amazon, "Detail Paint Brushes – Miniature Brushes"
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Pasteur pipet (5.75") VWR 14672-608
Pasteur pipet (9") VWR 14672-380
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9541-500G
Razor blade Fisher Scientific 12-640
RFP antibody Rockland 600-401-379
Sectioning medium 1:1 glycerol:1x TBS; store at RT
Slides VWR 48311-703
Sodium chrloide Fisher Scientific BP358-212
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich S5881
Sucrose Sigma-Aldrich S0389
TBST (TBS + Triton X-100) 0.2% Triton in 1x TBS; store at RT
Transfer Pipet VWR 414004-002
Tri-bromoethanol Sigma-Aldrich T48402
Tris(hydroxymethyl)aminomethane Thermo Scientific 424570025
Triton X-100 Sigma-Aldrich 93443
Triton X-100 (high-quality) Fisher Scientific 50-489-120
XTSpotsConvexHull N/A N/A custom XTension provide as supplementary material
Buffers and Solutions
10x TBS xx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4
1x TBS
1x TBS + Heparin add xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS
4% PFA
30% Sucrose in TBS
Freezing Medium
Sectioning medium
TBST 0.2% Triton in 1x TBS
Blocking and antibody buffer 10% goat serum in 1x TBST
Mouting medium

References

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Cite This Article
Eaker, A. R., Baldwin, K. T. Analysis of Astrocyte Territory Volume and Tiling in Thick Free-Floating Tissue Sections. J. Vis. Exp. (182), e63804, doi:10.3791/63804 (2022).

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