Summary

油酸诱导的急性呼吸窘迫综合征小鼠模型

Published: June 02, 2022
doi:

Summary

本方案描述了使用油酸模拟急性呼吸窘迫综合征(ARDS)的小鼠肺损伤模型。该模型增加了水肿的炎症介质并降低了肺顺应性。油酸以盐形式(油酸盐)使用,因为这种生理形式避免了栓塞的风险。

Abstract

急性呼吸窘迫综合征 (ARDS) 对病死率高的危重患者构成重大威胁。污染物暴露、香烟烟雾、传染性病原体和脂肪酸可诱发急性呼吸窘迫综合征。动物模型可以模拟ARDS的复杂病理机制。但是,它们中的每一个都有局限性。值得注意的是,油酸 (OA) 在危重患者中升高,对肺部有害。OA可通过栓子、破坏组织、改变pH值和损害水肿清除来诱发肺损伤。OA 诱导的肺损伤模型类似于 ARDS 的各种特征,包括内皮损伤、肺泡通透性增加、炎症、膜透明形成和细胞死亡。本文,通过将OA(盐形式)直接注射到肺中并在小鼠中静脉注射来描述肺损伤的诱导,因为它是pH 7时OA的生理形式。因此,以盐形式注射 OA 是一种有用的动物模型,可以在不引起栓子或改变 pH 值的情况下研究肺损伤/ARDS,从而接近危重患者的情况。

Introduction

Ashbaugh 等人 1967 年首次描述了急性呼吸窘迫综合征 (ARDS),此后经历了多次修订。根据柏林的定义,急性呼吸窘迫综合征是一种肺部炎症,由于通气灌注比失衡、弥漫性双侧肺泡损伤 (DAD) 和浸润、肺重量增加和水肿导致急性呼吸衰竭和低氧血症 (PaO 2/FiO2 > 300 mm Hg) 2,3肺实质是由上皮细胞、内皮细胞和其他细胞复合而成的复杂细胞环境。这些细胞形成屏障和结构,负责肺泡中的气体交换和稳态3.上皮屏障内最丰富的细胞是肺泡 I 型细胞 (AT1),具有更大的表面积,可通过 Na/K-ATP 酶进行气体交换和液体管理。此外,肺泡 II 型细胞 (AT2) 产生表面活性剂,降低肺泡4 的表面张力。在下面,内皮细胞形成半透性屏障,将肺循环与间质隔开。其功能包括检测刺激、协调炎症反应和细胞迁移5。内皮细胞还调节气体交换、血管张力和凝血5。因此,内皮和上皮功能紊乱可能会加剧促炎表型,导致肺损伤,导致 ARDS5

急性呼吸窘迫综合征的发生与细菌性和病毒性肺炎或间接因素(如非肺脓毒症、创伤、输血和胰腺炎)相关6。这些条件导致病原体相关分子模式 (PAMP) 和损伤相关分子模式 (DAMP) 的释放,诱导促炎细胞因子和趋化因子,如 TNF-α、IL-1β、IL-6 和 IL-85。TNF-α 与内皮屏障破坏和白细胞浸润肺实质中的血管内皮钙粘蛋白 (VE-cadherin) 降解有关。中性粒细胞是最早迁移的细胞,被 IL-8 和 LTB4 5,7,8 吸引。中性粒细胞进一步增加促炎细胞因子、活性氧 (ROS)9 和中性粒细胞胞外陷阱 (NET) 的形成,从而产生额外的内皮和上皮损伤10。上皮损伤促使 AT2 细胞和驻留巨噬细胞中 Toll 样受体的炎症和激活,诱导趋化因子的释放,将炎症细胞吸引到肺部4.此外,干扰素-β (INFβ) 等细胞因子的产生会导致 TNF 相关细胞凋亡诱导受体 (TRAIL),导致 ATII 细胞凋亡,损害液体和离子clarence 4。内皮和上皮屏障结构的破坏使液体、蛋白质、红细胞和白细胞流入肺泡间隙,引起水肿。随着水肿的建立,维持呼吸和气体交换的肺部努力会改变11.高碳酸血症和低氧血症可诱导细胞死亡和钠转运紊乱,由于清除能力差,加重肺泡水肿10。急性呼吸窘迫综合征还具有 IL-17A 水平升高,与器官功能障碍、肺泡中性粒细胞百分比增加和肺泡通透性9 有关。

近年来,ARDS 的病理生理学、流行病学和治疗研究不断取得进展12,13。然而,ARDS 是一种异质性综合征,尽管治疗研究取得了进展,从而优化了机械通气和液体治疗。因此,仍然需要更有效的直接药物治疗10,动物研究可能有助于揭示ARDS的机制和干预目标。

目前的 ARDS 模型无法完全复制病理学。因此,研究人员通常会选择更符合他们兴趣的模型。例如,脂多糖 (LPS) 诱导模型通过主要由 TLR414 触发的内毒性休克诱导 ARDS。HCl 诱导类似于酸抽吸,损伤呈中性粒细胞依赖性14。另一方面,目前的油酸钠模型会诱发内皮损伤,从而增加血管通透性和水肿。此外,使用油酸钠代替液体形式的油酸可以避免栓塞风险和血液 pH值 15 的改变。

急性呼吸窘迫综合征的动物模型
动物模型的临床前研究有助于了解病理学,对于新的ARDS治疗研究至关重要。理想的动物模型需要具有与临床情况相似的特征和疾病机制的良好可重复性,并具有每个疾病分期、演变和修复的相关病理生理特征14。几种动物模型用于临床前评估 ARDS 的急性肺损伤。然而,由于所有模型都有局限性,它们不能完全再现人类病理学6,14,16。油酸诱导的 ARDS 用于不同的动物物种17。接受OA注射的猪18、绵羊19和狗20表现出该病的许多临床特征,伴有肺泡-毛细血管膜功能障碍和蛋白质和细胞浸润的通透性增加。

例如,静脉注射 1.25 μM 的 OA 阻断了经上皮转运,导致肺泡水肿15。或者,在使用 A549 细胞的体外模型中,浓度为 10 μM 的 OA 不会改变上皮钠通道 (eNAC) 或 Na/K-ATP 酶的表达。然而,OA似乎与这两个通道相关联,直接抑制了它们的活动21。0.1 mL/kg 的 OA 静脉注射引起肺组织充血和肿胀,肺泡间隙缩小,肺泡隔增厚,炎症和红细胞计数增加22。此外,OA 诱导肺内皮细胞和上皮细胞凋亡和坏死15.在小鼠气管内注射三油酸酯溶液,增强中性粒细胞浸润和水肿,最早在刺激后6小时23。24 小时 OA 注射增加促炎细胞因子水平(即 TNF-α、IL-6 和 IL-1β)23。此外,静脉内(眼眶丛)注射10μM三油酸酯抑制肺Na / K-ATP酶活性,类似于10-3μM的ouabain,一种选择性酶抑制剂。此外,OA 会通过细胞浸润、脂质体的形成以及白三烯 B4 (LTB4) 和前列腺素 E2 (PGE2) 的产生来诱导炎症22,24因此,油酸诱导的 ARDS 会产生水肿、出血、中性粒细胞浸润、髓过氧化物酶 (MPO) 活性增加和 ROS24。因此,OA 给药是肺损伤的成熟模型22,25。本文中介绍的所有具有 OA 的结果都代表盐形式油酸钠。

Protocol

本研究中使用的程序已获得奥斯瓦尔多·克鲁兹基金会动物使用伦理委员会的批准(CEUA 许可证编号 002-08、36/10 和 054/2015)。由奥斯瓦尔多·克鲁兹基金会(FIOCRUZ)的生物模型科学与技术研究所(ICTB)提供的体重在20-30克之间的雄性瑞士韦伯斯特小鼠用于实验。这些动物被饲养在Pavilhão Ozório de Almeida动物饲养室的通风隔离器中,可以 随意获得水和食物。它们暴露于12小时/12小时的光暗循环?…

Representative Results

在未受伤的肺中,肺泡液通过完整的肺泡上皮层的运输而发生。渗透梯度将液体从肺泡输送到肺间质,在那里被淋巴管引流或重新吸收。Na/K-ATP 酶驱动这种转运11.OA 是 Na/K-ATP 酶 27 和钠通道21 的抑制剂,这可能有助于水肿的形成,正如我们已经建议的那样23。急性呼吸窘迫综合征中炎症反应的加剧导致肺泡损伤,内皮和上皮通…

Discussion

选择正确的 ARDS 模型对于进行临床前研究至关重要,评估者必须考虑所有可能的变量,例如年龄、性别、给药方法等6.所选模型必须根据脓毒症、脂质栓塞、肺血管缺血再灌注和其他临床风险等危险因素重现疾病14.然而,没有用于ARDS的动物模型可以重现人类综合征的所有特征。多种损伤剂模型包括LPS、OA、盐酸、细菌和病毒6。此外,使用不同?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项研究由奥斯瓦尔多克鲁兹研究所、奥斯瓦尔多克鲁兹基金会 (FIOCRUZ)、Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) Grant 001、弗鲁米嫩塞联邦生物技术计划 (UFF)、里约热内卢联邦国家大学 (UNIRIO)、卡洛斯·查加斯 Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro 基金会 (FAPERJ)、 以及国家科学技术发展委员会(CNPq)。图 1 和图 2 是使用 BioRender.com 创建的。

Materials

Anesthetic vaporizer SurgiVet model 100
Braided slik thread with needle number 5 Shalon medical N/A
Cabinet vivarium Insight  Model EB273
Centrifuge Eppendorf 5430/5430R
Cytofunnel ThermoFisher 11-025-48
Drontal puppy Bayer N/A
Hank's balanced Salts Sigma-Aldrich H4981
Heatpad tkreprodução TK-500
Hydrocloric Acid Sigma-Aldrich 30721
Insulin syringe Ultrafine BD 328322
Isoforine 1mL/mL Cristália N/A
Ketamine Syntec N/A
May-Grunwald-Giemsa Sigma-Aldrich 205435
Micro BCA Protein Assay Kit ThermoFisher 23235
Microscope  PrimoStar Carl Zeiss
Mouse IL-1 beta duoSet ELISA R&D system DY401
Mouse IL-6 duoSet ELISA R&D system DY406
Mouse TNF-alpha duoSet ELISA R&D system DY410
Neubauer chamber improved bright-line Global optics
Oleic Acid (99%) Sigma-Aldrich O1008
Osmium tetroxide solution (4%) Sigma-Aldrich 75632
Peripheral Intravenous Catherter 20 G BD Angiocath 388333
Prism 8 (graphic and statistic software) Graphpad N/A
Prostaglandin E2 ELISA Kit -Monoclonal Cayman Chemical 514010
Shandon Cytospin 3 ThermoFisher N/A
Sodium hydroxide Merck 1,06,49,81,000
Spectrophotometer Molecular Devices SpectraMax ABS plus
Swiss webster mice ICTB/FIOCRUZ N/A
Syringe 1 mL BD 990189
Tris-base Bio Rad 161-0719 Electrophoresis purity reagent
Türk's solution Sigma-Aldrich 93770
Xilazine Syntec N/A

References

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de Oliveira Rodrigues, S., Patricio de Almeida, M. A., Castro-Faria-Neto, H. C., Silva, A. R., Felippe Gonçalves-de-Albuquerque, C. Mouse Model of Oleic Acid-Induced Acute Respiratory Distress Syndrome. J. Vis. Exp. (184), e63566, doi:10.3791/63566 (2022).

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