低温切片解剖允许新鲜,冷冻地制备小鼠大脑中最大的神经源性生态位,以进行深层定量蛋白质组分析。该方法精确,高效,并且引起最小的组织扰动。因此,它非常适合研究该生态位的分子微环境以及其他器官,区域和物种。
室管膜下神经源性龛位由外侧心室外壁的心室旁带组成。室管膜下区(SEZ)是暴露于脑室和脑脊液的薄而明显的区域。这种生态位的分离允许分析神经源性干细胞微环境。然而,提取小组织进行蛋白质组分析具有挑战性,特别是对于保持相当大的测量深度和实现可靠的稳健性。为了应对这些挑战,开发了一种称为冷冻切片解剖(CSD)的新方法,该方法将高精度与最小的组织扰动相结合。该方法与最先进的质谱(MS)方法兼容,允许检测低丰度的利基调节剂。本研究将CSD及其蛋白质组数据与激光捕获显微解剖(LCM)和标准全贴片解剖获得的方法和数据进行了比较。与LCM相比,CSD方法在不到一半的制备时间内使定量深度增加了一倍,同时明显优于全安装解剖的解剖精度。因此,CSD是收集经济特区进行蛋白质组分析的优越方法。
由于成人大脑中的神经发生受到限制,各种中枢神经系统修复策略将大大受益于对成人神经替代基础的更多理解。啮齿动物帮助我们了解了产后神经发生的基本机制,尽管应该指出的是,成体神经发生在很大程度上依赖于物种。在小鼠中,有三个成体神经干细胞(NSC)生态位。下丘脑是具有神经源性潜力的成年NSC生态位1,2,而连续的成人神经发生主要限于海马体3和侧脑室侧壁的经济特区4,5,6。经济特区是含有NSCs(B型细胞)的最大生发区,通过转运扩增祖细胞(C型细胞)发育成神经母细胞(A型细胞)。经济特区包含20-35%的B型细胞,1-15%的C型细胞,1-30%的A型细胞和25-50%的室管膜细胞7。经济特区具有复杂的微结构,内皮细胞、小胶质细胞和室管膜细胞驻留在干细胞龛中并影响干细胞龛位8,9,10。虽然经济特区中的神经元稀缺,但来自遥远来源(如纹状体、腹侧被盖区或下丘脑)的轴突会到达并影响B型细胞4。这种干细胞生态位的一个独特特征是增殖位点和分化位点之间的分离。增殖后,神经元祖细胞从经济特区迁移到嗅球几毫米,在那里它们最终分化成神经元并整合到预先存在的神经回路中。对与神经发生相关的细胞内在程序的研究已经为实验治疗细胞重编程和移植策略提供了重要的知识15,16,17,18,19,20。然而,细胞外源信号也调节神经发生,组织环境可以决定干细胞的神经源性命运11,12,14,21,22,23。因此,研究神经源性生态位的微环境及其与干细胞的相互作用至关重要。
细胞外基质(ECM)和其他分泌的蛋白质是微环境的重要组成部分。为了进行准确的鉴定和定量,蛋白质组学方法比转录组学方法更适合确定ECM组成,因为转录组与ECM水平之间的相关性较低24,25。此外,有大量证据表明,经济特区中的利基监管机构并不完全由生态位本身的细胞产生。更远的位置,如脉络丛,分泌通过脑脊液传递到干细胞的调节信号22,23。研究生态位蛋白质组可以帮助识别独立于其生产地点的利基调节因子,因为细胞外微环境的很大一部分是由蛋白质组装的。
为了收集小鼠心室区域进行无偏蛋白质组学分析,需要一种高精度的方法,捕获含有干细胞的约50μm薄的心室旁带,同时排除相邻纹状体的组织。此外,解剖过程中的组织扰动必须最小化以分析细胞外微环境,因为可溶性蛋白质,包括生长因子或细胞因子,可以很容易地被洗掉。虽然可以分析固定组织的质谱,但所需的试剂(例如多聚甲醛)会降低蛋白质鉴定深度,并可能引入翻译后修饰。常见的全系列SEZ解剖,例如,用于收集用于荧光激活细胞分选分析的细胞,使用scissors去除整个SEZ26。这种标准解剖速度快,组织扰动最小。然而,无法避免样品的纹状体污染。相反,LCM具有卓越的解剖精度的突出优势。然而,LCM可能会引入组织扰动,例如,由于背景染色或激光引起的蛋白质变性。为了结合全联切除和LCM的优势,开发了一种与MS兼容的新方法,称为冷冻截面解剖(CSD)(图1A-D)。CSD允许提取经济特区和解剖侧心室内侧壁(MEZ)的经济特区,这是经济特区的理想,主要是非神经源性控制区域(见方案)。通过CSD和最先进的MS方法的组合获得的利基蛋白质组被证明可用于表征和鉴定该成人NSC利基中的新型调节因子25。因此,该方法将可用于测定SEZ组织蛋白组成。
CSD方法使得使用MS精确提取SEZ组织并生成具有显着深度的可靠蛋白质组成为可能.与全上位解剖相比,CSD在大大减少SEZ样品的纹状体污染和细胞外蛋白质富集方面显示出明显的优势。由于使用CSD和全联解剖也可以检测单个样品中相似数量的蛋白质(每个样品约6,500个蛋白质),因此CSD的额外时间非常值得。LCM提供更精确的SEZ解剖,但达到较低的蛋白质组深度,尽管使用与CSD相同的MS方案(文库匹配和无标记定量),但每个样品仅含有3,500个蛋白质。重要的是,变异性要大得多,可能是由于每个样品的制备时间延长了八倍。通过LCM和CSD获得的样品的PCA揭示了两种方法的清晰分离,并且彼此之间有紧密的区域特异性簇。相比之下,LCM样品显示出更分散的分布,这可能部分是由于制备时间长。目前尚不清楚在较长的时间内收集更多的样本是否会产生与LCM具有相同稳健性和深度的蛋白质组。计算估计值,收集与CSD相似的样品体积将需要5-8倍的时间使用LCM,如果包括为肽谱库提供的样品,甚至需要15倍的时间,其中大部分是在解冻条件下。此外,考虑到LCM所需的组织的额外扰动(背景染色,激光解剖),LCM比CSD提供的增益很小(如果有的话)。因此,CSD可以被认为更适合细胞外蛋白质组研究,特别是对于经济特区。
值得注意的是,如果感兴趣的区域小于经济特区(例如,仅研究室管膜细胞层),则自由方法落后于LCM的准确性。例如,使用CSD将室管膜层与室管膜下层分开是困难的,因为室管膜层只有一个细胞直径宽,并且在新鲜冷冻组织中肉眼看不到室管膜下层的分界线。因此,如果在低于50μm的尺度上进行精确解剖比未受干扰的组织或保持较短的解剖时间更重要,则LCM将是比CSD更好的选择。然而,对于宽度为50μm及以上的区域,CSD的精度与LCM蛋白质分析的LCM精度相当。
CSD已经通过有助于研究ECM在神经源性生态位中的功能作用来证明是有用的25。因此,CSD在经济特区中继续应用于各种蛋白质和蛋白质组研究(甚至单核RNA测序)可能会导致进一步检测神经发生调节因子,干细胞活化标记物,并更深入地了解经济特区干细胞生态位生理学。考虑到老化的SEZ37中神经发生的下降,对老年小鼠与年轻小鼠经济特区的ECM变化的简要分析可能会促进对促进NSC发育和维护的确切生态位机制的理解38,39。此外,炎症和损伤对经济特区神经发生的影响已得到充分证实40,41,42,43。皮质脑损伤后经济特区血液来源纤维蛋白原的富集及其对经济特区星形胶质生成和疤痕形成的影响44凸显了创伤诱导的微环境变化对经济特区干细胞生理的潜在影响。因此,使用CSD研究与脑损伤相关的SEZ-ECM蛋白质组可以帮助阐明损伤和炎症影响神经发生的机制。重要的是,该方法还可以应用于健康和疾病中的人脑神经源性生态位,因为通常可以从手术中获得新鲜的冷冻组织。此外,鉴于成虫神经发生的物种差异,将CSD方法应用于其他物种也将是令人着迷的,例如,与纹状体神经发生有关。此外,使用其他蛋白质检测方法,可以使用经济特区和MEZ的CSD(例如ELISA)准确有效地研究当地生产的生长因子的差异。
最后,解剖程序可能会被修改,以准确提取其他大脑区域,也适用于与神经发生无关的研究问题。例如,CSD包括一个简短的半解冻步骤,在此期间,紧凑的髓鞘可见为白色区域,与更半透明的残余脑组织不同。通过对该方法的简单修改,该特征将允许仅精确解剖胼胝体致密髓鞘组织,其可以对损伤相关变化进行蛋白质组学分析。建议进行方案修改,允许冷胼体解剖,省略方案的步骤1.5-1.9,直接继续准备日冕切片,而不是打开心室以使经济特区和MEZ可进入。然后,将切片放在干冰上,短暂抬起并半解冻切片,然后用手术刀简单地取出胼胝体。这种制剂现在应该准备好进行任何需要有效解剖天然胼胝体组织的分析。
总之,本研究提出了一种可用于可靠心室神经源性生态位蛋白质组分析的显微解剖方法。这些数据强调了CSD方法的兼容性和实用性,以及经济特区微环境的基于MS的蛋白质组学分析。精度,效率和最小组织扰动的结合使CSD成为现有方法的宝贵扩展。
The authors have nothing to disclose.
我们要衷心感谢Mathias Mann允许我们在他的实验室进行大部分实验,Fabian Coscia帮助LCM和蛋白质组分析,Tatiana Simon-Ebert进行全山解剖,Korbinian Mayr和Igor Paron提供技术帮助。我们非常感谢德国研究委员会对MG(SFB870,TFR274),欧盟(Eranet S-700982-5008-001),ERC(aERC”NeuroCentro”到MG),瑞典医学研究学会(SSMF,到JK)博士后资助,以及KI基金会和基金(2020-01351,到JK)。
Cryostat CM3050S | Leica | ||
Dissecting microscope | Leica | ||
Dumont no. 5SF forceps, Inox super fine tip | Fine Science Tools | cat. no. 11252-00 | |
Hank’s Balanced Salt Solution with CaCl2 and MgCl2 | Invitrogen | cat. no. 24020 | |
HEPES buffer solution (1 M) | Invitrogen | cat. no. 15630 | |
Microscope slides | RS France | cat. no. BPB018 | |
Safe-lock tubes, PCR clean 2.0 mL | Eppendorf | cat. no. 0030123344 | |
Spring scissors, Vannas-Tubingen 5 mm | Fine Science Tools | cat. no. 15003-08 | |
Surgical disposable scalpels | B. Braun | cat. no. 5518083 | |
Tissue culture dishes 60 mm | Greiner Bio-One | cat. no. 633180 | |
Antibodies | |||
Alexa Fluor secondary antibodies (488, 555) (1/1,000) | ThermoFisher Scientific | cat. no. A-11001 | |
DAPI | Sigma | cat. no. D9542 | |
guinea pig polyclonal anti-DCX 1:500 | Millipore | cat. no. AB2253, | |
mouse monoclonal anti-GFAP 1:500 | Sigma | cat. no. G3893 | |
mouse monoclonal anti-MAG 1:400 | Millipore | cat. no. MAB1567 | |
Software | |||
GraphPad Prism version 9 | GraphPad Software, San Diego California USA | www.graphpad.com | |
Perseus Version 1.6.10.50 | Max-Planck Institute for Biochemistry, Munich Bavaria Germany | https://maxquant.net/perseus/ | |
ZEN imaging software | Carl Zeiss |