Summary

Producción de anticuerpos monoclonales dirigidos a la aminopeptidasa N en el epitelio de la mucosa intestinal porcina

Published: May 18, 2021
doi:

Summary

La proteína de anticuerpo recombinante expresada en células pIRES2-ZSGreen1-rAbs-APN-CHO y anticuerpos monoclonales producidos utilizando la tecnología tradicional de hibridoma puede reconocer y unirse a la proteína N aminopeptidasa porcina (APN).

Abstract

La aminopeptidasa porcina N (APN), una metalopeptidasa unida a la membrana abundantemente presente en la mucosa del intestino delgado, puede iniciar una respuesta inmune de la mucosa sin ninguna interferencia, como baja expresión de proteínas, inactividad enzimática o cambios estructurales. Esto hace que APN sea un candidato atractivo en el desarrollo de vacunas que se dirigen selectivamente al epitelio de la mucosa. Estudios previos han demostrado que la APN es una proteína receptora tanto para la Escherichia coli enterotoxigénica (E. coli) F4 como para el virus de la gastroenteritis transmisible. Por lo tanto, APN se muestra prometedora en el desarrollo de conjugados anticuerpo-fármaco o nuevas vacunas basadas en anticuerpos específicos de APN. En este estudio, comparamos la producción de anticuerpos monoclonales específicos de APN (mAbs) utilizando la tecnología tradicional de hibridoma y el método de expresión de anticuerpos recombinantes. También establecimos una línea celular de ovario de hámster chino (CHO) transfectada de manera estable utilizando pIRES2-ZSGreen1-rAbs-APN y una cepa BL21 (DE3) de expresión de E. coli que alberga el vector pET28a (+)-rAbs-APN. Los resultados muestran que los anticuerpos expresados en células pIRES2-ZSGreen1-rAbs-APN-CHO y mAbs producidos mediante hibridomas podrían reconocer y unirse a la proteína APN. Esto proporciona la base para una mayor elucidación de la función del receptor de APN para el desarrollo de terapias dirigidas a diferentes epítopos específicos de APN.

Introduction

La aminopeptidasa N (APN), una enzima moonlighting que pertenece a la familia de la metaloproteinasa M1, actúa como marcador tumoral, receptor y molécula de señalización a través de vías dependientes de enzimas e independientes de enzimas 1,2. Además de escindir los residuos de aminoácidos N-terminales de varios péptidos bioactivos para la regulación de su actividad biológica, APN juega un papel importante en la patogénesis de diversas enfermedades inflamatorias. La NPA participa en el procesamiento y presentación de antígenos por péptidos recortados que se unen estrechamente a las principales moléculas del complejo de histocompatibilidad de clase II 2,3. La NPA también ejerce efectos antiinflamatorios al unirse con receptores acoplados a proteínas G que participan en la transducción de señales múltiples, modulando la secreción de citoquinas y contribuyendo a la fagocitosis mediada por el receptor gamma Fc en la respuesta inmune 4,5,6,7.

Como exopeptidasa unida a la membrana ampliamente distribuida, la NPA es abundante en la mucosa del intestino delgado porcino y está estrechamente asociada con la endocitosis mediada por receptores 1,5,8. La NPA reconoce y se une a la proteína espiga del virus de la gastroenteritis transmisible para la entrada celular, e interactúa directamente con la subunidad FaeG de las fimbrias enterotoxigénicas Escherichia coli F4 para afectar la adherencia bacteriana con las células huésped 9,10,11. Por lo tanto, la NPA es una potencial diana terapéutica en el tratamiento de enfermedades infecciosas virales y bacterianas.

Desde el desarrollo de la tecnología de hibridoma y otras estrategias para la producción de anticuerpos monoclonales (mAbs) en 1975, los mAbs se han utilizado ampliamente en inmunoterapia, administración de fármacos y diagnóstico12,13,14. Actualmente, los mAbs se utilizan con éxito para tratar enfermedades como el cáncer, la enfermedad inflamatoria intestinal y la esclerosis múltiple12,15. Debido a su fuerte afinidad y especificidad, los mAbs pueden ser objetivos ideales en el desarrollo de conjugados anticuerpo-fármaco (ADC) o nuevas vacunas16,17. La proteína APN es crítica para la entrega selectiva de antígenos a células específicas, y puede provocar una respuesta inmune de la mucosa específica y fuerte contra patógenos sin ninguna interferencia, incluida la baja expresión de proteínas, la inactividad enzimática o los cambios estructurales 5,8,18. Por lo tanto, los productos terapéuticos basados en mAbs específicos de APN son prometedores contra las infecciones bacterianas y virales. En este estudio, describimos la producción de mAbs específicos de APN utilizando tecnología de hibridoma y la expresión de anticuerpos recombinantes anti-APN (rAbs) utilizando vectores procariotas y eucariotas. El resultado indica que la proteína APN fue reconocida tanto por rAbs expresados en células pIRES2-ZSGreen1-rAbs-APN-CHO como por mAbs derivadas de hibridomas.

Protocol

Todos los experimentos con animales en este estudio fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Yangzhou (SYXK20200041). 1. Preparación del antígeno de la proteína APN porcina NOTA: La cepa pET28a (+)-APN-BL21 (DE3) y las células APN expresadas establemente pEGFP-C1-APN-IPEC-J2 fueron construidas en un estudio previo11. Recuperar bacterias de una cepa de glicerol congelada y ra…

Representative Results

En este estudio, la proteína APN soluble purificada (2,12 mg/ml) se utilizó para la inmunización con ratones. Los ratones inmunizados con la proteína APN cuatro veces a intervalos de 14 días exhibieron un título de anticuerpos más alto contra APN en sus sueros. Aunque se obtuvieron 14 hibridomas utilizando los experimentos de fusión, solo 9 hibridomas sobrevivieron a los tres ciclos continuos de congelación-descongelación, lo que resultó en 9 clones estables que secretaron anticuerpos contra APN. Todas estas c…

Discussion

La inducción de la inmunidad de la mucosa es uno de los enfoques más efectivos para contrarrestar los patógenos y en la prevención y el tratamiento de diversas enfermedades. La NPA, una proteína unida a la membrana altamente expresada en la mucosa intestinal, está implicada en la inducción de la respuesta inmune adaptativa y en la endocitosis viral y bacteriana mediada por receptores 1,5,8. La NPA se utiliza como partícu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudio fue apoyado por la Beca de la Fundación Nacional de Ciencias de China (No. 32072820, 31702242), subvenciones de la Beca del Gobierno de Jiangsu para Estudios en el Extranjero (JS20190246) y Talentos de Alto Nivel de la Fundación de Investigación Científica de la Universidad de Yangzhou, un proyecto fundado por el Programa Académico Prioritario de Desarrollo de la Institución de Educación Superior de Jiangsu.

Materials

Complete Freund’s adjuvant Sigma-Aldrich F5881 Animal immunization
DAPI Beyotime  Biotechnology C1002 Nuclear counterstain
DMEM Gibco 11965092 Cell culture
DMEM-F12 Gibco 12634010 Cell culture
Dylight 549-conjugated goat anti-mouse IgG secondary antibody Abbkine A23310 Indirect immunofluorescence analysis
Enhanced Cell Counting Kit-8 Beyotime  Biotechnology C0042 Measurement of cell viability and vitality
Fetal bovine serum Gibco 10091 Cell culture
Geneticin™ Selective Antibiotic Gibco 11811098 Selective antibiotic
HAT Supplement (50X) Gibco 21060017 Cell selection
HT Supplement (100X) Gibco 11067030 Cell selection
Incomplete Freund’s adjuvant Sigma-Aldrich F5506 Animal immunization
isopropyl β-d-1-thiogalactopyranoside Sigma-Aldrich I5502 Protein expression
kanamycin Beyotime  Biotechnology ST102 Bactericidal antibiotic
Leica TCS SP8 STED confocal microscope Leica Microsystems  SP8 STED Fluorescence imaging
Lipofectamine® 2000 Reagent Thermofisher 11668019 Transfection
LSRFortessa™ fluorescence-activated cell sorting BD FACS LSRFortessa Flow cytometry
Microplate reader BioTek BOX 998 ELISA analysis
Micro spectrophotometer Thermo Fisher Nano Drop one Nucleic acid concentration detection
NaCl Sinopharm Chemical Reagent 10019308 Culture broth
(NH4)2SO4 Sinopharm Chemical Reagent 10002917 Culture broth
Opti-MEM Gibco 31985088 Cell culture
Polyethylene glycol 1500 Roche Diagnostics 10783641001 Cell fusion
PrimeScript™ 1st strand cDNA Synthesis Kit Takara Bio RR047 qPCR
protein A agarose Beyotime  Biotechnology P2006 Antibody protein purification
Protino® Ni+-TED 2000 Packed Columns MACHEREY-NAGEL 745120.5 Protein purification
SBA Clonotyping System-HRP Southern Biotech May-00 Isotyping of mouse monoclonal antibodies
Seamless Cloning Kit Beyotime  Biotechnology D7010S Construction of plasmids
Shake flasks Beyotime  Biotechnology E3285 Cell culture
Sodium carbonate-sodium bicarbonate buffer Beyotime  Biotechnology C0221A Cell culture
Trans-Blot SD Semi-Dry Transfer Cell Bio-rad  170-3940 Western blot
Tryptone Oxoid LP0042 Culture broth
Ultrasonic Homogenizer Ningbo Xinzhi Biotechnology JY92-IIN Sample homogenization
Yeast extract Oxoid LP0021 Culture broth
96-well microplate Corning 3599 Cell culture

References

  1. Chen, L., Lin, Y. L., Peng, G., Li, F. Structural basis for multifunctional roles of mammalian aminopeptidase N. Proceedings of the National Academy of Sciences of The United States Of America. 109 (44), 17966-17971 (2012).
  2. Mina-Osorio, P. The moonlighting enzyme CD13: old and new functions to target. Trends in Molecular Medicine. 14 (8), 361-371 (2008).
  3. Lu, C., Amin, M. A., Fox, D. A. CD13/Aminopeptidase N is a potential therapeutic target for inflammatory disorders. The Journal of Immunology. 204 (1), 3-11 (2020).
  4. Villaseñor-Cardoso, M. I., Frausto-Del-Río, D. A., Ortega, E. Aminopeptidase N (CD13) is involved in phagocytic processes in human dendritic cells and macrophages. BioMed Research International. 2013, 562984 (2013).
  5. Melkebeek, V., et al. Targeting aminopeptidase N, a newly identified receptor for F4ac fimbriae, enhances the intestinal mucosal immune response. Mucosal Immunology. 5 (6), 635-645 (2012).
  6. Morgan, R., et al. Expression and function of aminopeptidase N/CD13 produced by fibroblast-like synoviocytes in rheumatoid arthritis: role of CD13 in chemotaxis of cytokine-activated T cells independent of enzymatic activity. Arthritis & Rheumatology. 67 (1), 74-85 (2015).
  7. Du, Y., et al. Angiogenic and arthritogenic properties of the soluble form of CD13. The Journal of Immunology. 203 (2), 360-369 (2019).
  8. Rasschaert, K., Devriendt, B., Favoreel, H., Goddeeris, B. M., Cox, E. Clathrin-mediated endocytosis and transcytosis of enterotoxigenic Escherichia coli F4 fimbriae in porcine intestinal epithelial cells. Veterinary Immunology and Immunopathology. 137 (3-4), 243-250 (2010).
  9. Reguera, J., et al. Structural bases of coronavirus attachment to host aminopeptidase N and its inhibition by neutralizing antibodies. PLoS Pathogens. 8 (8), 100859 (2012).
  10. Delmas, B., et al. Aminopeptidase N is a major receptor for the entero-pathogenic coronavirus TGEV. Nature. 357 (6377), (1992).
  11. Xia, P., et al. Porcine aminopeptidase N binds to F4+ enterotoxigenic Escherichia coli fimbriae. Veterinary Research. 47 (1), 24 (2016).
  12. Nakamura, R. M. Monoclonal antibodies: methods and clinical laboratory applications. Clinical Physiology and Biochemistry. 1 (2-5), 160-172 (1983).
  13. Chan, C. E., Chan, A. H., Lim, A. P., Hanson, B. J. Comparison of the efficiency of antibody selection from semi-synthetic scFv and non-immune Fab phage display libraries against protein targets for rapid development of diagnostic immunoassays. Journal of Immunological Methods. 373 (1-2), 79-88 (2011).
  14. Köhler, G., Milstein, C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature. 256 (5517), 495-497 (1975).
  15. El Miedany, Y. MABS: targeted therapy tailored to the patient’s need. British Journal of Nursing. 24 (16), 4-13 (2015).
  16. Castelli, M. S., McGonigle, P., Hornby, P. J. The pharmacology and therapeutic applications of monoclonal antibodies. Pharmacology Research & Perspectives. 7 (6), 00535 (2019).
  17. Weiner, G. J. Building better monoclonal antibody-based therapeutics. Nature Reviews Cancer. 15 (6), 361-370 (2015).
  18. Bakshi, S., et al. Evaluating single-domain antibodies as carriers for targeted vaccine delivery to the small intestinal epithelium. Journal of Controlled Release. 321, 416-429 (2020).
  19. Kohler, G., Milstein, C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. The Journal of Immunology. 174 (5), 2453-2455 (2005).
  20. Chen, W., Liu, W. E., Li, Y. M., Luo, S., Zhong, Y. M. Preparation and preliminary application of monoclonal antibodies to the receptor binding region of Clostridium difficile toxin B. Molecular Medicine Reports. 12 (5), 7712-7720 (2015).
  21. Levieux, D., Venien, A., Levieux, A. Epitopic analysis and quantification of bovine myoglobin with monoclonal antibodies. Hybridoma. 14 (5), 435-442 (1995).
  22. Zhou, M., et al. Flagellin and F4 fimbriae have opposite effects on biofilm formation and quorum sensing in F4ac+ enterotoxigenic Escherichia coli. Veterinary Microbiology. 168 (1), 148-153 (2014).
  23. Heinrich, L., Tissot, N., Hartmann, D. J., Cohen, R. Comparison of the results obtained by ELISA and surface plasmon resonance for the determination of antibody affinity. Journal of Immunological Methods. 352 (1-2), 13-22 (2010).
  24. Vander Weken, H., Cox, E., Devriendt, B. Advances in oral subunit vaccine design. Vaccines. 9, 1 (2020).
  25. Baert, K., et al. β-glucan microparticles targeted to epithelial APN as oral antigen delivery system. Journal of Controlled Release. 220, 149-159 (2015).
  26. Neuberger, M. S., Williams, G. T., Fox, R. O. Recombinant antibodies possessing novel effector functions. Nature. 312 (5995), 604-608 (1984).

Play Video

Cite This Article
Xia, P., Lian, S., Wu, Y., Yan, L. Production of Monoclonal Antibodies Targeting Aminopeptidase N in the Porcine Intestinal Mucosal Epithelium. J. Vis. Exp. (171), e62437, doi:10.3791/62437 (2021).

View Video