Summary

クローン造造を研究するマウスにおける骨髄移植手順

Published: May 26, 2021
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Summary

骨髄移植(BMT)の3つの方法について、全体照射によるBMT、シールド照射を伴うBMT、マウスモデルにおけるクローナル造頭法の研究のための予備調整なし(養子BMT)を用いたBMT法について述べた。

Abstract

クローン造血は、造血幹細胞および前駆細胞(HSPCs)における体細胞突然変異の蓄積に起因する一般的な年齢関連状態である。細胞の適合性を与えるドライバー遺伝子の突然変異は、体細胞突然変異を抱える子孫白血球をますます生じさせるHSPCクローンの拡大につながる可能性がある。クローン造形は心臓病、脳卒中、死亡率に関連しているため、これらのプロセスをモデル化する実験システムの開発は、この新しい危険因子のメカニズムを理解する鍵です。全身照射(TBI)などのマウスにおける骨髄性調節を伴う骨髄移植手順は、心血管疾患における免疫細胞の役割を研究するために一般的に採用されている。しかし、骨髄ニッチおよび心臓や脳などの関心のある他の部位への同時損傷は、これらの手順では避けられない。このように、私たちの研究室は、TBIによって引き起こされる可能性のある副作用を最小限に抑えるか回避するための2つの代替方法を開発しました:1)照射シールドによる骨髄移植と2)非条件付きマウスへの養子BMT。シールドされた器官では、局所的な環境が保存され、常駐免疫細胞の機能が妨げられていない間、クローン造造りの分析を可能にする。対照的に、非コンディショネートマウスへの導入BMTは、臓器の局所環境と造血ニッチの両方が保存されるという付加的な利点を有する。ここでは、3つの異なる造血細胞再構成アプローチを比較し、心血管疾患におけるクローン造血の研究におけるそれらの強みと限界について議論する。

Introduction

クローン造血(CH)は、高齢の個体で頻繁に観察される状態であり、遺伝子変異を運ぶ造血幹細胞および前駆細胞(HSPC)クローンの拡大の結果として生じる。50歳までに、ほとんどの個体が各HSPC2で平均5つのエキソン突然変異を獲得することが示唆されているが、これらの突然変異のほとんどは、その個体にほとんどまたは全く触知の結果をもたらすであろう。しかし、偶然にも、これらの突然変異の1つがHSPCに対して競争上の優位性を与える(例えば、HSPCの増殖、自己再生、生存、またはこれらの組み合わせ)が与える場合、これは他のHSPCsに対する変異クローンの優先的な拡大につながる可能性があります。その結果、突然変異したHSPCが成熟した血液細胞を生み出し、末梢血内の突然変異細胞の明確な集団に至るにつれて、突然変異は造血系を通じてますます広がる。数十の異なる候補ドライバ遺伝子の変異が造血系内のクローンイベントと関連している一方、これらの中で、DNAメチルトランスヴァリン酵素3α(DNMT3A)および111個の転座2(TET2)の変異が最も一般的である3。いくつかの疫学的研究では、これらの遺伝子変異を運ぶ個人は、心血管疾患(CVD)、脳卒中、および全因果死亡率リスクが有意に高いことを発見しました3,4,5,6,7.これらの研究は、CHとCVDと脳卒中の発生率の増加との間に関連が存在することを特定したが、この関係が因果関係であるか、老化プロセスと共通のエピレプションであるかは分からない。この関連を理解するためには、CHの人間の状態を正しく再現する適切な動物モデルが必要です。

ゼブラフィッシュ、マウス、および非ヒト霊長類8、9、10、11、12、13、14を使用して、我々のグループと他の人によっていくつかのCH動物モデルが確立されています。これらのモデルは、しばしば、Cre-lox組換えまたはCRISPRシステムを用いて、遺伝子組換え細胞の移植による造血再構成法を使用する。このアプローチにより、造血細胞における特定の遺伝子変異の分析が、疾患の発症にどのように寄与するかを評価することができます。さらに、これらのモデルは、多くの場合、正常または野生型細胞から変異細胞の効果を区別するために、コンジェニックまたはレポーター細胞を採用しています。多くの場合、ドナー造血幹細胞を正常に生着させるためには、事前調整レジメンが必要です。

現在、骨髄をレシピエントマウスに移植することは、1)骨髄性調節と2)非条件付き移植の2つの主要なカテゴリーに分けることができる。骨髄性調節は、2つの方法、すなわち、全身照射(TBI)または化学療法15のいずれかによって達成することができる。TBIは、レシピエントにガンマまたはX線照射の致死量を照射することによって行われ、急速に分裂した細胞内でDNA切断またはクロスリンクを生成し、それらを取り返しのつかない16にレンダリングする。ブスルファンとシクロホスファミドは、造血ニッチを破壊し、同様に急速に分裂する細胞にDNA損傷を引き起こす2つの一般的に使用される化学療法薬である。骨髄性プレコンディショニングの結果は、レシピ細胞のアポトーシスであり、レシピエントの造血系を破壊する。この戦略は、ドナーHSPの生着を成功させるだけでなく、レシピエントの免疫系を抑制することによって移植片拒絶反応を防ぐこともできる。しかし、骨髄性プレコンディショニングは、組織および器官およびそれらの常駐免疫細胞への損傷ならびに天然骨髄ニッチ17の破壊などの重篤な副作用を有する。したがって、これらの望ましくない副作用を克服する代替方法が提案されているが、特に目的の器官への損傷に関してである。これらの方法は、受容マウスのシールド照射及び非条件マウス9、17への養子BMTを含む。リードバリアの配置による胸郭、腹腔、頭部または他の領域を照射から遮蔽し、照射の有害な影響から保護された目的の組織を維持し、その常駐免疫細胞集団を維持する。一方、非コンディションマウスにHSPCの採用BMCは、天然造血ニッチを維持するため、追加の利点を有する。本稿では、マウスにおけるいくつかの移植レジメン、特にTBIマウスへのHSPCの送達、部分的に照射から遮蔽されたマウス、および非調整マウスへのHSPC生着のプロトコルおよび結果について述べる。全体的な目標は、研究者が各方法の異なる生理学的影響だけでなく、CHと心血管疾患の設定における実験的成果にどのような影響を与えるかを理解するのを助けるものです。

Protocol

動物の被験者を含むすべての手順は、バージニア大学の制度的動物管理および使用委員会(IACUC)によって承認されています。 1. 事前調整の前に レシピエントマウスを抗生物質補充水(5 mMスルファメトキサゾール、0.86 mMトリメトプリム)~24時間前に照射する。これは、感染を予防するために必要であり、免疫系は照射後に抑制され、照射後2週間維持される。この時点…

Representative Results

ドナー細胞の生着に対する3つのBMT/プレコンディショニング方法の効果を比較するために、末梢血および心臓組織におけるドナー細胞の分画を、1ヶ月後のBMT後のフローサイトメトリーによって分析した。特定の白血球マーカーについて分離細胞を染色し、白血球の異なるサブセットを同定した。これらの実験では、野生型(WT)C57BL/6(CD45.2)ドナー骨髄細胞をWT B6に送達した。SJL-Pt…

Discussion

クローン造造の研究では、総ボディ照射を伴うBMT、部分シールドによる照射を伴うBMT、およびプレコンディショニングを伴わないあまり一般的に使用されないBMT法(養子BMT)の3つの方法について説明した。これらの方法は、クローン造造が心血管疾患に及ぼす影響を評価するために使用されてきた。研究者は、研究の特定の目的に合わせてこれらの方法を変更することができます。

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Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、K.ウォルシュ(HL131006、HL138014、HL132564)、S.サノ(HL152174)、M.A.エバンス(20POST35210098)への米国心臓協会助成金、および小川への日本心臓財団への米国国立衛生研究所の助成金によって支援されました。

Materials

0.5ml microcentrifuge Fisher Scientific 05-408-121 general supply
1.5ml microcentrifuge Fisher Scientific 05-408-129 general supply
1/2 cc LO-DOSE INSULIN SYRINGE EXELINT 26028 general supply
Absolute Ethanol (200 prfof) Fisher chemical 200559 general supply
BD 1mL Tuberculin Syringes 25G 5/8 Inch Needle Becton Dickinson 309626 general supply
BD PrecisionGlide Needle 18G (1.22mm X 25mm) Becton Dickinson 395195 general supply
Cesium-137 Irradiator J. L. Shepherd  Mark IV equipment
DietGel 76A Clear H2O 70-01-5022 general supply
Falcon 100 mm TC-Treated Cell Culture Dish Life Sciences 353003 general supply
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 352098 general supply
Fisherbrand sterile cell strainers, 70 μm Fisher Scientific 22363548 general supply
Graefe Forceps Fine Science Tools 11051-10 general supply
Hardened Fine Scissors Fine Science Tools 14090-09 general supply
Isothesia (Isoflurane) solution Henry Schein 29404 Solution
Ketamine Zoetis 043-304 injection
Kimwipes Delicate Task Wipers Kimtech Science KCC34155 general supply
PBS pH7.4 (1X) Gibco 10010023 Solution
RadDisk – Rodent Irradiator Disk Braintree Scientific IRD-P M general supply
RPMI Medium 1640 (1X) Gibco 11875-093 Medium
Sulfamethoxazole and Trimethoprim TEVA 0703-9526-01 injection
Xylazine Akorn 139-236 injection
X-ray irradiator Rad source RS-2000 equipment

References

  1. Evans, M. A., Sano, S., Walsh, K. Cardiovascular disease, aging, and clonal hematopoiesis. Annual Review of Pathology: Mechanisms of Disease. 15 (1), 419-438 (2020).
  2. Welch, J. S., et al. The origin and evolution of mutations in acute myeloid leukemia. Cell. 150 (2), 264-278 (2012).
  3. Jaiswal, S., et al. Age-related clonal hematopoiesis associated with adverse outcomes. New England Journal of Medicine. 371 (26), 2488-2498 (2014).
  4. Dorsheimer, L., et al. Association of mutations contributing to conal hematopoiesis with prognosis in chronic ischemic heart failure. JAMA Cardiology. 4 (1), 25 (2019).
  5. Genovese, G., et al. Clonal hematopoiesis and blood-cancer risk inferred from blood DNA sequence. New England Journal of Medicine. 371 (26), 2477-2487 (2014).
  6. Jaiswal, S., et al. Clonal hematopoiesis and risk of atherosclerotic cardiovascular disease. New England Journal of Medicine. 377 (2), 111-121 (2017).
  7. Bick, A. G., et al. Genetic interleukin 6 signaling deficiency attenuates cardiovascular risk in clonal hematopoiesis. Circulation. 141 (2), 124-131 (2020).
  8. Fuster, J. J., et al. Clonal hematopoiesis associated with TET2 deficiency accelerates atherosclerosis development in mice. Science. 355 (6327), 842-847 (2017).
  9. Wang, Y., et al. Tet2-mediated clonal hematopoiesis in nonconditioned mice accelerates age-associated cardiac dysfunction. JCI Insight. 5 (6), 135204 (2020).
  10. Sano, S., et al. Tet2-mediated clonal hematopoiesis accelerates heart failure through a mechanism involving the IL-1β/NLRP3 inflammasome. Journal of the American College of Cardiology. 71 (8), 875-886 (2018).
  11. Sano, S., et al. JAK2-mediated clonal hematopoiesis accelerates pathological remodeling in murine heart failure. JACC: Basic to Translational Science. 4 (6), 684-697 (2019).
  12. Yu, K. R., et al. The impact of aging on primate hematopoiesis as interrogated by clonal tracking. Blood. 131 (11), 1195-1205 (2018).
  13. Sano, S., et al. CRISPR-mediated gene editing to assess the roles of Tet2 and Dnmt3a in clonal hematopoiesis and cardiovascular disease. Circulation Research. 123 (3), 335-341 (2018).
  14. Stachura, D. L., et al. Clonal analysis of hematopoietic progenitor cells in the zebrafish. Blood. 118 (5), 1274-1282 (2011).
  15. Gyurkocza, B., Sandmaier, B. M. Conditioning regimens for hematopoietic cell transplantation: one size does not fit all. Blood. 124 (3), 344-353 (2014).
  16. Bacigalupo, A., et al. Defining the intensity of conditioning regimens: working definitions. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 15 (12), 1628-1633 (2009).
  17. Abbuehl, J. P., Tatarova, Z., Held, W., Huelsken, J. Long-term engraftment of primary bone marrow stromal cells repairs niche damage and improves hematopoietic stem cell transplantation. Cell Stem Cell. 21 (2), 241-255 (2017).
  18. Shao, L., et al. Total body irradiation causes long-term mouse BM injury via induction of HSC premature senescence in an Ink4a- and Arf-independent manner. Blood. 123 (20), 3105-3115 (2014).
  19. Cui, Y. Z., et al. Optimal protocol for total body irradiation for allogeneic bone marrow transplantation in mice. Bone Marrow Transplantation. 30 (12), 843-849 (2002).
  20. Koch, A., et al. Establishment of early endpoints in mouse total-body irradiation model. PLOS One. 11 (8), 0161079 (2016).
  21. Ismaiel, A., Dumitraşcu, D. L. Cardiovascular risk in fatty liver disease: the liver-heart axis-literature review. Frontiers in Medicine. 6, 202 (2019).
  22. Amann, K., Wanner, C., Ritz, E. Cross-talk between the kidney and the cardiovascular system. Journal of the American Society of Nephrology. 17 (8), 2112-2119 (2006).
  23. Liao, X., et al. Distinct roles of resident and nonresident macrophages in nonischemic cardiomyopathy. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (20), 4661-4669 (2018).
  24. Honold, L., Nahrendorf, M. Resident and monocyte-derived macrophages in cardiovascular disease. Circulation Research. 122 (1), 113-127 (2018).
  25. Lavine, K. J., et al. The macrophage in cardiac homeostasis and disease. Journal of the American College of Cardiology. 72 (18), 2213-2230 (2018).
  26. Ginhoux, F., Guilliams, M. Tissue-resident macrophage ontogeny and homeostasis. Immunity. 44 (3), 439-449 (2016).
  27. Mildner, A., et al. Microglia in the adult brain arise from Ly-6C hi CCR2+ monocytes only under defined host conditions. Nature Neuroscience. 10 (12), 1544-1553 (2007).
  28. Cronk, J. C., et al. Peripherally derived macrophages can engraft the brain independent of irradiation and maintain an identity distinct from microglia. Journal of Experimental Medicine. 215 (6), 1627-1647 (2018).
  29. Lu, R., Czechowicz, A., Seita, J., Jiang, D., Weissman, I. L. Clonal-level lineage commitment pathways of hematopoietic stem cells in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (4), 1447-1456 (2019).
  30. Gibson, B. W., et al. Comparison of cesium-137 and X-ray irradiators by using bone marrow transplant reconstitution in C57BL/6J mice. Comparative Medicine. 65 (3), 165-172 (2015).
  31. Cui, Y. Z., et al. Optimal protocol for total body irradiation for allogeneic bone marrow transplantation in mice. Bone Marrow Transplantation. 30 (12), 843-849 (2002).
  32. Kim, C. K., Yang, V. W., Bialkowska, A. B. The role of intestinal stem cells in epithelial regeneration following radiation-induced gut injury. Current Stem Cell Reports. 3 (4), 320-332 (2017).

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Park, E., Evans, M. A., Doviak, H., Horitani, K., Ogawa, H., Yura, Y., Wang, Y., Sano, S., Walsh, K. Bone Marrow Transplantation Procedures in Mice to Study Clonal Hematopoiesis. J. Vis. Exp. (171), e61875, doi:10.3791/61875 (2021).

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