Summary

Translaminär autonom systemmodell för modulering av intraokulärt och intrakraniellt tryck i bakre segment för mänskliga donatorer

Published: April 24, 2020
doi:

Summary

Vi beskriver och beskriver användningen av det translaminära autonoma systemet. Detta system använder det mänskliga bakre segmentet för att självständigt reglera trycket inuti segmentet (intraokulära) och omgivande optik nerv (intrakraniell) för att generera en translaminär tryck gradient som efterliknar funktioner av glaucomatous optik neurotoxiskt.

Abstract

Det finns ett aktuellt ouppfyllt behov av en ny preklinisk mänsklig modell som kan rikta in sig på sjukdom etiologi ex vivo med hjälp av intrakraniellt tryck (ICP) och intraokulära tryck (IOP) som kan identifiera olika patogena paradigm relaterade till glaukom patogenesen. Ex vivo mänskliga främre segment perfusion organ kultur modeller har tidigare framgångsrikt utnyttjats och tillämpas som effektiv teknik för upptäckt av glaukom patogenes och testning av terapier. Preklinisk läkemedelsscreening och forskning som utförs på ex vivo mänskliga organsystem kan vara mer översättbara till klinisk forskning. Denna artikel beskriver i detalj genereringen och driften av en ny ex vivo mänsklig translaminär tryckmodell som kallas det translaminära autonoma systemet (TAS). TAS-modellen kan självständigt reglera ICP och IOP med hjälp av mänskliga donator bakre segment. Modellen gör det möjligt att studera patogenes på ett prekliniskt sätt. Det kan minska användningen av levande djur i oftalmisk forskning. I motsats till in vitro-experimentella modeller kan optisk nervhuvud (ONH) vävnad struktur, komplexitet och integritet också upprätthållas inom ex vivo TAS-modellen.

Introduction

Globala uppskattningar i nyligen genomförda undersökningar tyder på att 285 miljoner människor lever med synnedsättning, inklusive 39 miljoner som är blinda1. År 2010 dokumenterade Världshälsoorganisationen att tre av de nio listade ledande orsakerna till blindhet förekommer i det bakre segmentet av ögat1. Bakre segment ögonsjukdomar involverar näthinnan, choroid och optik nerv2. Näthinnan och synnerven är centrala nervsystemet (CNS) förlängningar av hjärnan. Retinal ganglion cell (RGC) axons är sårbara för skador eftersom de lämnar ögat genom optik nerv huvudet (ONH) för att bilda optik nerv3. ONH är fortfarande den mest sårbara punkten för RGC axons på grund av 3D meshwork av bindväv strålar kallas lamina cribrosa (LC)4. ONH är den första platsen för förolämpning mot RGC axons i glaukom5,6,7, och genuttryck förändringar inom ONH har studerats i okulär hypertoni och glaukom modeller8,9,10. RGC axons är mottagliga vid ONH på grund av tryckskillnader mellan intraokulära facket, kallas intraokulärt tryck (IOP), och inom det yttre perioptiska subarachnoid utrymmet, kallas intrakraniellt tryck (ICP)11. LC-regionen separerar båda områdena och upprätthåller normala tryckskillnader, med IOP från 10-21 mmHg och ICP från 5-15 mmHg12. Tryckskillnaden genom laminan mellan de två kamrarna kallas translaminär tryckgradient (TLPG)13. En stor riskfaktor för glaukom är förhöjd IOP14.

Ökad IOP ökar belastningen inom och över laminärregionen6,15,16. Experimentella observationer hos människor och djurmodeller presenterar ONH som den ursprungliga platsen för axonal skada17,18. Det biomekaniska paradigmet för IOP-relaterad stress och stam som orsakar glauomatiska skador vid ONH påverkar också patofysiologin av glaukom19,20,21. Även om hos människor tryck-inducerade förändringar mekaniskt skada RGC axons22, gnagare som saknar kollagen plattor inom lamina kan också utveckla glaukom7,23. Dessutom är förhöjda IOP fortfarande den mest framträdande riskfaktorn i primära öppna vinkel glaukom patienter, medan normala spänning glaukom patienter utveckla glauomatous optik neurotoxiskt även utan förhöjda IOP. Dessutom finns det också en delmängd av okulär hypertensiva patienter som visar inga optik nerv skador. det har också föreslagits att ryggmärgsvätskan tryck (CSFp) kan spela en roll i glaukom patogenes. Bevis tyder på att ICP sänks till ~ 5 mmHg hos glaukom patienter jämfört med normala individer, vilket orsakar ökat translaminärt tryck och spelar en avgörande roll i sjukdom24,25. Tidigare visades det i en hundmodell, att genom att kontrollera IOP- och CSFp-förändringar kan det finnas stora förskjutningar av den optiska skivan26. Höja GSFp i svin ögon har också visat ökad huvudstam inom LC regionen och retrolaminar neural vävnad. Ökad belastning på RGCs och LC-regionen bidrar till axonal transport blockering och förlust av RGCs27. Progressiv degeneration av RGCs har associerats med förlust av trofiskt stöd28,29, stimulering av inflammatoriska processer/immunreglering30,31 och apoptotiska effektorer29,32,33,34,35. Dessutom orsakar axonal skada (figur 3) skadliga effekter på RGCs, vilket utlöser regenerativa fel36,37,38,39. Även om effekterna av IOP har studerats väl, har minimal forskning utförts på onormala translaminära tryckförändringar. De flesta behandlingar för glaukom fokuserar på att stabilisera IOP. Men även om sänkning av IOP saktar utvecklingen av sjukdomen, det inte vända synfält förlust och förhindra fullständig förlust av RGCs. Förstå tryck-relaterade neurodegenerativa förändringar i glaukom kommer att vara avgörande för att förhindra RGC död.

Aktuella bevis tyder på att translaminar tryck modulering på grund av att olika mekaniska, biologiska eller fysiologiska förändringar hos patienter som lider av traumatiska eller neurodegenerativa synnedsättningar kan orsaka betydande synförlust. För närvarande finns det ingen sann preklinisk mänsklig bakre segmentmodell som kan tillåta studier av glauomatous biomekaniska skador inom ex vivo mänskliga ONH. Observation och behandling av det bakre segmentet av ögat är en enorm utmaning inom oftalmologi27. Det finns fysiska och biologiska hinder för att rikta in sig på det bakre ögat, inklusive höga elimineringshastigheter, blod-retinal barriär och potentiella immunologiska svar40. De flesta effekt- och säkerhetstester för nya läkemedelsmål uppnås med hjälp av in vitro cellulära och in vivo djurmodeller41. Okulär anatomi är komplex, och in vitro studier inte exakt efterlikna de anatomiska och fysiologiska barriärer som presenteras av vävnad modellsystem. Även om djurmodeller är en nödvändighet för farmakokinetiska studier, kan okulär fysiologin hos det mänskliga bakre ögat variera mellan olika djurarter, inklusive cellulär anatomi av näthinnan, vaskulaturen och ONH41,42.

Användningen av levande djur kräver intensiva och detaljerade etiska regler, högt ekonomiskt engagemang och effektiv reproducerbarhet43. Nyligen har flera andra riktlinjer följt för etisk användning av djur i experimentell forskning44,45,46. Ett alternativ till djurförsök är användningen av ex vivo mänskliga ögonmodeller för att undersöka sjukdomspatogenes och potentiell analys av läkemedel för att skydda ONH-skador. Mänsklig postmortemvävnad är en värdefull resurs för att studera mänskliga sjukdomsparadigm, särskilt när det gäller neurodegenerativa sjukdomar hos människor, eftersom identifiering av potentiella läkemedel som utvecklats i djurmodeller kräver behovet av att kunna översättas till människor47. Ex vivo mänskliga donator vävnad har använts i stor utsträckning för studier av mänskliga störningar47,48,49, och mänskliga främre segment perfusion organ kultursystem har tidigare gett en unik ex vivo modell för att studera patofysiologi av förhöjda IOP50,51,52.

För att studera translaminärt tryck relaterade till IOP och ICP i mänskliga ögon, utformade och utvecklade vi framgångsrikt ett tvåkammar translaminärt autonomt system (TAS) som självständigt kan reglera IOP och ICP med hjälp av bakre segment från mänskliga donatorögon. Det är den första ex vivo mänskliga modellen att studera translaminära tryck och utnyttja de biomekaniska effekterna av TLPG på ONH.

Denna ex vivo mänskliga TAS-modell kan användas för att upptäcka och klassificera cellulära och funktionella modifieringar som uppstår på grund av kronisk höjd av IOP eller ICP. I den här rapporten beskriver vi steg-för-steg-protokollet för dissekering, inställning och övervakning av TAS mänskliga bakre segmentmodellen. Protokollet kommer att göra det möjligt för andra forskare att effektivt reproducera denna nya ex vivo trycksatta mänskliga bakre segment modell för att studera biomekanisk sjukdom patogenes.

Protocol

Enligt bestämmelserna i Helsingforsdeklarationen erhölls för forskning som rör mänsklig vävnad. OBS: Ögon från välrenommerade ögonbanker (t.ex. Lions Eye Institute for Transplant, Research, Tampa FL) skördades inom 6–12 timmar från döden och donatorserum testades för hepatit B, hepatit C och humant immunbristvirus 1 och 2. När de togs emot dissekerades ögonen och sattes upp i TAS-modellen inom 24 timmar. Uteslutningskriterier ingår alla okulär patologi. Ögon uteslöts inte…

Representative Results

Design och skapande av det translaminära autonoma systemetTranslaminära tryckdifferens är en potentiell nyckelmekanism i patogenesen vid olika sjukdomar, inklusive glaukom. Användningsområden för den beskrivna modellen inkluderar, men är inte begränsade till, studier av glaukom (förhöjd IOP, kanske minskad ICP), traumatisk hjärnskada (förhöjd ICP) och långvarig exponering för mikrogravitation-associerade synnedsättning (förhöjda ICP, förhöjda IOP). För att upptäcka molekylär pa…

Discussion

Mänskliga postmortemvävnader är en särskilt värdefull resurs för att studera mänskliga neurodegenerativa sjukdomar eftersom identifiering av potentiella läkemedel som utvecklats i djurmodeller måste översättas till människor47. Effekterna av mänsklig IOP höjd är väletablerade, men minimal forskning har utförts på onormala ONH translaminära tryckförändringar. Även om det finns flera djurmodeller och finita modellering av mänsklig ONH finns det ingen ex vivo mänsklig modell f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansieringen av detta projekt var genom diskretionära medel av Dr. Colleen M. McDowell. Detta arbete stöddes delvis av ett obegränsat anslag från Research to Prevent Blindness, Inc. till UW Madison Department of Ophthalmology and Visual Sciences. Vi tackar Drs. Abbot F. Clark och Weiming Mao för deras tekniska hjälp med modellen för perfusionsorgankultur. Vi tackar Lions Eye Institute for Transplant and Research (Tampa, FL) för att ha försett de mänskliga donatorögonen.

Materials

#122, 1-1/8" Inside x 1-5/16" Outside Diam, Viton O-Ring, 3/32" Thick,
755 Durometer 50 Pack
Amazon B07DRGPPZJ
114 Buna-N O-Ring, 70A Durometer, Black, 5/8" ID, 13/16" OD, 3/32" Width (Pack of 100) Amazon B000FMYRHK
30 mL Syringes without Needle Vitality Medical 302832
3-Way Stopcock, 2 Female Luer Locks, Swivel Male Luer Lock, Vented Cap QOSINA 2C6201
4-40 X 1/2 PH PAN MS SS/CHROME & appropriate sized phillips screwdriver Brikksen Stainless Steel Fastners PPMSSSCH4C.5  
ANPROLENE 16 LARGE AMPULE Fisher Scientific NC9085343  
Betadine Purdue PUR1815001EACH  
Corning 100 x 20mm tissue-culture treated culture dishes Sigma-Aldrich CLS430167-100EA  
Corning L-glutamine Solution Fisher Scientific MT25005CI
Covidien 3033 Curity Gauze Sponge, 4" x 4", 12-Ply, Sterile, 1200/CS Med Plus Medical Supply COV-3033-CS
Dressing Forceps Delicate Curved (serrated) Katena K5-4010
Dumont #5 – Fine Forceps F.S.T. 11254-20
Eye Scissors Standard Curved Katena K4-7410
Falcon 150 x 15mm Plain Sterile Disposable Petri Dishes Capitol Scientific 351058
Fisherbrand 4 oz. Specimen Containers Fisher Scientific 16-320-730
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouches Fisher Scientific 01-812-54
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouches Fisher Scientific 01-812-55
Fisherbrand Instant Sealing Sterilization Pouches Fisher Scientific 01-812-58
HyClone Dulbecco's Modified Eagles Medium Fisher Scientific SH3024302
HyClone Penicillin Streptomycin 100X Solution Fisher Scientific SV30010
Hydrophilic Filter with Female Luer Lock Inlet, Male Luer Slip Outlet, Blue and Clear Qosina 28217
Hydrostatic pressure transducers, DELTRAN ® II, Catalog # DPT-200 with a 3CC/HR flow rate AD instruments DPT-200
JG15-0.5HPX 15 Gauge 0.5" NT Premium Series Dispensing Tip 50/Box Jenson Global JG15-0.5HPX 15
Keyence B2‐X710 microscope Keyence B2-X710
LabChart 8 AD instruments LabChart 8
Leica ST5020 Multi-stainer Leica ST5020
Non-Vented Universal Luer Lock Cap, White QOSINA 65811
Octal Bridge Amp (Model # FE228) AD instruments FE228
Pharmco Products ETHYL ALCOHOL, 200 PROOF Fisher Scientific NC1675398
Phosphate Buffered Solution (PBS) Sigma-Aldrich D8537-500ML
PowerLab 8/35 (Model # PL3508) AD instruments PL3508
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI ThermoFisher P36935
Push-to-Connect Tube Fitting for Air and Water Straight Adapter, 1/8" Tube OD x 1/8 NPT Male McMAster-Carr 7880T113
Push-to-Connect Tube Fitting with Universal Thread for Air and Water, Adapter, 1/8" Tube OD x 1/8 Pipe McMAster-Carr 51235K101
Saint-Gobain Tygon S3 E-3603 Flexible Tubing 500 ft. Fisher Scientific 14-171-268
Superblock T20 Fisher Scientific PI37536
Surgical Scissors – Sharp-Blunt F.S.T. 14001-14
Tissue Forceps Delicate 1×2 Teeth Curved Katena K5-4110
Translaminar Autonomous System (TAS) University of North Texas Health Science Center N/A
USA Size 030 O-ring Buna-N, B1000, 70 Durometer, Black, Buna-N
(NBR, Nitrile, Buna)
Marco Rubber & Plastics B1000-030

References

  1. Pascolini, D., Mariotti, S. P. Global estimates of visual impairment: 2010. The British Journal of Ophthalmology. 96 (5), 614-618 (2012).
  2. Bastawrous, A., et al. Posterior segment eye disease in sub-Saharan Africa: review of recent population-based studies. Tropical Medicine & International Health. 19 (5), 600-609 (2014).
  3. Morgan, J. E. Circulation and axonal transport in the optic nerve. Eye. 18 (11), 1089-1095 (2004).
  4. Burgoyne, C. F. A biomechanical paradigm for axonal insult within the optic nerve head in aging and glaucoma. Experimental Eye Research. 93 (2), 120-132 (2011).
  5. Quigley, H. A., Addicks, E. M. Chronic experimental glaucoma in primates. II. Effect of extended intraocular pressure elevation on optic nerve head and axonal transport. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 19 (2), 137-152 (1980).
  6. Quigley, H. A., Addicks, E. M., Green, W. R., Maumenee, A. E. Optic nerve damage in human glaucoma. II. The site of injury and susceptibility to damage. Archives of Ophthalmology. 99 (4), 635-649 (1981).
  7. Howell, G. R., et al. Axons of retinal ganglion cells are insulted in the optic nerve early in DBA/2J glaucoma. The Journal of Cell Biology. 179 (7), 1523-1537 (2007).
  8. Johnson, E. C., Jia, L., Cepurna, W. O., Doser, T. A., Morrison, J. C. Global changes in optic nerve head gene expression after exposure to elevated intraocular pressure in a rat glaucoma model. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 48 (7), 3161-3177 (2007).
  9. Howell, G. R., et al. Molecular clustering identifies complement and endothelin induction as early events in a mouse model of glaucoma. Journal of Clinical Investigation. 121 (4), 1429-1444 (2011).
  10. Qu, J., Jakobs, T. C. The Time Course of Gene Expression during Reactive Gliosis in the Optic Nerve. PloS one. 8 (6), 67094 (2013).
  11. Berdahl, J. P., Fautsch, M. P., Stinnett, S. S., Allingham, R. R. Intracranial pressure in primary open angle glaucoma, normal tension glaucoma, and ocular hypertension: a case-control study. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 49 (12), 5412-5418 (2008).
  12. Berdahl, J. P., Allingham, R. R. Intracranial pressure and glaucoma. Current Opinion in Ophthalmology. 21 (2), 106-111 (2010).
  13. Morgan, W. H., et al. The correlation between cerebrospinal fluid pressure and retrolaminar tissue pressure. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 39 (8), 1419-1428 (1998).
  14. Leske, M. C., Connell, A. M., Wu, S. Y., Hyman, L. G., Schachat, A. P. Risk factors for open-angle glaucoma. The Barbados Eye Study. Archives of Ophthalmology. 113 (7), 918-924 (1995).
  15. Quigley, H. A., Green, W. R. The histology of human glaucoma cupping and optic nerve damage: clinicopathologic correlation in 21 eyes. Ophthalmology. 86 (10), 1803-1830 (1979).
  16. Burgoyne, C. F., Downs, J. C., Bellezza, A. J., Hart, R. T. Three-dimensional reconstruction of normal and early glaucoma monkey optic nerve head connective tissues. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 45 (12), 4388-4399 (2004).
  17. Diekmann, H., Fischer, D. Glaucoma and optic nerve repair. Cell and Tissue Research. 353 (2), 327-337 (2013).
  18. Nickells, R. W., Howell, G. R., Soto, I., John, S. W. Under pressure: cellular and molecular responses during glaucoma, a common neurodegeneration with axonopathy. Annual Review of Neuroscience. 35, 153-179 (2012).
  19. Burgoyne, C. F., Downs, J. C. Premise and prediction-how optic nerve head biomechanics underlies the susceptibility and clinical behavior of the aged optic nerve head. Journal of Glaucoma. 17 (4), 318-328 (2008).
  20. Sigal, I. A., Ethier, C. R. Biomechanics of the optic nerve head. Experimental Eye Research. 88 (4), 799-807 (2009).
  21. Sigal, I. A., Flanagan, J. G., Tertinegg, I., Ethier, C. R. Modeling individual-specific human optic nerve head biomechanics. Part I: IOP-induced deformations and influence of geometry. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 8 (2), 85-98 (2009).
  22. Morgan, J. E., Jeffery, G., Foss, A. J. Axon deviation in the human lamina cribrosa. The British Journal of Ophthalmology. 82 (6), 680-683 (1998).
  23. Danias, J., et al. Quantitative analysis of retinal ganglion cell (RGC) loss in aging DBA/2NNia glaucomatous mice: comparison with RGC loss in aging C57/BL6 mice. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 44 (12), 5151-5162 (2003).
  24. Berdahl, J. P., Allingham, R. R., Johnson, D. H. Cerebrospinal fluid pressure is decreased in primary open-angle glaucoma. Ophthalmology. 115 (5), 763-768 (2008).
  25. Fleischman, D., Allingham, R. R. The role of cerebrospinal fluid pressure in glaucoma and other ophthalmic diseases: A review. Saudi Journal of Ophthalmology. 27 (2), 97-106 (2013).
  26. Morgan, W. H., et al. Optic disc movement with variations in intraocular and cerebrospinal fluid pressure. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 43 (10), 3236-3242 (2002).
  27. Feola, A. J., et al. Deformation of the Lamina Cribrosa and Optic Nerve Due to Changes in Cerebrospinal Fluid Pressure. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 58 (4), 2070-2078 (2017).
  28. Koeberle, P. D., Bahr, M. Growth and guidance cues for regenerating axons: where have they gone. Journal of Neurobiology. 59 (1), 162-180 (2004).
  29. Kermer, P., Klocker, N., Bahr, M. Neuronal death after brain injury. Models, mechanisms, and therapeutic strategies in vivo. Cell and Tissue Research. 298 (3), 383-395 (1999).
  30. Koeberle, P. D., Gauldie, J., Ball, A. K. Effects of adenoviral-mediated gene transfer of interleukin-10, interleukin-4, and transforming growth factor-beta on the survival of axotomized retinal ganglion cells. 神经科学. 125 (4), 903-920 (2004).
  31. Kipnis, J., et al. Neuronal survival after CNS insult is determined by a genetically encoded autoimmune response. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 21 (13), 4564-4571 (2001).
  32. Isenmann, S., Wahl, C., Krajewski, S., Reed, J. C., Bahr, M. Up-regulation of Bax protein in degenerating retinal ganglion cells precedes apoptotic cell death after optic nerve lesion in the rat. The European Journal of Neuroscience. 9 (8), 1763-1772 (1997).
  33. Kermer, P., et al. Caspase-9: involvement in secondary death of axotomized rat retinal ganglion cells in vivo. Brain research. Molecular Brain Research. 85 (1-2), 144-150 (2000).
  34. Kermer, P., Klocker, N., Labes, M., Bahr, M. Inhibition of CPP32-like proteases rescues axotomized retinal ganglion cells from secondary cell death in vivo. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 18 (12), 4656-4662 (1998).
  35. Kikuchi, M., Tenneti, L., Lipton, S. A. Role of p38 mitogen-activated protein kinase in axotomy-induced apoptosis of rat retinal ganglion cells. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 20 (13), 5037-5044 (2000).
  36. Barron, K. D., Dentinger, M. P., Krohel, G., Easton, S. K., Mankes, R. Qualitative and quantitative ultrastructural observations on retinal ganglion cell layer of rat after intraorbital optic nerve crush. Journal of Neurocytology. 15 (3), 345-362 (1986).
  37. Misantone, L. J., Gershenbaum, M., Murray, M. Viability of retinal ganglion cells after optic nerve crush in adult rats. Journal of Neurocytology. 13 (3), 449-465 (1984).
  38. Bahr, M. Live or let die – retinal ganglion cell death and survival during development and in the lesioned adult CNS. Trends in Neurosciences. 23 (10), 483-490 (2000).
  39. Klocker, N., Zerfowski, M., Gellrich, N. C., Bahr, M. Morphological and functional analysis of an incomplete CNS fiber tract lesion: graded crush of the rat optic nerve. Journal of Neuroscience Methods. 110 (12), 147-153 (2001).
  40. Del Amo, E. M., et al. Pharmacokinetic aspects of retinal drug delivery. Progress in Retinal and Eye Research. 57, 134-185 (2017).
  41. Rousou, C., et al. A technical protocol for an experimental ex vivo model using arterially perfused porcine eyes. Experimental Eye Research. 181, 171-177 (2019).
  42. Vézina, M. . Assessing Ocular Toxicology in Laboratory Animals. , 1-21 (2012).
  43. de Boo, J., Hendriksen, C. Reduction strategies in animal research: a review of scientific approaches at the intra-experimental, supra-experimental and extra-experimental levels. Alternatives to Laboratory Animals. 33 (4), 369-377 (2005).
  44. Kirk, R. G. W. Recovering The Principles of Humane Experimental Technique: The 3Rs and the Human Essence of Animal Research. Science, Technology, & Human Values. 43 (4), 622-648 (2018).
  45. Burden, N., Chapman, K., Sewell, F., Robinson, V. Pioneering better science through the 3Rs: an introduction to the national centre for the replacement, refinement, and reduction of animals in research (NC3Rs). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (2), 198-208 (2015).
  46. Singh, J. The national centre for the replacement, refinement, and reduction of animals in research. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 3 (1), 87-89 (2012).
  47. White, K., et al. Effect of Postmortem Interval and Years in Storage on RNA Quality of Tissue at a Repository of the NIH NeuroBioBank. Biopreservation and Biobanking. 16 (2), 148-157 (2018).
  48. Ervin, J. F., et al. Postmortem delay has minimal effect on brain RNA integrity. Journal of Neuropathology & Experimental Neurology. 66 (12), 1093-1099 (2007).
  49. Heinrich, M., Matt, K., Lutz-Bonengel, S., Schmidt, U. Successful RNA extraction from various human postmortem tissues. International Journal of Legal Medicine. 121 (2), 136-142 (2007).
  50. Johnson, D. H., Tschumper, R. C. Human trabecular meshwork organ culture. A new method. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 28 (6), 945-953 (1987).
  51. Gottanka, J., Chan, D., Eichhorn, M., Lutjen-Drecoll, E., Ethier, C. R. Effects of TGF-beta2 in perfused human eyes. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 45 (1), 153-158 (2004).
  52. Pang, I. H., McCartney, M. D., Steely, H. T., Clark, A. F. Human ocular perfusion organ culture: a versatile ex vivo model for glaucoma research. Journal of Glaucoma. 9 (6), 468-479 (2000).
  53. Aryee, M. J., Gutierrez-Pabello, J. A., Kramnik, I., Maiti, T., Quackenbush, J. An improved empirical bayes approach to estimating differential gene expression in microarray time-course data: BETR (Bayesian Estimation of Temporal Regulation). BMC Bioinformatics. 10, 409 (2009).
  54. Feola, A. J., et al. Finite Element Modeling of Factors Influencing Optic Nerve Head Deformation Due to Intracranial Pressure. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 57 (4), 1901-1911 (2016).
  55. Downs, J. C. Optic nerve head biomechanics in aging and disease. Experimental Eye Research. 133, 19-29 (2015).
  56. Downs, J. C., Roberts, M. D., Burgoyne, C. F. Mechanical environment of the optic nerve head in glaucoma. Optometry and Vision Science. 85 (6), 425-435 (2008).
  57. Downs, J. C., et al. Viscoelastic characterization of peripapillary sclera: material properties by quadrant in rabbit and monkey eyes. Journal of Biomechanical Engineering. 125 (1), 124-131 (2003).
  58. Wagner, A. H., et al. Exon-level expression profiling of ocular tissues. Experimental Eye Research. 111, 105-111 (2013).
  59. Pels, E., Beele, H., Claerhout, I. Eye bank issues: II. Preservation techniques: warm versus cold storage. International Ophthalmology. 28 (3), 155-163 (2008).
  60. Reinhard, K., et al. Hypothermia Promotes Survival of Ischemic Retinal Ganglion Cells. Investigative Ophthalmology, Visual Science. 57 (2), 658-663 (2016).
check_url/cn/61006?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sharma, T. P., Curry, S. M., Lohawala, H., McDowell, C. Translaminar Autonomous System Model for the Modulation of Intraocular and Intracranial Pressure in Human Donor Posterior Segments. J. Vis. Exp. (158), e61006, doi:10.3791/61006 (2020).

View Video