Summary

혈관 을 위한 신장 오르가노이드 및 Organotypic 문화의 최적화, 확장된 발달 및 향상한 현미경 검사법 화상 진찰

Published: March 28, 2020
doi:

Summary

이 작품은 장기 발달을 연구하기위한 두 가지 방법, 배양 배아 장기 및 오르가노이드의 혈관 을 허용하는 조류 배아에서 융모난성 막 (CAM)에 개선 된 이종이식 설정및 새로운 고정 z 방향을 설명합니다. 고해상도 시간 경과 공초점 이미징을 허용하는 수정 된 실험 조건을 가진 장기 배양 방법.

Abstract

배아 성 신장 organotypic 문화, 특히 다능성 줄기 세포 유래 신장 오르가노이드는 발달 과정을 따르고 신장 질환을 모델링하기위한 훌륭한 도구입니다. 그러나, 모델은 혈관화 및 기능의 부족에 의해 제한된다. 이를 해결하기 위해, 조류 배아의 융모란투막(CAM)에 세포 및 조직을 이식하는 방법에 대한 개선된 프로토콜이 개발되어 혈관을 혈관화하고 혈류의 회복을 얻었다. 접목은 샘플을 CAM에 고정하고 접목을 건조로부터 보호하는 배양 배지를 공급하는 맞춤형 미니 저장소로 오버레이됩니다. 개선된 배양 방법은 이종이식을 최대 9일 동안 자랄 수 있게 합니다. 원고는 또한 이전에 간행된 고정 Z 방향 (FiZD) 방법을 사용하여 신장 오르가노이드 및 orgnotnotypic 문화의 장기 공초점 화상 진찰을 위한 최적 조건을 제공하는 방법을 기술합니다. 이 방법은 유리 커버슬립과 멤브레인 사이에 배아 장기 또는 오르가노이드를 다량의 배지로 부드럽게 압축하고 최대 12일 동안 이미징을 위한 우수한 조건을 제공합니다. 함께, 이 방법은 향상한 공초점 화상 진찰을 가진 신장 오르가노이드 및 organotypic 신장 문화에 혈관화 그리고 혈류량을 허용합니다. 여기에 설명 된 방법은 생체 내 신장의 기본 및 적용 기능을 연구하는 데 매우 유용합니다. 두 방법 모두 다양한 유형의 조직 및 오르가노이드에 적용 가능합니다.

Introduction

배아 신장의 오르가노티픽 배양은 수십 년 전신발생을연구하는 중요한 모델이 되었다1,2,,3. 신장 오르가노이드는 건강하고 병에 걸린 신장의 발달을 연구하기위한 고급 모델 시스템을 나타냅니다4. 그러나 두 방법의 주요 단점은 두 방법 모두 신장의 주요 기능인 혈액 여과를 다시 요약하지 않는다는 것입니다. 네프론과 신장 혈관 구조는 생체 내 발달의 초기 단계와 유사하게 신장 오르가노이드 및 organotypic 문화에서 개발; 그러나, 시험관내에서 형성된 사구체는 avascular5. 생체내 배아 신장 및 신장 오르가노이드의 혈관화는 생체내 조건 하에서만 이식 실험에서 이전에 입증되었다. 예를 들어, 마우스 신장 캡슐 하에 인간 다능성 줄기 세포 유래 신장 오르가노이드의 이식은 기능적 단계6에오르가노이드에서 네프론의 발달을 허용한다.

순전히 생체외 배양과 생체 내 이식 방법 사이의 중간 접근법은 조류 배아의 CAM에 대한 이종이식이다. 그대로 마우스 신장 프리모르디아의 혈관화는 이전에 이 시스템을 사용하여 입증되었다7,,8. 그러나, 또한, 이종이이식된 뮤린 신장에서의 신장 혈관구조는 이식편9가아닌 숙주 내피로부터 유래된 것으로 나타났다. 이러한 관찰은 실험 조건이 공여자 유래 내피 세포의 생존을 위해 허용되지 않기 때문에 신장 혈관구조의 개발을 연구하기 위해 배아 신장의 키메라(조류-포유류) 모델의 잠재력을 현저히 감소시켰습니다.

이 프로토콜의 첫 번째 부분에서 제시 조류 계란의 CAM에 마우스 배아 신장의 재배에 대 한 향상 된 방법, organotypic 문화와 이종 이식의 미세 환경 조건을 결합. 이전 방법의 주요 개선은 마우스 배아 신장과 신장 오르가노이드를 CAM에 직접 배치하는 대신 이식 된 조직을 공급하는 배양 배지로 채워진 투과성 미니 저장소로 겹쳐져 있다는 것입니다. 영양분과 함께 건조로부터 보호합니다. 실험의 성공률은 크게 증가하고 기증자 유래 혈관 구조의 개발을위한 조건이 향상됩니다. 이 방법을 이방법에서 이방법 으로 이식 배양하는 것은 공여자 신장으로부터 내인성 내피 세포로 구성된 사구체 혈관구조의 발달을 초래한다.

세포 형태 형성의 상세한 분석은 신장 문화 모형의 또 다른 중요한 응용입니다. 신장 배양의 타임랩스 이미지 획득의 이전에 보고된 방법은 배아 신장의 전반적인 형태 및 패터닝의 분석에만 충분하지만, 개별세포(10)를추적하는 것은 아니다. 최근, 신장 오르가노이드 및 오르노티픽 배양의 고해상도 공초점 3D 타임랩스 영상을 겨냥한 새로운 고정 Z-Direction(FiZD) 방법을11개기하였다. 이 방법에서, 오르가노이드와 배아 기관은 샘플의 두께가 70 μm에 도달 할 때까지 맞춤형 설계 플레이트에 트랜스 웰 삽입의 유리 커버 슬립과 투과성 멤브레인 사이에 부드럽게 압축되어 이미징을위한 최적의 광학 조건을 제공합니다. 방법의 두 번째 부분에서는, 장기 오르가노이드 화상 진찰을 위한 사용자 정의 디자인한 격판덮개 및 FiZD 실험의 설치를 위한 상세한 프로토콜이 기술됩니다.

Protocol

동물 관리 및 절차는 실험실 동물의 사용을위한 핀란드 의 국가 법률, 실험 및 기타 과학적 목적으로 사용되는 척추 동물 보호를위한 유럽 협약 (ETS 123), EU 지침 86/609 / EEC에 따라 시행되었습니다. 1. 닭 CAM에 마우스 배아 신장 및 신장 오르가노이드의 재배를위한 미니 저수지의 제조 및 이종이식 실험을 설정 6웰 또는 12웰 플레이트용으로 설계된 트랜스웰 세포 배양 인?…

Representative Results

여기에 제시된 CAM 배양 프로토콜은 닭 CAM에 대한 이종이식의 결과로 신장 오르가노이드 및 배아 신장의 고효율 혈관을 가능하게하였다(그림 1, 영화 1). 배양 배지를 함유한 미니저수지는 기증자 조직에 영양분을 공급하고 적절한 혈관을 지정하기 전의 기간 동안 건조로부터 보호하였다. 이 방법은 기증자 유래 내피 세포가 성장하기 위한 관대한 조건을 제공했?…

Discussion

2개의 상세한 프로토콜은 고전적인 신장 organotypic 문화 방법을 구체화하고, 전 생체 내 배아 신장 및 오르가노이드의 혈관 세포화, 확장된 발달 및 최적 4D (즉, 3D 심상 및 시간) 화상 진찰을 가능하게 합니다 제시됩니다. 이 섹션에서는 메서드의 중요한 단계를 중대하고 문제 해결에 대해 설명합니다.

다른 CAM 배양 방법과 이 개선된 치킨 CAM 배양 방법의 유의한 차이점은 CAM에 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 수오멘 아카테미아 (핀란드 아카데미)에 의해 재정적으로 지원되었다 (206038, 121647, 250900, 260056; 우수 교부금 센터 2012-2017 251314), Munuaissätiö – 핀란드 신장 및 간 협회, 시그리드 주셀리우크센 Sätiö, 빅토리아스티프텔센, 핀란드의 스웨덴 문화 재단, 노보 노디스크, Syöpäjärjestöt (핀란드 암 학회), 유럽 공동체의 일곱 번째 프레임 워크 프로그램 (FP7/2007-2013; FP7-HEALTH-F5-2012-혁신-1 EURenOmics 305608), 및 H2020 마리 Sklodowska-Curie 혁신적인 행동 “6” RE2. 저자는 파울라 하이퍼스, 요한나 케콜라티-리아스, 하넬 레크만에게 기술 지원을 해주셔서 감사합니다.

그림 3, 4 및 무비 2는 개발의허가를 받아 재인쇄됩니다.

Materials

Adjustable Spade Drill Bit Bosch 2609255277 For drilling 20 mm diameter holes
Automatic Egg Turner OLBA B.V., Netherlands AT-42 For incubation of eggs before ex ovo setup.
Cell Incubator Panasonic 13090543 Temperature set at 37° C, 90% humidity, 5% CO2
Cell Incubator SANYO 10070347 Chicken CAM-culture incubator. Temperature set at 37° C, 90% humidity, 5% CO2
Cellstar 6-well Plate Greiner M9062 16 mm depth of wells to match with the inserts
Circular Saw Blade for Dremel Rotary Tool Dremel SC690
Confocal Microscope Zeiss LSM780
Corning Transwell Multiple Well Plate with Permeable Polycarbonate Membrane Inserts Corning 10301031 For 6-well plates. 40 µm pore size
Countersink Drill Bit Craftomat, Bauhaus 22377902 For polishing (20.5 mm, 1/4", HSS)
Disposable Glass Capillary Tube Blaubrand 7087 33
Disposable Scalpel Swann-Morton 0501
Dissecting Microscope Olympus SZ61
Drilling Machine Bosch GSR 18 V-EC Professional
Dulbecco's Modified Eagle's Medium Sigma D777 High glucose
Egg Incubator Compact S84 Grumbach, Germany 8012 For incubation of eggs before ex ovo setup. Temperature set at 38° C with relative humidity set above 60%
Ethanol (70%) VWR
Fertilized Eggs Haaviston Siitoskanala, Panelia, Finland Hy-Line White and Nick Chick
Fetal Bovine Serum HyClone SH3007003HI Thermo Scientific
Forceps DUMONT #5 Dumont #5SF
Glass Coverslips Menzel-Gläser Menzel BBAD02200220#A1TBCMNZ#0## 22×22 mm
Histoacryl Glue Braun 1050052
Matrigel Corning 356230
On-stage Incubator Okolab Boldline, custom made
PBS -/- Corning 20-031-CV
PBS +/+ Biowest X0520-500 Washing the mini reservoirs.
Penicillin and Streptomycin Sigma P4333
Polystyrene Beads Corpuscular 1000263-10 70 µm in diameter
Rotary Multi Tool System Dremel 4000
Soldering Iron Weller TCP S Heated glass capillary can also be used
Thincert 12-well Cell Culture Inserts With 0.4 µm-pore Polystyrene Membrane Greiner Bio-One 665641
Thincert 6-well Cell Culture Inserts With 0.4 µm-pore Polystyrene Membrane Greiner Bio-One 657610

References

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Kaisto, S., Saarela, U., Dönges, L., Raykhel, I., Skovorodkin, I., Vainio, S. J. Optimization of Renal Organoid and Organotypic Culture for Vascularization, Extended Development, and Improved Microscopy Imaging. J. Vis. Exp. (157), e60995, doi:10.3791/60995 (2020).

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