Bu protokol, 30 gün boyunca kültürlü fare geç fetal bağırsak organoidleri kullanarak in vitro emzirme–weaning geçiş taklit nasıl açıklanır.
Emzirme döneminin sonunda, birçok memeli türü katı gıda sindirmek için yeteneği ile ilişkili bağırsak epitel büyük değişikliklere uğrar. Bu süreç emzirme-evlenmemiş geçiş olarak adlandırılır ve metabolik ve morfolojik ayarlamalarla el ele giden erişkin epitel ile neonatal epitelin değiştirilmesiyle sonuçlanır. Bu karmaşık gelişimsel değişiklikler bağırsak epitel hücrelerine içsel bir genetik programın sonucudur ama bir dereceye kadar dışsal faktörlerle modüle edilebilir. Geç fetal dönemden itibaren fare primer intestinal epitel hücrelerinin uzun süreli kültürü, in vitro emzirme-kesilen geçiş recapitulates. Burada, fare fetal intestinal organoid kültür için ayrıntılı bir protokol en iyi in vitro bu süreci modellemek için uygun açıklar. Biz zaman içinde emzirme–keserek geçiş ile ilişkili bağırsak fonksiyonlarının değişimini izlemek için tasarlanmış birkaç yararlı tahliller açıklar. Ayrıca, biz in vivo emzirme–weaning geçiş etkilemeyeteneğine sahip bir dışsal faktör bir örnek, in vitro emzirme–weaning geçiş zamanlaması modüle bir temsili olarak. Bu in vitro yaklaşım emzirme-evlenmemiş geçiş moleküler mekanizmaları yanı sıra bu sürecin modülatörleri çalışma için kullanılabilir. Daha da önemlisi, araştırmada hayvan etiği açısından, bu in vitro model ile in vivo modellerinin değiştirilmesi, hayvan deneylerinin iyileştirilmesine ve muhtemelen bağırsak olgunlaşma süreçlerini incelemek için hayvanların kullanımının azaltılmasına katkıda bulunmaktadır.
Fareler ve erkekler de dahil olmak üzere birçok memeli türünde, yenidoğan bağırsağı tamamen olgun bağırsak epitelinden farklı çeşitli özelliklere sahiptir. Bu özellikler yenidoğan enterositlerin yüksek yağ ve düşük karbonhidrat içeren sütü sindirmesini ve emmesini kolaylaştırır ve büyük karbonhidrat olarak laktoz içerir. Yenidoğan intestinal epitel hücrelerinin fırça sınırı disaccharidase laktaz-phlorizin hydrolase (Lct)1 süt disaccharide laktoz sindirmek için ifade. Emzirme döneminden sonra enterositler kompleks karbonhidratlar açısından zengin ve yağ oranı düşük katı gıdaları sindirmek için uyum sağlarlar. Bu katı gıda mevcut daha karmaşık karbonhidratsindirebilirsiniz lakrasaz-izomaltase (Sis) ve trehalase (Treh), fırça sınır disaccharidase ifade bir anahtar ile kendini gösterir2. Başka bir metabolik anahtar süt arginin düşük konsantrasyonu ile ilgilidir. Arginin ihtiyacını sağlamak için, neonatal enterositler arginin biyosentez, argininosuccinate synthase-1 (Ass1), arginin insinin sentezlemek için enzim sınırlayıcı hızı ifade3. Buna karşılık, yetişkin enterositler argaz 2 (Arg2), katı gıdalarda bol olan katabolize arginin yeteneğine sahip bir enzim ifade. Ayrıca, neonatal intestinal epitel immünglobulinler için neonatal Fc reseptörü ifade eder (FcRn), hangi dolaşımiçine anne IgG emilimini aracılık 4. FcRn ifadesi emzirme—weaninggeçiş5 sırasında önemli ölçüde azalır. Farelerde Paneth hücrelerinin olgunlaşması doğum sonrası, tesadüfen mahzenlerin oluşumu ve olgunlaşması ile oluşur ve antimikrobiyal peptidlerin lizozom (Lyz) ve defensins6ekspresyonu ile karakterizedir.
Tüm bu değişiklikler emzirme—kesecik geçiş bir parçasıdır, farelerde yaş bir ay doğumdan sonra yavaş yavaş meydana gelen bir süreç, bağırsak epitel olgun yetişkin durumuna ulaştığında. Emzirme–kesesel geçiş özünde düzenlenir ve gelişimsel bağırsak tüpü nde ayarlanır. Transkripsiyon faktörü B lenfosit kaynaklı olgunlaşma protein-1 (Blimp-1) bu içsel olgunlaşma sürecinde önemli bir rol oynar7. Blimp-1 neonatal epitel ile yüksek oranda ifade edilirken, emzirme-evrme geçişi sırasında ekspresyonu azalır ve kaybolur ve bu nedenle neonatal intestinal epitelin güvenilir bir belirteci olarak kullanılabilir. İçsel bir süreç olmasına rağmen, emzirme–kesilme geçiş dış faktörler tarafından modüle edilebilir. Örneğin, kortizol sentetik analog, deksametazon, in vivo bağırsak olgunlaşmahızlandırmak için bilinmektedir8,9.
Mevcut in vitro modeller emzirme–evlendirme geçiş de dahil olmak üzere bağırsak epitelyal olgunlaşma çalışma için kullanılan, yetişkin epitel hücre hatları ve / veya yetişkin bağırsak epitel özellikleri taşıyan yetişkin organoidler kullanır. Biz son zamanlarda geç fetal bağırsak olgun izole primer bağırsak epitel hücreleri olgun ve organoidler10olarak in vitro büyürken emzirme-weaning geçiş recapitulate göstermiştir. Ayrıca bu bağırsak olgunlaşma sürecinin in vitro olarak in vivo ile aynı hızda gerçekleştiğini gösterdik. Son olarak, in vivo çalışmalar için açıklanan aynı şekilde olgunlaşma sürecini hızlandırmak için deksametazon kullandı.
Burada, fare geç fetal bağırsak organoidlerinin izolasyonu ve kültürü için kesin bir protokol uyguluyoruz. Biz uzun süreli organoid kültür ve yöntemleri in vitro emzirme–weaning geçiş izlemek için örnek toplama tercih edilen yolu açıklayın. Bu protokol, bağırsak epitelyal olgunlaşmave modülatörlerinin in vitro çalışmaları için kullanılabilir ve bu sürecin modülatörleri daha yüksek iş veri, veri artan kalite ve çeviri değeri ve hayvan kullanımının azaltılması ile sonuçlanır.
Bu protokol, geç fetal intestinal organoidlerin uzun süre emzirme-kesecik li geçişini taklit etmek için tüpbebekte olduğunu açıklar. Olgunlaşma süreci vivo hızı eşittir ve kültürde bir ay sonra tamamlanır. Kantitatif RNA ve protein teknikleri kullanılarak bu kültürün downstream analizi ayrıntılı dır.
Bu protokolde E18-E20 fare embriyolarından birincil bağırsak hücreleri kullanılmaktadır. Bu protokol için organoid oluşturmak için kullanılan birincil fare hücrelerinin gelişim evresi özellikle önemlidir. Daha önceki gelişimevrelerinin kullanılması, yetişkin organoidlere sınırlı geçiş ile uzun bir süre boyunca kendi spesifik fetal gen ekspresyonunu koruyan bağırsak spheroidlerinin neslinin oluşmasına neden olacaktır15,16. Sadece geç fetal evre spheroidler in vitro10erişkin organoidlere geçiş yeteneğine sahiptir. Bağırsak olgunlaşması üzerinde dışsal faktörlerin etkisi açısından fırsat penceresini maksimize etmek için, geç fetal aşamadan bağırsaklar tavsiye edilir ve mikroplar ve anne sütüne maruz kalmış doğan yavrubağırsaklar değil. Bu bazı bakteri metabolitleri ve süt bileşenleri olgunlaşma sürecinin değiştirici olarak hareket edebilir bildirilir17.
Doğumdan yetişkinliğe kadar tüm olgunlaşmayı incelemek için kültürü bir ay boyunca korumak için yeterli miktarda hücre elde etmek için, downstream analizleri için numuneler toplarken, 6-8 embriyodan bağırsaklar başlangıç malzemesi olarak kullanılmalıdır. Kültürü oluşturmak için aynı gelişim aşamasındaki embriyoların kullanılması tercih edilir. Gelişim evresindeki küçük farklılıklar olgunlaşma genlerinin ekspresyonunu etkileyebildiği için farklı çöplerin biraraya konması önermiyoruz.
Burada açıklanan protokol, proksimal ve distal ince bağırsaktan organoid neslinbağırsakların farklı segmentlerinin gelişimsel özelliklerini korumak için hesaplanmaktadır. Alternatif olarak, tüm bağırsak belirli belirteçlerin artış / azalış ifade ile ilgili genel olgunlaşma araştırmak için kullanılabilir. İkinci durumda, daha az embriyo kültür başlatmak için bağırsak hücrelerini izole etmek için kullanılabilir.
Bu protokol üç boyutlu organoid kültürler kullanılarak geliştirilmiştir. Organoidler kültürde dinamik bir büyüme den geçerken, geçiş ten sonra aynı anda downstream analizleri için numune toplamak önemlidir. Bu protokolde, organoidlerin sağlam tomurcuklar içerdiği ve hücre ölümü içermeyen iki bölünme arasındaki orta zamanı temsil ettiği için, geçişten sonraki 3. Geçişten sonra alternatif bir zaman noktası kullanılabilir, ancak tüm deneme sırasında tutarlı olmalıdır. Biz bir geçişten sonra fazla 7 gün boyunca büyüyen organoidler önermiyoruz, organoid lümen ölüm hücrelerinin artması sonuçları etkileyebilir gibi.
Deneylerimizde deksametazon’ u vivo9,18′de bağırsak olgunlaşmasını hızlandırmak için literatürde gösterilen ve en iyi şekilde incelenen dışsal bir faktöre örnek olarak kullandık. Deksametazon etkilerini hem genomik hem de genomik olmayan yollarla uygular. Örneğin, genomik regülasyon düzeyinde, Sis mRNA düzeylerinde erken bir artış görülebilir. Genomik olmayan düzeyde, trehalaz gibi sindirim enzimlerinin aktivitesinde değişiklikler gözlemliyoruz. Her ikisi de sukrase gen aktivasyonu ve in vivo19gözlenen bağırsak fırça sınır enzimleri üzerinde non-genomic aktive etkisi deksametazonun açıklanan belirli yönleri ile uygun bulunmaktadır. Aslında, sentetik glukokortikoidler gibi dışsal faktörler, organoid kültürde emzirme–sütüngeçiş bazı yönlerini modüle edebilirsiniz, benzer in vivo açıklanan benzer, daha fazla bağırsak olgunlaşma modülatörleri farklı tür araştırılması için bir model olarak fare fetal bağırsak organoidler kurar.
İnsan bağırsak epitelinin morfolojik olgunlaşması 22 haftalık gebelik evresinde rahimde tamamlanmış olsa da, bağırsak bariyeri fonksiyonu çocukluk çağına kadar beslenme tipi, mikrobiyota gelişimi ve bağışıklık yanıtı. Bu gelişim evrelerinde insan dokularının sınırlı bulunması nedeniyle, in vitro murine modelinin çeviri değeri, bağırsak olgunlaşmasını modüle edebilen faktörlerin yüksek iş yapma ekranlarının emziren memeliler.
Daha da önemlisi, araştırmada hayvan etiği açısından, bu model hayvanlar üzerinde yapılan müdahaleleri içermediği için hayvan deneylerinin iyileştirilmesine katkıda bulunabilir. Hayvan sayısı, araştırma sorularını n içinizde birden fazla bileşenin test edilmesine olanak sağlayacak bir veya iki zaman dilimine yeniden tasarlayarak daha da azaltılabilir.
The authors have nothing to disclose.
Hiçbiri.
Advanced DMEM/F12 1:1 | Invitrogen | 12634-028 | |
Arginase Activity Assay Kit | Sigma-Aldrich | MAK112-1KT | |
B27 supplement | Invitrogen | 17504-044 | 100x |
BCA protein assay Kit | Fisher | 10741395 | |
Cell lysis buffer | Cell Signaling Technology | 9803S | |
Cell Recovery Solution | Corning B.V. | 354253 | |
Cell strainer 70µM | BD/VWR | 734-0003 | |
Dexamethasone | Sigma-Aldrich | D4902 | |
EDTA | Merck | 10,84,18,250 | EDTA Titriplex III |
EGF | Invitrogen | PMG8045 | |
Ethanol | Merck | 1,00,98,31,000 | |
Glucose solution | Sigma-Aldrich | G6918 | |
Glutamax | Invitrogen | 35050-038 | 100x |
Hepes | Invitrogen | 15630-056 | 1M |
Isolate II RNA Mini Kit | Bioline | BIO-52073 | |
Lactose | Sigma-Aldrich | L3625 | a-Lactose monohydrate |
Maleic Buffer | Sigma-Aldrich | M0375 | Maleic acid |
Maltose | Sigma-Aldrich | M5885 | D-(+)-Maltose monohydrate >99% |
Matrigel | Corning B.V. | 356231 | Growth Factor Reduced Basement Membrane Matrix |
Millipore water | N.A. | ||
N2 supplement | Invitrogen | 17502-048 | 100x |
n-Acetylcystein | Sigma-Aldrich | A9165 | |
Noggin-conditioned media | Homemade | ||
o-dianisidine | Sigma-Aldrich | 191248 | |
PBS | Homemade | ||
Penicillin/Streptomycin | Invitrogen | 15140-122 | 0,2 U/mL |
PGO-enzyme preparation | Sigma-Aldrich | P-7119-10CAP | capsules with Peroxidase/ Glucose Oxidase |
p-hydroxymercuribenzoate sodium | Sigma-Aldrich | 55540 | |
Rspondin-conditioned media | Homemade | ||
Sucrose | Sigma-Aldrich | 84097 | |
Trehalose | Sigma-Aldrich | T5251 | D-Trehalose dihydrate |
Tris-HCl Buffer | Homemade | ||
β-mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M3148 |