שיטה זו מתארת את השימוש במודל העכבר R26R-קונפטי (קונפטי) כדי לחקור רקמות מינרליזציה, כיסוי כל הצעדים מאסטרטגיית הרבייה ועד לאפשרות התמונה. כלול הוא פרוטוקול כללי שניתן להחילם על כל הרקמות הרכות ופרוטוקול שהשתנה שניתן להחילם על רקמות מינרליזציה.
תיוג תא בודד בגוף כדי לפקח איזה סוגי תאים זה יכול לתת עלייה ולעקוב אחר הגירה שלה דרך האורגניזם או לקבוע אריכות הימים שלה יכול להיות דרך רבת עוצמה כדי לחשוף מנגנונים של פיתוח רקמות ותחזוקה. אחד הכלים החשובים ביותר הזמינים כעת לניטור תאים בvivo הוא מודל העכבר הקונפטי. מודל קונפטי יכול לשמש לתווית גנטית תאים בודדים בעכברים חיים עם חלבונים פלורסנט שונים באופן ספציפי סוג תא ולפקח על גורלם, כמו גם את גורלם של הצאצאים שלהם לאורך זמן, בתהליך שנקרא מעקב גנטי שבטים או מעקב שושלת שבטים. מודל זה נוצר כמעט לפני עשור, תרם הבנה משופרת של תהליכים ביולוגיים רבים, במיוחד קשור לביולוגיה תא גזע, פיתוח, וחידוש של רקמות מבוגרים. עם זאת, שמירה על אות פלורסנט עד איסוף התמונה ולכידת סימולטני של אותות פלורסנט שונים היא מאתגרת טכנית, במיוחד עבור רקמות מינרליזציה. פרסום זה מתאר פרוטוקול צעד-אחר-צעד לשימוש במודל קונפטי כדי לנתח את הסחוס של לוחית הצמיחה שניתן למרוח על כל רקמה מינרליזציה או לא מינרליזציה.
שיטות משופרות לניטור התנהגות התא רצוי כדי להגביר את היעילות הניסיונית בעת שימוש בדגמי חיות. אחת הגישות האינפורמטיביות ביותר כדי לפקח על התנהגות התא ב vivo הוא מעקב השושלת השבטיים עם זנים מרובי צבעים עכבר הכתב1, כולל בשימוש נרחב R26R-קונפטי (קונפטי) עכבר2. על ידי תיוג גנטי תאים בודדים עם חלבונים פלורסנט ובעקבות תאים אלה לאורך זמן, חוקרים בתחומים רבים השתמשו בעכבר קונפטי כדי לחשוף תובנות להמון של מערכות ביולוגיות שונות.
העכבר קונפטי הוא מערכת מבוססת loxP העיתונאי שבו שילוב של דנ א התלויים של ה-DNA גורם הביטוי הקבוע של אחד מכמה חלבונים פלורסנט אפשרי בצורה סטוכסטית2. אלל R26R-קונפטי כולל את היזם באופן אוביקאני הביע, אשר שוכנת מיד במעלה הזרם שלloxp-מוקףמשניהקלטת 2, אשר רצף פוליאדלציה מסיים שעתוק3, ואחריו ה ברייבוו 2.1 מבנה4 מכאן, שילוב של היצור-מתווך מחדש בו מחילה את הקלטת ניאוRומוביל לייצור של חלבונים פלורסנט מסוימים בהתאם לחלקים של המבנה 2.1 ברייברכיו הם החוצה. תכונה זו הופכת את העכבר קונפטי מאוד להתאמה משום שהוא יכול לשמש כדי למקד את כל האוכלוסייה התאית בעכבר שעבורו זן מסוים של היצור זמין. החצייה של זן ספציפי לרקמה מסוימת עם זן R26R-קונפטי מספק ספציפיות של תיוג. עם זאת, זן היצור צריך גם להיות inducible (g., creert או CreERT2, אשר דורשים כריכת טממוקסיפן כדי לאפשר להם להיכנס לגרעין ולגרום DNA רקומבינציה5) כך תיוג ניתן להשיג בנקודות זמן שצוינו. לפיכך, ניתן לתייג את האוכלוסייה התאית על-ידי הזרקת הצאצאים של התוצאה החיובית/קונפטי עם טממוקסיפן בזמן הרצוי ומעקב לגיל מסוים, כאשר ניתן לאסוף את רקמות הריבית לצורך ניתוח. לאחר עיבוד רקמות, התאים fluorescently המסומנים באופן ישיר ניתן לדמיין במישרין על ידי מיקרוסקופ קונפוקלית כך הצאצא של כל תא בתווית בתחילה ניתן להפריד מן הצאצאים שנוצרו על ידי כל תא תווית אחרת מבוסס על פלורסנט ספציפיים שלהם תוויות, ובכך לאפשר הclonality להיות מוערך (כלומר, מעקב גנטי שבטים).
בשל הגמישות של המודל קונפטי, הוא הוחל ללמוד פיתוח ותחזוקה של רקמות שונות רבות בריאות ומחלות2,6,7,8,9, 10,11. אחת הדרכים הנפוצות להשתמש במודל היא לתייג אוכלוסיה מסוימת של תאים ולקבוע באילו רקמות הם (ו/או צאצאם) תרמו. אחד כזה ממצא באמצעות גישה זו היה כי השן הבוגרת מורכבת של תאים עם מקור גליה6. יישום נוסף של המודל הוא לחקור את תאי גזע הומאוסטזיס. לדוגמה, המודל קונפטי חשף כי תאי גזע נישות בתוך המעי קריפטטים בהדרגה להיות חד שבטיים כי כמה שיבוטים תא גזע דומיננטיים במהלך התחרות בין תאי גזע2. המודל יכול לשמש גם כדי להעריך את התפשטות התאים, אשר שימושי במיוחד עבור הלומדים באופן איטי חלוקת תאים. לדוגמה, היווצרות שבטים בסחוס הפרקולארית12 הוערך, ואת ההשפעות לטווח קצר של היריב קיפוד על צלחת הצמיחה כונדרוציטים בעכברים ישנים חמישה שבועות נחקרו13.
למרות הפשטות היחסית של מודל קונפטי, אות פלורסנט יכול להיות מאתגרת טכנית כדי לשמר עד אוסף התמונות, במיוחד בעת ניתוח רקמות מינרליזציה. כאן, הפרוטוקול מתאר מודל ממוטב להשתמש בעכבר קונפטי עם עצם לאחר הלידה (עד 6 חודשים של גיל), המאפשר חלבונים פלורסנט להיות במישרין דמיינו על ידי מיקרוסקופ קונפוקלית וקד ללא צורך בזיהוי חיסוני. ניתן להחיל פרוטוקול מפושט זה על רקמות שאינן מינרליזציה. יתר על כן, כולל תיאור של כיצד לאחסן את הדגימות כדי לשמר את האות פלורסנט לתקופה ממושכת של לפחות 3 שנים. חלוקה לרמות של הפרוטוקול מוצגת באיור 1.
מודל קונפטי שימש בהרחבה כדי ללמוד רקמות סחוס מינרליזציה12,13,14 כדי לתאר את הפרוטוקול אופטימיזציה. קונפטי עכברים2 עם עותק אחד או שני עותקים של אלל R26R-קונפטי יכול לשמש לרבייה וניסויים. שילוב מחדש של עכברים עם אלל אחד של במחקר ב2.1 לבנות ייתן ארבע תוויות פוטנציאליות: חלבון פלורסנט אדום (rfp, cytoplasmic), חלבון פלורסנט צהוב (yfp, cytoplasmic), חלבון פלורסנט ציאן (CFP, מקומי מקומית), וירוק חלבון פלורסנט (GFP, גרעין-מקומי), ואילו שילוב מחדש בעכברים homozygous קונפטי (כלומר, המכיל שני עותקים של המוח 2.1 לבנות) ייתן 10 פלטי צבע אפשריים (RFP + RFP, rfp + YFP, RFP + CFP, RFP + מעלה, yfp + בfp, yfp + CFP, FP + GFP, CFP + CFP, CFP + GFP, GFP + GFP. עם זאת, בגלל הכריתה DNA והיפוך האירועים מתרחשים בצורה סטוכסטית, שילוב מחדש כדי לייצר GFP מתרחשת רק חלק קטן של תאים, כפי שדווח קודם לכן2, ולכאורה שונה על-ידי סוג תא או קוהיצור בשימוש2, 12,13. מכאן, בהתחשב בהתרחשות נמוכה של אירועים שילוב מחדש המוביל ביטוי GFP, שישה פלטי צבע הם הנפוצים ביותר בעכברים homozygous קונפטי.
שיקול חשוב כאשר תכנון ניסויים עם עכבר קונפטי הוא למצוא זן המתאים של היצור. ראשון, מאז כולל של קונפטי יש מספר אתרי loxP, אירוע אחד שילוב מחדש לא ממנוע השני4. משמעות הדבר היא שאם תא מסומן ומתחלק להפקת שיבוט של צבע אחד, אירוע שילוב חוזר שני באחד מתאי בתו יפיק צבע שונה, ובכך מסווה את הרחבת השבטים האמיתית. Thus, זנים noninducible, שבו האנזים הוא תמיד פעיל אם היזם המתאים פעיל, לא מומלץ. שנית, בזנים מסוימים את הביטוי של היצור recombinase לעתים קרובות מגיע על חשבון של חלבון אנדוסוגני, ובכך ליצור פנוטיפ משלו (למשל, עבור Prg4-GFPCreERT2 נקישה העכבר למתח שבו עכברים הנמל שני האללים של היצורים15), אז עותק אחד של אלל של היצור הוא רצוי. בכל הניסויים המתוארים, עותק אחד של Col2CreERT16 נישא על ידי הזכר או ההורה הנשי כדי ליצור Col2CreERT: הקונפטי עכברים, כמתואר13. לאחר מכן, הספציפיות של קו היצור לסוג התא של עניין היא שיקול חשוב. לדוגמה, Col2CreERT הוא כchondrocyte ספציפי, אבל תוויות מספר אוכלוסיות נפרדות של כונדרוציטים בתוך הסחוס מוקדם לאחר הלידה17. לבסוף, הפעילות של זנים שונים של היצור יכול לשנות במידה ניכרת עם גיל החיות, כמו פעילות אנדוגניים של היזם מנוצל עבור שינויים ביטוי היצור, גם בתאים מאותו סוג (למשל, Prg4-GFPCreERT2, אשר יכול לדרוש הגדלת מספר מינונים של טמוקסיפן כדי לתייג תאי אזור שטחיים כעכברים בגיל15).
מספר התאים שכותרתו ישתקף על ידי כמות טממוקסיפן נתון, אז זה לא תמיד רצוי לתת את המינון המקסימלי, כי הבחנה שיבוטים אחד מהשני עשוי להיות קשה. בגלל הביטוי היצור שונה תחת התקנה של יזמים שונים כמו גם עם הגיל, מינון טמוקסיפן יהיה צורך לכוונן כדי למטב את התיוג. חשוב לציין כי התאים אינם פלורסנט מיד על מפעיל שילוב, כי הזמן נדרש עבור שילוב מחדש להתרחש ואת החלבונים כתוצאה מפלורסנט לצבור מספיק עבור הדמיה. יש צורך במגוון רחב של שעות (בין 24 ל-72 ש ח), שנראה כמושפע מקו היצור, סוג התא וגיל החיות. מאז טמוקסיפן יכול להיות פעיל ביולוגית זמן רב לאחר מינהל18 זה תמיד מומלץ לבדוק ביסודיות את היעילות שילוב מחדש בכל דגם.
במהלך השלב המיקרוסקופיה, עירור החלבונים הפלורסצנט מחייבת חדירת הרקמה באור לייזר. בגלל רקמות שונות יש מאפיינים שונים, אור לייזר עלול לא לחדור 160 יקרומטר חלקים עבים של כל הרקמות. עם זאת, חלקים עבים כאלה ניתן להשתמש עבור סחוס לוחית הצמיחה, כפי שנעשה בשימוש באיור 2, איור 3. שימו לב כי כל מיקרוסקופ שונה, ולא סביר שההגדרות המתוארות (קובץ משלים 1) יפעלו באופן מושלם ללא התאמות קלות. אחד האתגרים העיקריים הוא להבדיל בין חלבונים פלורסנט שונים כדי להבטיח כי אין זיהום מערוץ אחד למשנהו. לדוגמה, האות בערוץ YFP שנגרם על-ידי הזריחה הבאה מ-GFP חופפת בין ערוצי YFP ו-RFP. יש לבדוק בקפידה גם את ערוצי YFP ו-CFP. ניתן לעשות זאת במספר דרכים. ראשית, טווח הפליטה של אורכי גל אור פלורסנט הנרשמים עבור כל חלבון פלורסנט ניתן לצמצם. שנית, כוונון כוח הלייזר בשילוב עם הרווח הדיגיטלי יכול למטב את האות. במחקר זה שלבים אלה היו מספיקים, אבל הם סומכים על אות פלורסנט חזק. משמעות הדבר היא כי בתאוריה, עיבוד רקמות לא יעיל יכול להפחית את הפעילות של חלבונים פלורסנט, או מקור חלש לייזר אור יכול לפגוע הפרדת הערוץ.
אחד היתרונות של העכבר קונפטי הוא שזה יכול להיות משולב עם מספר גדול של זנים מוטאנטים גנטית זמינים כך ההשפעה של גנים ספציפיים על דינמיקה שבטים ניתן ללמוד10,11,12 ,13,14,19,20. אם כי עם כמה הגבלות לדוגמה, שילוב מחדש של אלטלס הקונפטי והגן של הריבית אינו יכול להיות מופרד בעת שימוש במוטציות מבוססות-שושלת שבטים משולבים עם מעקב אחר השושלת. למרות זאת, כגון שילוב אירועים מחדש יכול להיות יעיל10,14,20. לדוגמה, אפשרות זו שימש כדי לחקור את מספר התא מוגבר באזור מנוחה של עכברים בעקבות כונדרולידה הספציפי אבלציה של TSC1 בלוח הצמיחה21 וחשף את הקשר בין השבטים בין תאים אלה לאורך זמן 13. בנוסף, ניתוח שבטים ספציפיים לרקמה באמצעות עכברי קונפטי יכול לשמש עם עכברים שאינם מבוססי loxp מבוסס מוטציה11, ואפשר גם לשלב גישות אלה עם תרופתי8,9 ,13 ו/או מודלים כירורגיים8 כדי לדמיין תגובות שבטים רטבאליות פונקציונלי אחרים. הזדמנויות נוספות עולות כאשר משלבת קונפטי עם תוויות מקטעים עם זיהוי חיסוני של חלבונים אנדוגניים על ידי immunofluorescence. ניתוח כזה מאפשר זיהוי של תאי מעקב והתאמה לשפות אחרות עם סמן ידוע. עם שיטת הקיבוע שתוארה לעיל, ניתן לבצע immunofluorescence ועדיין להמחיש את הקרינה הפלואורסצנטית מחלבונים פלורסנט12,13. עם זאת, בעיתונים שהוזכרו, אחזור אנטיגן לא היה נדרש. שיטות החזרת אנטיגן קשות, כגון רתיחה במאגר ציטראט, מובילה לאובדן מוחלט של מגזרי הקרינה. למרות החלבונים פלורסנט לאחר מכן ניתן להבחין באמצעות נוגדנים22, אובדן של זהות שבטיים יכול להתרחש.
לסיכום, באמצעות מודל קונפטי כדי לתייג תאים ב vivo הוא כלי אינפורמטיבי כדי לנתח את גורלם של תאים אלה לאורך זמן. השיטה המתוארת מספקת דרך מהירה ויעילה להמחיש ישירות ביטוי חלבון פלורסנט ברקמות מינרליזציה.
The authors have nothing to disclose.
אנו מודים לד ר יבגני איבאשקין לקבלת ייעוץ מתודולוגי. עבודה זו נתמכת כספית על ידי המועצה למחקר שוודי (א. ס. ג), הקרן המדעית הרוסית (להעניק #19-15-00241 עולה), מכון Karolinska (A.S.C.), StratRegen קי ו Stiftelsen Konung גוסטב V:s 80-årsfond (A.S.C.), Stiftelsen פרימוראר בארהוסט וסאלוסאפק ברנבארד (P.T.N.), מועצת המלגות הסינית (B.Z.). מיקרוסקופ הקונמוקד מומן על ידי קרן קנוט ואליס ולנברג.
2,2-thiodiethanol | Sigma | MKCF9328 | |
60 mm-long cover slips | Mendel-Gläzer | 220588 | |
Confocal laser scanning microscope | Zeiss | LSM 710 | |
Corn oil | Sigma | C8267 | |
Cryomold (standard) | Sakura | 4557 | |
Cryostat | Thermo | Model: NX70 | |
Disposable cryostat blades | Histolab | 207500014 | Specifically for use with hard tissue |
EDTA | Scharlan | AC0960005P | |
Formaldehyde concentrate | Merck | 8.18708.1000 | |
Glass bottles | Sigma | V7130 | Can be used for tamoxifen dilution and for tissue fixation and processing |
Imaris software | Oxford Instruments | N/A | Image analysis software for 3D reconstruction |
Isoflurane | Zoetis | 11-8162 | |
OCT | Sakura | 102094-104 | |
Pasteur pipette | Sarstedt | 86.1171 | |
PBS | Gibco | 14200075 | |
Sodium hydroxide | Merck | 1.06498.1000 | |
Sucrose | Sigma | S0389 | |
Superfrost UltraPlus slides | Mendel-Gläzer | J3800AMNZ | |
Tamoxifen | Sigma | T5648 | |
Zen2 software | Zeiss | N/A | Freeware for Confocal laser scanning microscopy |