Summary

Chirurgie stéréotaxique pour l'implantation de microélectrodes Arrays dans le Marmoset commun (Callithrix jacchus)

Published: September 29, 2019
doi:

Summary

Ce travail présente un protocole pour effectuer une implantation stéréotaxique et neurochirurgicale des tableaux de microélectrode dans le marmoset commun. Cette méthode permet spécifiquement des enregistrements électrophysiologiques chez les animaux qui se comportent librement, mais peut être facilement adaptée à toute autre intervention neurochirurgicale similaire chez cette espèce (p. ex., canule pour l’administration de médicaments ou électrodes pour la stimulation cérébrale).

Abstract

Les marmosets (Callithrix jacchus) sont de petits primates non humains qui gagnent en popularité dans la recherche biomédicale et préclinique, y compris les neurosciences. Phylogénétiquement, ces animaux sont beaucoup plus proches des humains que des rongeurs. Ils affichent également des comportements complexes, y compris un large éventail de vocalisations et d’interactions sociales. Ici, une procédure neurochirurgicale stéréotaxique efficace pour l’implantation des tableaux d’électrode d’enregistrement dans le marmoset commun est décrite. Ce protocole détaille également les étapes pré- et postopératoires des soins aux animaux qui sont nécessaires pour effectuer avec succès une telle chirurgie. Enfin, ce protocole montre un exemple de potentiel de terrain local et d’enregistrements d’activité de pointe dans un marmoset de comportement libre 1 semaine après l’intervention chirurgicale. Dans l’ensemble, cette méthode offre l’occasion d’étudier la fonction cérébrale dans les marmosets éveillés et se comportant librement. Le même protocole peut être facilement utilisé par les chercheurs travaillant avec d’autres petits primates. En outre, il peut être facilement modifié pour permettre d’autres études nécessitant des implants, tels que la stimulation des électrodes, microinjections, l’implantation d’optrodes ou de canudes guide, ou l’ablation de régions tissulaires distinctes.

Introduction

Les marmosets communs (Callithrix jacchus) sont de plus en plus reconnus comme un organisme modèle important dans de nombreux domaines de recherche, y compris les neurosciences. Ces primates du nouveau monde représentent un modèle animal complémentaire important pour les rongeurs et d’autres primates non humains (PSN), comme le macaque rhésus. Comme les rongeurs, ces animaux sont petits, faciles à manipuler, et relativement économique pour prendre soin et élever1,2,3,4, par rapport aux plus grands PSN. En outre, ces animaux ont une propension au jumelage et à une fécondité élevée par rapport aux autres PSN1,2,3. Un autre avantage de la marmoset a sur de nombreux autres primates est que les outils modernes de biologie moléculaire3,4,5,6,7 et un génome séquencé2 ,3,4,5,8 ont été utilisés pour les modifier génétiquement. Les animaux knock-in utilisant lentivirus5, et knock-out animaux en utilisant des nucléases de zinc-doigt (ZNNs) et la transcription activateur-comme des nucléases effecteurs (TALENS)7, ont donné des animaux fondateurs viables.

Un avantage par rapport aux rongeurs est que les marmosets, en tant que primates, sont phylogénétiquement plus proches des humains3,5,6,9,10,11. Comme les humains, les marmosets sont des animaux diurnes qui dépendent d’un système visuel très développé pour guider une grande partie de leur comportement10. En outre, les marmosets présentent une complexité comportementale, y compris un large éventail de comportements sociaux tels que l’utilisation de différentes vocalisations3, permettant aux chercheurs d’aborder des questions qui ne sont pas possibles chez d’autres espèces. D’un point de vue neuroscientifique, les marmosets ont des cerveaux lissencephaly, contrairement au macaque rhésus plus couramment utilisé9. En outre, les marmosets ont un système nerveux central semblable à l’homme, y compris un cortex préfrontal plus développé9. Ensemble, toutes ces caractéristiques positionnent les marmosets comme un modèle précieux pour étudier le fonctionnement du cerveau dans la santé et la maladie.

Une méthode courante pour étudier la fonction cérébrale consiste à implanter des électrodes dans des endroits anatomiquement spécifiques au moyen de la neurochirurgie stéréotaxique. Cela permet l’enregistrement chronique de l’activité neuronale dans différentes zones cibles chez les animaux éveillés et se comportant librement12,13. La neurochirurgie stéréotaxique est une technique indispensable utilisée dans de nombreux domaines de recherche, car elle permet un ciblage précis des régions neuroanatomiques. Comparé à la littérature de macaque et de rongeur, il y a moins d’études éditées décrivant la neurochirurgie stéréotaxique spécifique au marmoset, et elles tendent à fournir le détail clairsemé des étapes impliquées dans la chirurgie. En outre, ceux qui ont plus de détails se concentrent principalement sur les procédures d’enregistrement de l’électrophysiologie chez les animaux retenus à la tête14,15,16,17.

Afin de faciliter l’adoption plus large des marmosets en tant qu’organisme modèle dans la recherche en neurosciences, la méthode actuelle définit les étapes spécifiques nécessaires à une neurochirurgie stéréotaxique réussie chez cette espèce. En plus de l’implantation de tableaux d’enregistrement, comme indiqué dans la méthode actuelle, la même technique peut être adaptée à de nombreuses autres fins expérimentales, y compris l’implantation d’électrodes stimulantes pour le traitement des maladies18 ou la conduite causale comportement de circuit19; l’implantation de canules de guide pour l’extraction et la quantification des neurotransmetteurs20, injections de réactifs, y compris ceux pour induire des modèlesde maladies 12 ou pour les études de traçage de circuits15; ablation des régions tissulaires discrètes21; implantation d’optrodes pour les études optogénétiques22; implantation de fenêtres optiques pour l’analyse microscopique corticale23; et l’implantation de tableaux électrocorticographiques (ECoG)24. Ainsi, l’objectif global de cette procédure est de décrire les étapes chirurgicales impliquées dans l’implantation de réseaux de microélectrodes pour les enregistrements électrophysiologiques chroniques dans les marmosets se comportant librement.

Protocol

Les expériences sur les animaux ont été réalisées conformément au Guide national des instituts de santé pour les soins et l’utilisation des animaux de laboratoire et approuvées par le Comité d’éthique de l’Institut Santos Dumont (protocole 02/2015AAS). 1. Préparation chirurgicale Fixez chaque tableau d’électrode à un porte-électrode compatible avec le cadre stéréotaxique à utiliser. Connectez un porte-électrode au micromanipulateur stéréotaxique et fixez…

Representative Results

Le but de cette étude était de décrire une procédure neurochirurgicale stéréotaxique pour l’implantation des tableaux de microélectrode pour des enregistrements électrophysiologiques dans le marmoset commun. Une chirurgie typique (de l’induction de l’anesthésie à la récupération de l’anesthésie) durera environ 5 à 7 h, selon le nombre de tableaux implantés. Ici, deux tableaux ont été implantés symétriquement, un dans chaque hémisphère cérébral. Chaque réseau contenait 32 microfils en acier inoxyda…

Discussion

Ce travail fournit une description détaillée des procédures impliquées dans l’implantation de réseaux d’enregistrement de microélectrodes dans le cerveau de marmoset. Ce même protocole peut être facilement utilisé lors de l’implantation d’électrodes, qu’elles soient faites maison ou disponibles dans le commerce, chez d’autres petits primates. En outre, il peut être facilement adapté pour d’autres fins expérimentales qui nécessitent un ciblage précis des structures cérébrales. Par conséquent, ce protocol…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs souhaitent remercier Bernardo Luiz pour son assistance technique au tournage et au montage. Ce travail a été soutenu par l’Institut Santos Dumont (ISD), le Ministère brésilien de l’éducation (MEC) et Coordenaço de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nvel Superior (CAPES).

Materials

Equipments
683 Small Animal Ventilator Harvard Apparatus, Inc. 55-0000
Anesthesia Assembly BRASMED COLIBRI
Barber Clippers Mundial HC-SERIES
Dental Drill Norgen B07-201-M1KG
Homeothermic Heating Pad and Monitor Harvard Apparatus, Inc. 50-7212
Marmoset Stereotaxic Frame Narishige Scientific Instrument Lab SR-6C-HT
Patient Monitor and Pulse Oximeter Bionet Co., Ltd BM3
Stereotaxic Micromanipulator Narishige Scientific Instrument Lab SM-15R
Surgical Microscope Opto SM PLUS IBZ
Instruments
Allis tissue forceps Sklar 36-2275
Alm Retractor, rounded point, 4×4 teeth Rhosse RH11078
Angled McPherson Forceps Oftalmologiabr 11301A
Curved Surgial Scissors Harvard Apparatus, Inc. 72-8422
Curved Tissue Forceps Sklar 47-1186
Delicate Dissection forceps WPI WP5015
Dental Drill Bit Microdont ISO.806.314.001.524.010
Essring Tissue Forceps Sklar 19-2460
FG 1/4 Dental Drill Bit Microdont ISO.700.314.001.006.005
Halsey Needle Holder WPI 15926-G
Halstead Mosquito forceps WPI 503724-12
Hemostatic Forceps, Straight Sklar 17-1260
Jewler Forceps Sklar 66-7436
McPherson-Vannas Optathalmic microscissor, 3 mm point Argos Instrumental ARGOS-4004
Pereosteal Raspatory Golgran 38-1
Scalpal Handle Harvard Apparatus, Inc. 72-8354
Screwdrivers Eurotool SCR-830.00
Sodering Iron Hikari 21K006
Surgical Scissor Harvard Apparatus, Inc. 72-8400
Toothed forceps WPI 501266-G
Disposables/Single Use
1 ml sterile syringe with 26 G needle Descarpack 7898283812785
130 cm x 140 cm surgical field, presterilized ProtDesc 7898467276344
24G Needle, presterilized Descarpack 7898283812846
50 cm x 50 cm surgical field, presterilized Esterili-med 110100236
Cotton Tipped Probes, Presterilized Jiangsu Suyun Medical Materials Co. LTD 23007
Cotton tipped Qutips Higie Topp 7898095296063
Electrode Array Home made
Endotracheal tube without cuff, internal diameter 2.0 mm, outer diameter 2.9 mm Solidor 7898913077201
Tinned copper wire, 0.15 mm diameter
M1.4×3 Stainless steel screws USMICROSCREW M14-30M-SS-P
Medical Tape Missner 7896544910102
Nylon surgical sutures Shalon N540CTI25
Scalpal Blade, presterilized AdvantiVe 1037
solder Kester SN63PB37
Sterile Saline 0.9% Isofarma 7898361700041
Sterile Surgical Gloves Maxitex 7898949349051
Sterile Surgical Gown ProtDesc 7898467281208
Surgical Gauze, 15 cm x 26 cm presterilized Héika 7898488470315
Gelfoam Pfizer
Drugs/Chemicals
0.25mg/ml Atropine Isofarma
10% Lidocaine Spray Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda. 7896676405644
2.5% Enrofloxacino veterinary antibiotic Chemitec 0137-02
Dexametasona Veterinary Anti inflammatory MSD R06177091A-00-15
Hydrogen Peroxide Farmax 7896902211537
Isoflourane BioChimico 7897406113068
Jet Acrylic polymerization solution Artigos Odontológicos Clássico
Jet Auto Polymerizing Acrylic Artigos Odontológicos Clássico
Ketamine 10% Syntec
Lidocaine and Phenylephrine 1.8 ml local anesthetic SS White 7892525041049
Povidone-Iodine solutiom Farmax 7896902234093
Riohex 2% surgical Soap Rioquímica 7897780209418
Silver Paint SPI Supplies 05002-AB
Tramadol chloride 50 mg/ml União Química 7896006245452
Refresh gel (polyacrylic acid) Allergan

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Budoff, S. A., Rodrigues Neto, J. F., Arboés, V., Nascimento, M. S. L., Kunicki, C. B., Araújo, M. F. P. d. Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset (Callithrix jacchus). J. Vis. Exp. (151), e60240, doi:10.3791/60240 (2019).

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