Este método envolve a utilização de dados diagnósticos clínicos para pacientes do cancro da próstata a fim guiar procedimentos da amostragem, quando o tecido para que segue o Prostatectomy radical. Isso supera as questões com métodos publicados anteriormente em torno da eficiência e disponibilidade de tecido fresco para uma ampla gama de aplicações a jusante.
Métodos prévios para o tecido de próstata para, seguindo prostatectomia radical, geralmente envolveram amostragem aleatória. A fim de aumentar a eficiência, e permitir uma maior gama de aplicações a jusante, um método mais direcionado de amostragem de tecido prostático foi desenvolvido. Aqui nós usamos a imagem latente de ressonância magnética (MRI) e os dados da biópsia para alvejar áreas específicas do órgão para a amostragem. O método envolve o uso de um dispositivo de fatiamento da próstata previamente publicado que remova uma fatia transversal de 5 milímetros de uma região predeterminada da próstata, seguida pela remoção de biópsias do perfurador de 6 milímetros das áreas predeterminadas desta fatia. Essas amostras podem ser armazenadas congeladas ou fixas para fins de para, ou usadas imediatamente com 70% de confiança do conteúdo tumoral, em comparação com 10% de confiança na abordagem de amostragem aleatória. Isto permite o uso de todas as técnicas downstream padrão tais como a genômica, o proteômica ou o trabalho histológico, mas igualmente o trabalho que exige o tecido fresco tal como a imagem latente viva do tecido ou a cultura ex vivo.
O acesso ao tecido do cancro da próstata humano da alta qualidade é uma exigência chave para conduzir a pesquisa eficaz no campo. Há um número de métodos existentes para a amostra de tecido prostático após prostatectomia radical para pesquisa. Tipicamente, estes envolvem o uso de biópsias de punção para tirar amostras aleatórias de uma fatia fresca, congelada ou fixa de tecido prostático, e confirmando retrospectivamente se o tumor está ou não presente em cada amostra por hematoxilina & eosina (H & E), conforme avaliado por um uropatologista1,2,3,4,5. Uma revisão recente compilou uma visão geral desses métodos existentes6. Estes métodos são úteis para determinadas aplicações a jusante, onde o tecido pode ser armazenado e avaliado para o índice do tumor em uma data mais atrasada, tal como análises genomic da grande escala como o consórcio internacional do genoma do cancro (ICGC) e o Atlas do genoma do cancro (TCGA) 4,7. Entretanto, estes métodos podiam ser melhorados em cima se nós fôssemos usar a imagem latente de ressonância magnética (MRI) e/ou dados da biópsia para alvejar áreas específicas da próstata para a amostragem. Isso melhoraria a metodologia de duas maneiras; em primeiro lugar, reduzindo o número de amostras de tecido coletadas, aumentando a eficiência e reduzindo a pressão sobre os departamentos de patologia e o custo do armazenamento, e em segundo lugar, permitindo que o tecido fresco seja usado imediatamente sem a necessidade de confirmação imediata de conteúdo tumoral, para novas tecnologias de ponta a jusante, como imagens de tecidos vivos, geração organóide ou cultura ex vivo. Esta necessidade da pesquisa conduziu ao desenvolvimento do método dos povos (amostras da próstata paciente para a pesquisa), e os resultados dos primeiros 84 casos biobanked usando povos foram publicados recentemente8. Uma variação desse método também foi publicada com um aparelho de corte impresso tridimensional (3D) e um molde específico para o paciente, a fim de facilitar a RM ex vivo no tecido pré e pós-fixação9,10.
As etapas críticas dentro deste protocolo incluem a identificação da região do tumor para a amostragem, a medida da próstata, e a amostragem do tecido. Em primeiro lugar, a medição da RM para identificar a área correta da amostragem é fundamental. Demonstramos este método no vídeo que o acompanha; no entanto, também recomendamos a confirmação de medições com um radiologista em primeira instância. As notas clínicas desobstruídas que apontam o investigador para a área das imagens de MRI que contêm a lesão do índice são ideais. Em segundo lugar, a medida da próstata deve ser realizada com cuidado, assegurando-se de que a régua esteja prendida em um ângulo para medir o comprimento cheio da base ao vértice, paralelo ao anterior da próstata. Em terceiro lugar, as áreas do tumor devem ser confirmadas antes da amostragem inspecionando visualmente a fatia do tecido com relação à imagem original de MRI, palpando o tecido (em alguns casos a área do tumor pode sentir mais densa), e avaliando visualmente a cor do tecido (em alguns casos o tumor parecerá mais pálido do que o tecido benigno circunvizinho).
Este protocolo foi realizado na íntegra na UCL/UCLH por pesquisadores não-clínicos de pós-doutorado, um colega de patologia, consultores de patologia e técnicos de pesquisa. Em nossa experiência todos os passos do protocolo pode ser aprendido em menos de dez casos, independentemente do fundo técnico. No entanto, recomendamos a formação de um radiologista sobre a medição da RM e treinamento de um patologista em relação ao fatiamento em primeira instância. O protocolo pode ser modificado usando uma alça de corte impressa em 3D, conforme publicado anteriormente10.
As limitações potenciais da técnica incluem o risco de impedir no diagnóstico. Fatiar a próstata é um passo chave, que poderia impedir a classificação ou taxas de margem positiva se feito incorretamente. Há dois problemas potenciais aqui. Primeiramente, se toda a lesão do índice for removida e usada para a experimentação fresca do tecido imediatamente, o diagnóstico clínico rotineiro não será realizado para esta lesão e o paciente pode ser diagnosticado mal como tendo um cancro mais baixo da classe. Para evitar isso, o pesquisador deve discutir o plano amostral com o patologista consultor que revisará rotineiramente o caso, antes da amostragem, e concordará com o número e localização das amostras a serem tomadas. Os tumores pequenos podem ser excluídos localmente por esta razão. Em segundo lugar, se a cápsula prostática não é fixada corretamente para a placa de cortiça antes da fixação, isso poderia permitir que o tecido interno a protuberância para fora durante a fixação, alterando as margens cirúrgicas. Isto poderia conduzir a uma margem falsa positiva, onde o tumor restante pareça residir na cápsula puramente devido ao entortamento do tecido.
O significado desta técnica com respeito aos métodos existentes encontra-se principalmente com a segmentação do tumor. Uma série de métodos para amostragem de espécimes de prostatectomia radical foi publicada até à data; no entanto, todos estes dependem de uma abordagem de amostragem totalmente ou parcialmente aleatório1,2,3,4,5,6,7. O uso de biópsia e, em particular, dados de RM aqui melhorou a eficiência, permitindo uma amostragem reduzida com maior confiança na obtenção do tecido tumoral8.
Futuras aplicações deste método permitem a adoção de uma gama mais ampla de técnicas a jusante do que com métodos de amostragem anteriores. Por exemplo, a disponibilidade do tecido fresco que tem uma probabilidade elevada de ser tumor significa que umas técnicas frescas mais caras e/ou labor-intensive do tecido podem ser utilizadas, porque muitas amostras não são exigidas para assegurar a presença de tumor. Isso pode incluir e não está limitado a, cultura ex vivo, ex vivo MRI, imagens avançadas e transcriptomics.
The authors have nothing to disclose.
Os autores desejam reconhecer o câncer de próstata do Reino Unido para financiar SH o câncer de próstata Reino Unido centro de excelência e viagem prêmio Fellowship (TLD-PF16-004) e HP inovar (PG14-018-TR2). Este trabalho foi apoiado por pesquisadores do Instituto Nacional de pesquisa em saúde University College London Hospitals centro de pesquisa biomédica.
6 mm biopsy punch | Fisher Scientific | 13404607 | Disposable biopsy punches for removing 6 mm tissue samples |
Black Ink | Leica Biosystems | 3801753 | Tissue marking & margin dye |
Blue Ink | Leica Biosystems | 3801751 | Tissue marking & margin dye |
Chainmail hand glove | Arco | 1456803 | Chainmail gloves to protect hand during slicing |
Cork board | Fisher Scientific | 12396447 | Cork board for pinning prostate to following sampling procedure |
Needles | SLS (Scientific Laboratory supplies) | SYR6112 | Sterile needles to use to pin tissue to cork board following sampling |
Prostate slicing aparatus | Insitute of Cancer Research, London | NA – must be obtained under MTA | A kit containing the slicer handle, blades, spacer, base, walls and pins |