Мы представляем протокол для оценки баланса между высвобождение глутамата и очистки при одном кортикостриатических глутаматергических синапсах в острых ломтиках от взрослых мышей. Этот протокол использует флуоресцентный датчик iGluu для обнаружения глутамата, камеру sCMOS для получения сигнала и устройство для фокусного лазерного освещения.
Синапсы являются высокоразрозненные функциональные единицы, которые работают независимо друг от друга. В болезни Гентингтона (HD) и других нейродегенеративных расстройств, эта независимость может быть поставлена под угрозу из-за недостаточного просвета глутамата и в результате разлива и разлива эффектов. Измененное астроцитарное покрытие пресинаптических терминалов и/или дендритных шипов, а также уменьшенный размер кластеров глутамата на участках высвобождения глутамата были вовлечены в патогенез заболеваний, приводящий к симптомам дис-/гиперкинезии. Тем не менее, механизмы, ведущие к дисфункции глутамерных синапсов в БГ не очень хорошо изучены. Улучшение и применение синапсов изображений мы получили данные, проливающие новый свет на механизмы, препятствующие инициированию движений. Здесь мы описываем основные элементы относительно недорогого подхода для достижения одного синапса резолюции с помощью нового генетически закодированного ультрабыстрого датчика глутамата iGluu, широкоугольной оптики, научной камеры CMOS (sCMOS), лазера 473 нм и лазерной системы позиционирования для оценки состояния кортикостриатальных синапсов в острых отрезков здорового возраста. Глютамат переходных были построены из одного или нескольких пикселей для получения оценок i) глутамата релиз на основе максимальной высоты концентрации глутамата (Глю) рядом с активной зоной и ii) поглощение глутамата, как отражено во времени постоянного распада (TauD) перисинаптического «Glu». Различия в размере покоя и контрастные модели краткосрочной пластичности служили критериями для идентификации кортикостриатальных терминалов как принадлежащих к интрателенцефалическому (ИТ) или пирамидальному тракту (PT). Используя эти методы, мы обнаружили, что в симптоматическом HD мышей 40% PT-типа кортикостриатических синапсов выставлены недостаточно глутамата зазор, предполагая, что эти синапсы могут быть подвержены риску excitotoxic повреждения. Результаты подчеркивают полезность TauD как биомаркера дисфункциональных синапсов у мышей Хантингтона с гипотинетическим фенотипом.
Относительное влияние каждого синаптического терминала, принадлежащего к “унитарному соединению” (т.е. связь между 2 нервными клетками), как правило, оценивается по его влиянию на начальный сегмент постсинаптического нейрона1,2. Соматические и/или дендритные записи из постсинаптических нейронов представляют собой наиболее распространенные и, до сих пор, также наиболее продуктивные средства для уточнения обработки информации в сверху вниз или вертикальной точки зрения3,4,5. Однако наличие астроцитов с их дискретными и (у грызунов) неперекрывающихся территорий может способствовать горизонтальной перспективе, основанной на локальных механизмах обмена сигналами, интеграции и синхронизации на синапических участках66,77,88,10.10
Потому что известно, что астроглия играть, в общем, важную роль в патогенезе нейродегенеративного заболевания11,12 и, в частности, роль в поддержании и пластичности глутамерных синапсов13,14,15 ,16,16Можно себе представить, что изменения в синаптической производительности развиваться в соответствии с состоянием астроцитов в общей области. Для дальнейшего изучения целевых /астроглии, полученных местными механизмами регулирования в области здравоохранения и болезней, необходимо оценить отдельные синапсы. Нынешний подход был разработан для оценки диапазона функциональных показателей высвобождения и очистки глутамата и определения критериев, которые могут быть использованы для выявления дисфункциональных (или восстановленных) синапсов в областях мозга, наиболее тесно связанных с инициацией движения (т.е. в первую очередь в моторной коре и стриатуме).
Стриатум не хватает внутренних глутаматергических нейронов. Таким образом, относительно легко определить глутамерные афференты экстрастриатального происхождения. Последние в основном происходят в медиальной таламус и в коре головного мозга (см.17,,18,,19,,20 для более). Кортикостриатальные синапсы образуются аксонами пирамидальных нейронов, локализованных в корковых слоях 2/3 и 5. Соответствующие аксоны образуют двусторонние внутрителецефалические (ИТ) соединения или ipsilateral соединения через волоконную систему, которая более caudally представляет собой пирамидальный тракт (PT). Кроме того, было высказано предположение, что IT- и PT-типа терминалов отличаются по характеристикам выпуска и размер21,22. С учетом этих данных можно также ожидать некоторых различий в обращении с глутаматом.
Стриатум является наиболее пострадавших области мозга в болезни Гентингтона (HD)5. HD человека является тяжелым генетически наследственных нейродегенеративных расстройств. Модель мыши No175 дает возможность исследовать клеточную основу гипокинетико-жесткой формы БГ, состояния, которое имеет много общего с паркинсонизмом. Начиная с возраста около 1 года, гомозигота No 175 мышей (HOM) проявляют признаки гипокинезии, как показали путем измерения времени, проведенного без движения в открытом поле23. Нынешние эксперименты с гетерозиготными мышами No175 (HET) подтвердили предыдущий дефицит мотора, наблюдаемый в HOM, и, кроме того, показали, что наблюдаемый дефицит мотора сопровождался снижением уровня астроцитарной аминокислоты транспортера 2 белка (EAAT2) в непосредственной близости от кортикостриатических синапических терминалов24. Поэтому было предслоужно, что дефицит в астроцитарный глутамат поглощения может привести к дисфункции или даже потери соответствующих синапсов25,26.
Здесь мы описываем новый подход, который позволяет оценить один синапсный глутамат зазор по отношению к количеству выпущенного нейромедиатора. Новый датчик глутамата iGluu был выражен в кортикостриатических пирамидальных нейронов. Он был разработан Каталин Торек27 и представляет собой модификацию ранее введенного высокой сродства, но медленного датчика глутамата iGluSnFR28. Оба датчика являются производными улучшенного зеленого флуоресцентного белка (EGFP). Для спектральных и кинетические характеристики, см Helassa и др.27. Кратко, iGluu является низким сродством датчик с быстрой деактивации кинетики и, следовательно, особенно хорошо подходит для изучения глутамата зазор на глутамат-релизы синаптических терминалов. Время диссоциации iGluu было определено в устройстве с останавливаетися потока, что оказало Тауот значения 2.1 ms при 20 градусах По Цельсия, но 0.68 ms при экстраполировании до температуры 34 c27. Одноместные терминалы обеспечения Schaffer исследовали на 34 градуса с спиральным лазерным сканированием в регионе CA1 органотипических гиппокампа культур под 2-фотонным микроскопом выставлены среднее время константы распада 2,7 мс.
Эксперименты касаются вопроса общего интереса – синапсовой независимости и ее возможной потери в ходе нейродегенерации, и мы описываем новый подход к выявлению пораженных синапсов в острых ломтиках мозга от пожилых (зgt;1 год) мышей. Воспользовавшись улучшенными кинетической характери?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана CHDI (A-12467), Немецким исследовательским фондом (Exc 257/1 и DFG Project-ID 327654276 – SFB 1315) и интрамуральными исследовательскими фондами Шарите. Мы благодарим К. Торека, Сент-Джордж, Лондонский университет, и Н. Хелассу, Ливерпульский университет, за плазмид iGluu и множество полезных дискуссий. Д. Бетанс и А. Шёнхерр оказали отличную техническую помощь.
Stereo microsope | WPI | PZMIII | Precision Stereo Zoom Binocular Microscope |
Stereotaxic frame | Stoelting | 51500D | Digital Lab New Standard stereotaxic frame |
High speed drill equipment | Stoelting | 514439V | Foredom K1070 cromoter Kit |
Injection system | Stoelting | 53311 | Quintessential Stereotaxic Injector (QSI) |
Hamilton syringe 5 µl | Hamilton | 87930 | 75RN Syr (26s/51/2) |
Laser positioning system | Rapp OptoElectronic | UGA-40 | UGA-40 |
Blue laser for iGluu excitation | Rapp OptoElectronic | DL-473-020-S | 473 nm laser |
Dichroic mirror for 473 nm | Rapp OptoElectronic | ROE TB-355-405-473 | Dichroic |
1P upright microscope | Carl Zeiss | 000000-1066-600 | Axioskop 2 FS Plus |
Objective 63x/1.0 | Carl Zeiss | 421480-9900 | W Plan-Apochromat |
4x objective | Carl Zeiss | 44-00-20 | Achroplan 4x/0,10 |
Dichroic mirror for iGluu | Omega optical | XF2030 | |
Emission filter for iGluu | Omega optical | XF3086 | |
Dichroic mirror | Omega optical | QMAX_DI580LP | |
Emission filter for autofluorescence subtr. | Omega optical | QMAX EM600-650 | |
sCMOS camera | Andor | ZYLA4.2PCL10 | ZYLA 4.2MP Plus |
Acqusition software | Andor | 4.30.30034.0 | Solis |
AD/DA converter | HEKA Elektronik | 895035 | InstruTECH LIH8+8 |
Aquisition software | HEKA Elektronik | 895153 | TIDA5.25 |
Electrode positioning system | Sutter Instrument | MPC-200 | Micromanipulator |
Electrical stimulator | Charite workshops | STIM-26 | |
Slicer | Leica | VT1200 S | Vibrotome |
Brown/Flaming-type puller | Sutter Instr | SU-P1000 | P-1000 |
Glass tubes for injection pipettes | WPI | 1B100F3 | |
Glass tubes forstimulation pipettes | WPI | R100-F3 | |
Tetrodotoxin | Abcam | ab120054 | TTX |
iGluu plasmid | Addgene | 106122 | pCI-syn-iGluu |
Q175 mice | Jackson Lab | 27410 | Z-Q175-KI |