אנו מציגים פרוטוקול כדי להעריך את האיזון בין שחרור גלוטמט לבין הסיווג ב corticostriatal glutamatergic בודד בפרוסות חריפה מעכברים למבוגרים. פרוטוקול זה משתמש חיישן פלורסנט iGluu עבור זיהוי גלוטמט, מצלמה scmos עבור רכישת אותות והתקן עבור תאורה לייזר מוקד.
הסינפסות הן יחידות פונקציונליות מאוד הפועלות באופן עצמאי אחד על השני. ב מחלת הנטינגטון (HD) ואחרים הפרעות ניווניות, עצמאות זו עלולה להיות בסכנה עקב הסיווג גלוטמט מספיק וכתוצאה מכך לשפוך ולשפוך את ההשפעות. כיסוי astrocytic משתנה של מסופי טרום סינפטיות ו/או שדוניים הדנדריטי, כמו גם גודל מופחת של אשכולות הטרנספורטר גלוטמט ב גלוטמט שחרור אתרים היו מעורבים בפתוגנזה של מחלות וכתוצאה מכך הסימפטומים של dys-/היפרקינססיa. עם זאת, המנגנונים המובילים את התפקוד של הסינפסות glutamatergic ב-HD אינם מובנים היטב. שיפור והחלה של הדמיה סינפסה הצלחנו להשיג נתונים ששפוך אור חדש על המנגנון מסכל את החניכה של תנועות. כאן, אנו מתארים את האלמנטים העיקריים של גישה זולה יחסית כדי להשיג החלטה סינפסה באמצעות החדש מקודד גנטית חיישן מהיר במיוחד iGluu, אופטיקה שדה רחב, מדעי ה-CMOS (scmos) מצלמה, 473 ננומטר לייזר ומערכת מיצוב לייזר כדי להעריך את המצב של סינפסות corticostriatal בפרוסות חריפה מן הגיל מטרואנטים גלוטמט נבנו מפיקסלים בודדים או מרובים כדי לקבל הערכות של i) שחרור גלוטמט מבוסס על העלאת המקסימלית של הריכוז גלוטמט [לגלו] ליד האזור הפעיל ii) ספיגת גלוטמט משתקף בזמן קבוע של ריקבון (טאוד) של perisynaptic [לגלו]. הבדלים מונחים על גודל בוטון ודפוסי מנוגדים של הפלסטיות לטווח קצר שימשו כקריטריונים לזיהוי של מסופים corticostriatal כשייכים לintratelencephalic (IT) או המסלול בדרכי במערכת (PT). באמצעות שיטות אלה, גילינו כי בעכברי HD סימפטומטי ~ 40% מסוג PT-type corticostriatal הציגו סיווג גלוטמט מספיק, הרומז כי הסינפסות האלה עשויים להיות בסיכון לנזק מרגש. התוצאות להדגיש את התועלת של TauD כמו סמנים של סינפסות תפקוד בעכברים הנטינגטון עם פנוטיפ היפוקינטית.
ההשפעה היחסית של כל מסוף סינפטית השייכת ל”קשר יוניטרית” (כלומר, הקשר בין 2 תאי עצב) מוערך בדרך כלל על ידי השפעתו על החלק הראשוני של תא העצב הפוסט-סינפטית1,2. הקלטות סומטיים ו/או דנדריטים מנוירונים פוסט-סינפטיות מייצגות את הנפוצים ביותר, עד כה, גם האמצעים היצרניים ביותר להבהרת עיבוד מידע בפרספקטיבה מלמעלה-למטה או אנכית3,4,5. עם זאת, הנוכחות של אסטרוציטים עם נפרדת שלהם (במכרסמים) שטחים לא חופפים עשויים לתרום פרספקטיבה אופקית המבוססת על מנגנונים מקומיים של חילופי אותות, אינטגרציה וסנכרון באתרי סינפטיות6,7,8,9,10.
כי ידוע כי משחק אסטרוליה, באופן כללי, תפקיד מרכזי בפתוגנזה של מחלה נוירוניווניות11,12 , בפרט, תפקיד תחזוקה ופלסטיות של glutamatergic סינפסות13,14,15,16, זה אפשרי כי שינויים בביצועי סינפטית להתפתח בהתאם למצב של astroglia באזור היעד המשותף של סיבי כלי לימפה עם מוצא מגוון. כדי להמשיך לחקור את היעד-/astroglia-נגזרות מנגנונים התקינה המקומית בריאות ומחלות, יש צורך להעריך הסינפסות בודדים. הגישה הנוכחית עבדה כדי להעריך את מגוון של שחרור גלוטמט פונקציונלי ומחווני הסיווג להגדיר קריטריונים שעשויים לשמש כדי לזהות תפקוד לקוי (או התאושש) הסינפסות באזורים המוח הקשורות ביותר ליזום תנועה (כלומר, קודם כל בקליפת המנוע והסטריאטום).
לסטריאטום חסרה נוירונים glutamatergic פנימיים. לפיכך, קל יחסית לזהות glutamatergic היסודות של המקור. האחרון מקורם בעיקר בתלמוס המדיאלי ובקליפת המוח (ראה17,18,19,20 לעוד). הסינפסות Corticostriatal נוצרות על ידי אקסונים של נוירונים מיניים מקומי בשכבות קורטיקלית 2/3 ו 5. האקסונים טופס דו-telencephalic (IT) התקשרויות או התקשרויות התחברות דרך מערכת סיבים כי יותר מקבל יותר מהווה את מערכת הפירמידה (PT). יש עוד הציע כי זה-ו-PT-type מסופים שונים במאפייני השחרור שלהם בגודל21,22. לאור הנתונים האלה, אפשר גם לצפות כמה הבדלים בטיפול של גלוטמט.
הסטריאטום הוא אזור המוח המושפע ביותר במחלת הנטינגטון (HD)5. HD האדם הוא חמור חמורה הפרעת ניווניות תורשתית. מודל העכבר Q175 מציע הזדמנות לחקור את בסיס הסלולר של הצורה ההיפוקינטית-נוקשה של HD, מצב שיש הרבה במשותף עם parkinsonism. החל מגיל של כ 1 שנה, הומוזיציטים Q175 עכברים (HOM) התערוכה סימנים של היפוקיסיה, כפי שנחשף על ידי מדידת הזמן שהושקע ללא תנועה בשדה פתוח23. הניסויים הנוכחיים עם עכברים Q175 הטרוזיציטים (HET) אישרו את המנוע הקודם שנצפה ב HOM ו, בנוסף, הראה כי המוטוריים הנצפים היו מלווים על ידי רמה מופחתת של מרגש האסטרוציטי של חומצה אמינית הנשא 2 חלבון (EAAT2) בסביבה הקרובה של corticostriatal מסופים סינפטית24. ולכן יש היפותזה כי גרעון ספיגה של גלוטמט astrocytic יכול להוביל לתפקוד או אפילו אובדן של הסינפסות בהתאמה25,26.
כאן, אנו מתארים גישה חדשה המאפשרת אחד כדי להעריך את הסיווג בודד גלוטמט ביחס לכמות הנוירוטרנסמיטר שוחרר. חיישן גלוטמט חדש iGluu היה ביטא corticostriatal הנוירונים ביניים. הוא פותח על ידי קאטאלין Török27 ומייצג שינוי של הגבוהה ביותר הציג בעבר מאוד אהדה אבל החיישן גלוטמט איטי iGluSnFR28. שני החיישנים הם נגזרים של חלבון הפלורסנט הירוק המשופר (EGFP). לתכונות ספקטרליות וקינטית, ראו הלאסה ואח ‘27. בקצרה, iGluu הוא חיישן בעלי זיקה נמוכה עם קינטיקה מהירה של הפעלה, ולכן במיוחד מתאים גם כדי לחקור את הסיווג גלוטמט ב גלוטמט-שחרור מסופים סינפטית. קבוע זמן הדיסוציאציה של iGluu נקבע במתקן שנעצר, אשרהנחה את ערך הטאו של 2.1 אלפיות הראשונה ב-20 ° c, אך 0.68 מילישניות בטמפרטורה של 34 ° צ’27. מסופים בודדים שייפר בדקה ב 34 ° c עם סריקת לייזר ספירלה באזור CA1 של היפוסופקאית בתרבויות organotypic תחת מיקרוסקופ 2-פוטון הציג קבוע זמן ממוצע של ריקבון של 2.7 ms.
הניסויים משפיעים על עניין כללי-סינפסה והפסד אפשרי במהלך ניוון שולי, ואנו מתארים גישה חדשה לזיהוי סינפסות מושפעות בפרוסות מוח חדות מבני האדם (> 1). ניצול המאפיינים הקינטית המשופרים של חיישן גלוטמט שהוצג לאחרונה iGluu הניסויים להאיר את היחסים בין גלוטמט שחרור הסינפטית וספיגת באופן שלא הי…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכת על ידי CHDI (A-12467), קרן המחקר הגרמני (Exc 257/1 ו DFG פרויקט-ID 327654276 – SFB 1315) ו הפנים קרנות מחקר של Charité. אנו מודים לקיי. ‘.. ‘, אוניברסיטת לונדון, ו-N. Helassa, אוניברסיטת ליברפול, עבור iGluu פלמיד ודיונים רבים ומועילים. ד. בליטות ושונהר סיפקו סיוע טכני מעולה.
Stereo microsope | WPI | PZMIII | Precision Stereo Zoom Binocular Microscope |
Stereotaxic frame | Stoelting | 51500D | Digital Lab New Standard stereotaxic frame |
High speed drill equipment | Stoelting | 514439V | Foredom K1070 cromoter Kit |
Injection system | Stoelting | 53311 | Quintessential Stereotaxic Injector (QSI) |
Hamilton syringe 5 µl | Hamilton | 87930 | 75RN Syr (26s/51/2) |
Laser positioning system | Rapp OptoElectronic | UGA-40 | UGA-40 |
Blue laser for iGluu excitation | Rapp OptoElectronic | DL-473-020-S | 473 nm laser |
Dichroic mirror for 473 nm | Rapp OptoElectronic | ROE TB-355-405-473 | Dichroic |
1P upright microscope | Carl Zeiss | 000000-1066-600 | Axioskop 2 FS Plus |
Objective 63x/1.0 | Carl Zeiss | 421480-9900 | W Plan-Apochromat |
4x objective | Carl Zeiss | 44-00-20 | Achroplan 4x/0,10 |
Dichroic mirror for iGluu | Omega optical | XF2030 | |
Emission filter for iGluu | Omega optical | XF3086 | |
Dichroic mirror | Omega optical | QMAX_DI580LP | |
Emission filter for autofluorescence subtr. | Omega optical | QMAX EM600-650 | |
sCMOS camera | Andor | ZYLA4.2PCL10 | ZYLA 4.2MP Plus |
Acqusition software | Andor | 4.30.30034.0 | Solis |
AD/DA converter | HEKA Elektronik | 895035 | InstruTECH LIH8+8 |
Aquisition software | HEKA Elektronik | 895153 | TIDA5.25 |
Electrode positioning system | Sutter Instrument | MPC-200 | Micromanipulator |
Electrical stimulator | Charite workshops | STIM-26 | |
Slicer | Leica | VT1200 S | Vibrotome |
Brown/Flaming-type puller | Sutter Instr | SU-P1000 | P-1000 |
Glass tubes for injection pipettes | WPI | 1B100F3 | |
Glass tubes forstimulation pipettes | WPI | R100-F3 | |
Tetrodotoxin | Abcam | ab120054 | TTX |
iGluu plasmid | Addgene | 106122 | pCI-syn-iGluu |
Q175 mice | Jackson Lab | 27410 | Z-Q175-KI |