Doliolide, einschließlich der Art Dolioletta gegenbauri, sind kleine gelatinöse Marine Zooplankton von ökologischer Bedeutung auf produktiven subkontinentalen Regalsystemen weltweit gefunden. Die Schwierigkeit, diese empfindlichen Organismen zu kultivieren, schränkt ihre Untersuchung ein. In dieser Studie beschreiben wir Anbauansätze für das Sammeln, Aufzucht und die Pflege des Doliolid Dolioletta gegenbauri.
Gelatinezooplanktons spielen eine entscheidende Rolle in den Ökosystemen der Ozeane. Jedoch, Es ist in der Regel schwierig, ihre Physiologie zu untersuchen, Wachstum, Fruchtbarkeit, und trophische Wechselwirkungen in erster Linie aufgrund methodischer Herausforderungen, einschließlich der Fähigkeit, sie zu kulturisieren. Dies gilt insbesondere für die Doliolid, Dolioletta gegenbauri. D. gegenbauri kommt weltweit häufig in produktiven subtropischen Kontinentalschelfsystemen vor, oft in Blütenkonzentrationen, die einen großen Teil der täglichen Primärproduktion verbrauchen können. In dieser Studie beschreiben wir Anbauansätze für das Sammeln, Aufziehen und Pflegen von D. gegenbauri zum Zweck der Durchführung von Laborstudien. D. gegenbauri und andere doliolid Arten können live mit schräg geschleppten konischen 202 m Mesh Planktonnetzen von einem treibenden Schiff gefangen werden. Kulturen werden am zuverlässigsten etabliert, wenn die Wassertemperaturen unter 21 °C liegen und von unreifen Gonozooiden, reifenden Phorozooiden und großen Krankenschwestern gestartet werden. Kulturen können in abgerundeten Kulturgefäßen auf einem sich langsam drehenden Planktonrad gepflegt und auf einer Ernährung von kultivierten Algen im natürlichen Meerwasser für viele Generationen aufrechterhalten werden. Neben der Fähigkeit, Laborkulturen von D. gegenbaurizu etablieren, zeigen wir, dass der Sammelzustand, die Algenkonzentration, die Temperatur und die Exposition gegenüber natürlich bedingtem Meerwasser für die Kultur entscheidend sind. Gründung, Wachstum, Überleben und Reproduktion von D. gegenbauri.
Zooplankton ist die größte tierische Biomasse im Ozean, sind Schlüsselkomponenten in marinen Nahrungsbahnen und spielen eine wichtige Rolle in den biogeochemischen Zyklen der Ozeane1,2. Zooplankton, obwohl aus einer großen Vielfalt von Organismen besteht, kann grob in zwei Kategorien unterschieden werden: gelatinös und nicht-gelatinelatinus mit wenigen Zwischentaxa3,4. Im Vergleich zum nicht-gelatinösen Zooplankton ist das gelatinöse Zooplankton aufgrund seiner komplexen Lebensgeschichten5besonders schwer zu untersuchen und ihre empfindlichen Gewebe werden beim Erfassen und Handling leicht beschädigt. Gelatinezooplankton-Arten sind daher notorisch schwer zu kulturierieren im Labor und im Allgemeinen weniger untersucht im Vergleich zu nicht-gelatinösen Arten6.
Unter den gelatinösen Zooplanktongruppen sind die Thaliaceans eine reichliche und ökologische Bedeutung im Weltmeer. Thaliaceans sind eine Klasse von pelagischen Tunikaten, die die Ordnungen Salpida, Pyrosomida und Doliolida7enthalten. Doliolida, kollektiv als Doliolide bezeichnet, sind kleine fassförmige freischwimmende pelagische Organismen, die in produktiven neritischen Regionen subtropischer Ozeane hohe Mengen erreichen können. Doliolids gehören zu den am häufigsten vorkommenden aller Zooplanktongruppen4,8. Als Suspensionszubringer sammeln Doliolids Lebensmittelpartikel aus der Wassersäule, indem sie Filterströme erzeugen und auf Schleimnetzen erfassen9. Taxonomisch werden Doliolide in das Phylum Urochordata10eingestuft. Die Thaliazer sind neben ihrer ökologischen Bedeutung als Schlüsselkomponenten mariner pelagischer Systeme von Bedeutung für das Verständnis der Ursprünge der kolonialen Lebensgeschichte10,11 und der Evolution. der Akkorddaten5,7,10,12,13,14.
Die Lebensgeschichte der Dolioliden ist komplex und trägt dazu bei, dass es schwierig ist, sie durch ihren Lebenszyklus zu kultivieren und zu erhalten. Einen Überblick über den dolioliden Lebenszyklus und die Anatomie finden Sie in Godeaux et al.15. Der doliolidische Lebenszyklus, der einen obligatorischen Wechsel zwischen sexuellen und asexuellen lebensgeschichtlichen Stadien beinhaltet, ist in Abbildung 1dargestellt. Eier und Spermien werden von den hermaphroditischen Gonozooiden, dem einzigen einsamen Stadium des Lebenszyklus, produziert. Gonozooiden geben Spermien in die Wassersäule frei und Eier werden intern befruchtet und freigesetzt, um sich zu Larven zu entwickeln. Larven schlüpfen und metamorphosen zu Oozooiden, die 1-2 mm erreichen können. Unter der Voraussetzung, dass die bedingungenund die Ernährung förderlich sind, werden Oozooide innerhalb von 1-2 Tagen bei 20 °C zu frühen Krankenschwestern und initiieren die kolonialen Stadien des Lebenszyklus. Oozooiden produzieren asexuell Knospen auf ihrem ventralen Stolon. Diese Knospen verlassen den Stolon und wandern zum dorsalen Cadophor, wo sie sich in drei gepaarten Reihen aneinanderreihen. Die zentralen Doppelreihen werden zu Phorozooiden und die äußeren zwei Doppelreihen zu Trophozooiden. Letztere versorgen sowohl die Krankenschwester als auch die Phorozooiden mit Nahrung16,17. Die Trophozooide versorgen die Krankenschwester mit Nahrung, da sie alle inneren Organe verliert. Mit zunehmender Fülle von Trophozooiden kann die Größe der Krankenschwester im Labor 15 mm erreichen. Während die Phorozooide wachsen, schlucken sie zunehmend planktonische Beute und erreichen eine Größe von 1,5 mm, bevor sie als Individuen17freigelassen werden. Eine einzige Krankenschwester kann > 100 Phorozooide während ihrer Lebensdauer18freisetzen. Nachdem die Phorozoiden aus dem Cadophor befreit wurden, wachsen sie weiter und sind die zweite koloniale Phase des Lebenszyklus. Sobald sie 5 mm groß sind, entwickelt jeder Phorozooid einen Haufen Gonozooide auf seinem ventralen Pedunkel. Diese Gonozooide können Partikel aufnehmen, wenn sie eine Länge von 1 mm erreichen. Nachdem die Gonozooiden 2 bis 3 mm groß sind, werden sie aus dem Phorozooid befreit und werden zum einzigen Einzelstadium des Lebenszyklus. Sobald sie 6 mm groß werden, werden Gonozooide geschlechtsreif17. Gonozooide können 9 mm oder mehr länge werden. Gonozooide sind hermaphroditisch, Spermien werden zeitweise freigesetzt, während die Befruchtung der Eier intern erfolgt16,17. Wenn der Gonozooid 6 mm groß ist, gibt er bis zu 6 befruchtete Eier frei. Erfolgreiche Kultivierung erfordert die Unterstützung der spezifischen Bedürfnisse jeder dieser einzigartigen Lebensgeschichte-Stadien.
Aufgrund der ökologischen und evolutionären Bedeutung der Thaliaceaner, einschließlich der Dolioliden, sind die Kultivierungsmethoden erforderlich, um das Verständnis der einzigartigen Biologie, Physiologie, Ökologie und Evolutionsgeschichte dieses Organismus zu fördern19 . Doliolids haben als experimentelle Modellorganismen in der Entwicklungsbiologie und der funktionellen Genomik erhebliche Versprechen, weil sie transparent sind und wahrscheinlich die Genome20,21gestrafft haben. Der Mangel an zuverlässigen Anbaumethoden behindert jedoch deren Nutzen als Labormodelle. Obwohl eine Handvoll Laboratorien Ergebnisse veröffentlicht haben, die auf kultivierten Dolioliden basieren, wurden zu unserem Wissen Anbauansätze und detaillierte Protokolle bisher nicht veröffentlicht. Basierend auf jahrelanger Erfahrung und Versuchs- und Fehlerkultivierungsversuchen bestand der Zweck dieser Studie darin, Erfahrungen zu überprüfen und Protokolle für die Sammlung und Kultivierung von Dolioliliden, insbesondere der Art Dolioletta gegenbauri,auszutauschen.
Die Fähigkeit zur Kultur von Doliolids wurde in den letzten Jahrzehnten etabliert und zur Unterstützung der Forschung in mehreren Bereichen genutzt. Experimentelle Studien in unseren Laboratorien haben die Veröffentlichung von mindestens 15 wissenschaftlichen Studien unterstützt, die sich auf die Fütterung und das Wachstum konzentrierten18,26, Reproduktion18,28, Diät6,</…
The authors have nothing to disclose.
Wir sind dankbar für die vielen Personen, die im Laufe der Jahre an diesem Projekt gesammeltes Wissen, einschließlich G.-A. Paffenhöfer und D. Deibel, die diese Protokolle ursprünglich entwickelt haben. Auch M. Köster und L. Lamboley haben wesentlich zur Entwicklung dieser Verfahren beigetragen. Die in Tabelle 1 enthaltenen Schätzungen der dolioliden Fülle wurden von N.B. Lépez-Figueroa und Der E.E. Rodriguez-Santiago erstellt. Diese Studie wurde teilweise von der US National Science Foundation awards OCE 082599, 1031263 an MEF, den Kooperationsprojekten OCE 1459293 und OCE 14595010 an MEF und DMG und dem National Oceanic and Atmospheric Administration Award NA16SEC4810007 an DMG unterstützt. Wir danken der fleißigen und professionellen Crew der R/V Savannah. Lee Ann DeLeo bereitete die Figuren vor, Charles Y. Robertson korrekturlas das Manuskript und James (Jimmy) Williams fertigte das Planktonrad
Algal culture tubes (55 mL sterile disposable glass culture tubes) | Any | NA | For algal cultures |
Autoclave | Any | NA | For sterilizing equipment and seawater for algal cultures |
Beakers (2 L glass) | Any | NA | For sorting diluted plankton net tow contents |
Buckets (5 gallon, ~20L) | Any | NA | For diluting contents of planton net tow – should be seawater conditioned before first use |
Carboys (20 L) | Any | NA | For storing seawater |
Doliolid glass culturing jar (1.9 L narrow mouth glass jar with cap) | Qorpak | GLC-01882 | Container for culture |
Doliolid glass culturing jar (3.8 L narrow mouth glass jar with cap) | Qorpak | GLC-01858 | Container for culture |
Environmental Chamber (Temperature controlled enviromental chamber) | Any | NA | To accommodate plankton wheel and culture maintenance |
Filtration apparatus for 47 mm filters | Any | NA | For filtering seawater for cultures |
Glass microfiber filters, 47 mm | Whatman | 1825-047 | For filtering seawater for cultures |
Glass pipette (borosillicate glass pipette (glass tubing), OD 10mm, ID 8 mm, wall thickness 1mm) | Science Company | NC-10894 | Custom cut and edges polished |
Hose clamps, stainless steel, #104 (178 mm) | Any | NA | For holding culturing jars to the plankton wheel |
Isochrysis galbana strain CCMP1323 | National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA) | strain CCMP1323 | For feeding doliolid cultures |
L1 Media Kit, 50 L | National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA) | MKL150L | For culturing algae |
Lamp (Fluorescent table lamp with an adjustable arm) | Any | NA | For illuminating doliolids in the jars and beakers |
Lighted temperature controlled incubator | Any | NA | For algal cultures |
Micropipettes and sterile tips (0-20 µl, 20-200 µl, 200-1000 µl) | Any | NA | For algal cultures |
Plankton Net (202 µm 0.5 m, 5:1 length) with cod end ring and 4 L aquarium cod-end | Sea-Gear Corporation | 90-50×5-200-4A/BB | For collecting living doliolids (see Figure 4) |
Plankton Wheel | NA | NA | Custom built (see Figure 2) |
Plastic wrap | Any | NA | To cover inside of lid of doliolid culture jars |
Potassium Permanganate | Fisher Scientific | P279-500 | Reagent for cleaning jars and glassware |
Rhodomonas sp. strain CCMP740 | National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA) | strain CCMP740 | For feeding doliolid cultures |
Rubber Tubing | NA | NA | For holding culturing jars to the plankton wheel (can be made from tygon tubing) |
Sodium Bisulfite | Fisher Scientific | S654-500 | Reagent for cleaning jars and glassware |
Sodium Hydroxide | Fisher Scientific | BP359-212 | Reagent for cleaning jars and glassware |
Sterile serological pipettes (1 mL, 5 mL, 10 mL, 25 mL) | Any | NA | For algal cultures |
Thalassiosira weissflogii strain CCMP1051 | National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA) | strain CCMP1051 | For feeding doliolid cultures |
Tissue culture flasks (250 mL) | Any | NA | For algal cultures |