Summary

בידוד, תרבות, אפיון, והבידול של תאים האדם שריר ביופסיה של השלד שרירי השגרה נוהל

Published: August 23, 2019
doi:

Summary

אנו מציגים טכניקות עבור בידוד, culturing, אפיון, וההבחנה תאים האדם העיקרי שריר השריר (hMPCs) המתקבל רקמת שריר השלד ביופסיה. hmpcs התקבל ומאופיין באמצעות שיטות אלה ניתן להשתמש לאחר מכן לכתובת מחקר שאלות הקשורות מיוגנזה האדם התחדשות השלד שריר.

Abstract

השימוש ברקמות ובתאים האנושיים העיקריים הוא אידיאלי לחקירת תהליכים ביולוגיים ופיזיולוגיים כגון תהליך ההתחדשות של שריר השלד. ישנם אתגרים מזוהים לעבוד עם בתאי גזע האדם העיקרי בוגרים, במיוחד בתאי שריר האדם בתאים (hMPCs) נגזר ביופסיות שריר השלד, כולל התשואה התא נמוך מרקמות שנאספו ומידה גדולה של התורם טרוגניות של מערכי צמיחה ומוות בקרב תרבויות. בעוד שילוב טרוגניות לתוך העיצוב הניסיוני דורש גודל מדגם גדול יותר כדי לזהות אפקטים משמעותיים, זה גם מאפשר לנו לזהות מנגנונים כי השונות ושתתות קיבולת הרחבת hmpc, ובכך מאפשר לנו להבין טוב יותר טרוגניות שרירים התחדשות השלד. מנגנונים חדשניים המבדילים את יכולת ההתרחבות של תרבויות יש את הפוטנציאל להוביל לפיתוח של טיפולים כדי לשפר את התחדשות שריר השלד.

Introduction

שריר השלד הוא מערכת האיברים הגדולה ביותר בגוף האדם, חשבונאות עבור 30-40% של מסת הגוף כולו1. בנוסף התפקיד שלה מזוהה היטב תנועה, שריר השלד שומרת על טמפרטורת הגוף ויציבה, וממלא תפקיד מרכזי הומאוסטזיס מזינים הגוף כולו. מחקרים הקשורים למשתתפים אנושיים, בעלי חיים ומודלים של תרבות התא הם כולם יקרי ערך לטפל בשאלות הנוגעות לביולוגיה שריר השלד והתחדשות. בידוד ותרבות של תאים אנושיים שרירים ראשוניים (hMPCs) מספק מודל חזק המאפשר לטכניקות תרבות התא ומניפולציות להיות מיושם על דגימות אנושיות. היתרון של שימוש hmpcs הוא שהם שומרים את מושגים גנטיים ומטבולית מכל תורם2,3. תחזוקת פנוטיפ התורם מאפשרת לחוקרים לבחון וריאציה בין-אישית בתהליך היוגניים. לדוגמה, העסקנו את שיטת האפיון hMPC שלנו כדי לזהות הבדלים בין הגילאים והמין בקיבולת הרחבת אוכלוסיית hMPC4.

מטרת פרוטוקול זה היא לפרט טכניקות כדי לבודד, תרבות, לאפיין, ולהבדיל hMPCs מרקמת ביופסיה שריר השלד. בניין על עבודה קודמת שתיאר hmpcs וזיהה מקבלי הפנים הפוטנציאליים תאים עבור בידוד hmpcs5,6, פרוטוקול זה ממלא פער קריטי בידע על ידי קישור בידוד לאפיון של hmpcs. עוד, הוראות צעד אחר צעד המפורטים בפרוטוקול זה להפוך את הבידוד hMPC ואפיון נגיש לקהל מדעי רחב, כולל אלה עם ניסיון קודם מוגבל עם Hmpc. הפרוטוקול שלנו הוא בין הראשונים לתאר שימוש בציטוטומטר הדמיה כדי לעקוב אחר אוכלוסיות תאים. ציטוטומטרים מעוצבים לאחרונה הם מדינה-של-האמנות, תפוקה גבוהה ומיקרופלייט, המאפשרת הדמיה של תא חי, ספירת תאים וניתוח של קרינה פלואורסצנטית רב-ערוצית של כל התאים בכל באר של כלי תרבות בתוך דקות. מערכת זו מאפשרת כימות מהירה של שינויים דינמיים בהתפשטות ובכדאיות של אוכלוסיית תאים שלמה עם הפרעה מינימלית בלבד לתרבות. לדוגמה, אנו מסוגלים לבצע פעולות אובייקטיביות של המפגש בימים רצופים בחוץ כדי לקבוע את קינטיקה הגדילה של כל תרבות הנגזרת מתורמים שונים. פרוטוקולים רבים בספרות, במיוחד אלה הקשורים הבידול של MPCs, דורשים תאים כדי להגיע לרמה מוגדרת של המפגש לפני התחלת בידול או טיפול7. השיטה שלנו מאפשרת קביעה אובייקטיבית של הזרימה של כל באר בכלי תרבות המאפשר לחוקרים ליזום טיפול באופן לא משוחד ולא סובייקטיבי.

בעבר, מגבלה עיקרית של שימוש hMPCs הראשי היה תשואה נמוכה המגבילות את מספר התאים הזמינים עבור ניסויים. אנחנו ואחרים הראו את התשואה של MPCs מן רקמת ביופסיה שריר השלד הוא 1-15 MPCs לכל מיליגרם של רקמה (איור 1)8. בגלל הפרוטוקול שלנו מאפשר ארבעה קטעים של התאים לפני טיהור עם מיון התא המופעל על ידי הזריחה (FACS), שלנו היבול hMPC שלנו, נגזר כמויות קטנות של רקמת ביופסיה (50-100 מ ג), הם מספיק כדי לטפל במטרות מחקר שבו יש צורך בניסויים מרובים. פרוטוקול ה-FACS שלנו מפיק אוכלוסיית MPC טהורה של ~ 80% (Pax7 חיוביים), ולכן הפרוטוקול שלנו ממוטב לתשואה ולטוהר.

Protocol

פרוטוקול זה אושר על ידי מועצת הסקירה המוסדית באוניברסיטת קורנל. כל המשתתפים הוקרן לתנאי הבריאות הבסיסיים והעניקו הסכמה מושכלת. 1. קבלת רקמת שריר האדם דרך ביופסיה שריר השלד לזהות את השריר הווסטוס באמצעות מישוש, ציוני דרך אנטומיים, וכיווץ פעיל של השריר. באמצעות המש?…

Representative Results

זרימת הנציג cy, התוצאות של בידוד hMPC מרקמת השריר האנושי ניתן לראות באיור 1. hMPCs יכול להיות מזוהה על ידי הראשון האירועים מבוסס על פיזור בצד ופיזור קדימה כדי לחסל תאים מתים או פסולת, ואחריו בחירת רק תאים אשר שליליים עבור 7 עמ מ ולכן הם קיימא. בחירת תאים חיובית הן ?…

Discussion

הראשי hMPCs הם מודל מחקר חשוב המשמש להבנת ביולוגיה שריר השלד ואת תהליך ההתחדשות. בנוסף, hMPCs יש את הפוטנציאל לשמש טיפול. עם זאת, ישנם אתגרים מזוהים באמצעות hMPCs הראשי עבור מחקר וטיפול, כולל הבנה מוגבלת של תאים הנגזרים מבני אדם10. יש גם מידה גדולה של וריאציה בקיבולת הרחבה בין תרבויות ה?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים מודים לאוניברסיטת קורנל, ביוטכנולוגיה מרכז משאבים הדמיה עבור עזרתם עם מיון תא המופעל הקרינה. אנו מודים גם מולי Gheller על עזרתה עם גיוס משתתף ואריקה בנדר על ניהול ביופסיות שריר השלד. לבסוף, אנו מודים למשתתפים על זמנם והשתתפותו במחקר. עבודה זו היתה נתמכת על ידי המכון הלאומי על הזדקנות המוסדות הלאומיים לבריאות תחת הפרס מספר R01AG058630 (כדי B.D.C. ו A.E.T.), על ידי קרן גלן למחקר רפואי הפדרציה האמריקנית למענק מחקר הזדקנות עבור הפקולטה זוטר (ב . Dc), ועל ידי מועצת הנשיא לנשות קורנל (לA.E.T.).

Materials

0.25% Trypsin, 2.21 mM EDTA Corning 25-053-Cl Trypsin used for removing adherent hMPCs from cell culture vessels
10 cm cell culture plate VWR 664160 Plates used for culturing hMPCs
15 mL Falcon tube Falcon 352196 15 mL conical tubes used throughout the hMPC isolation and culturing protocols
24 well cell culture plate Grenier Bio-One 662 160 Plates used for culturing hMPCs
7-AAD Viability Staining Solution eBioscience 00-6993-50 Viability stain for identifying living cells during FACS sorting
Alexa Fluor 488 anti-human CD29, Clone: TS2/16 BioLegend 303016 Conjugated antibody for FACS 
Black 96-well cell culture plate Grenier Bio-One 655079 96-well cell culture plate ideal for fluorescent imaging using the Celigo S
Celigo S Nexcelcom Bioscience Imaging cytometer used to track hMPC cultures
Cell Strainer VWR 352350 Cell strainer to eliminate large pieces of debris during muscle biopsy processing
Collagen Type I (Rat Tail) Corning 354236 Collagen for coating cell culture plates 
Collagenase D Roche 11 088 882 001 Used for degradation of collagen and other connective tissue in the skeletal muscle biopsy tissue
Dimethyl Sulfoxide VWR WN182 Used for cryopreservation of hMPCs
Dispase II Sigma Life Sciences D4693 A protease used for enzymatic digestion of skeletal muscle biopsy tissue
Dulbecco's Modified Eagle Medium Low Glucose powder Gibco 31600-034 Low glucose DMEM for muscle biopsy processing
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline Gibco 21600-010 PBS for muscle biopsy processing
EDTA Disodium Salt Dihydrate J.T. Baker 4040-01  Required for FACS buffer
Fetal Bovine Serum VWR 89510-186  Fetal bovine serum used for hMPC growth media
Ham's F12 Gibco 21700-026 Base media for hMPCs
Heat Inactivated Equine Serum Gibco 26-050-070 Horse serum used to make hMPC differentiation media
Hemocytometer iNCyto DHC-N0105 Used to count cells
Hibernate A Gibco A1247501 Media for preserving skeletal muscle biopsy tissue
Hoechst 33342, trihydrochloride, trihydrate Life Technologies H21492 DNA stain for identifying all cells using the Celigo S
Isopropanol Fisher Scientific A416P-4 Used for controlled rate freezing of hMPCs
Moxi buffer Orflo MXA006 Buffer for automated cell counter
Moxi Cassettes Orflo MXC002 Cassesttes for automated cell counter
Moxi z Mini Automated Cell Counter Orflo Automated cell counter
Mr. Frosty Freezing Container Thermo Fisher Scientific 5100-0001 Commerically available controlled rate cell freezing container
Normal Goat Serum (10%) Thermo Fisher Scientific 50062Z Goat serum used in FACS buffer
PE-Cy7 Mouse Anti-human CD56 , Clone: B159 BD Pharmingen 557747 Conjugated antibody for FACS 
Penicillin/Streptomycin 100X Solution Corning 30-002-CI Antibiotics added to culture media
Propidium iodide Thermo Fisher Scientific P3566 DNA stain for identifying dead cells using the Celigo S
Recombinant Human basic fibroblast growth factor Promega G5071 Supplement in hMPC growth media to prevent spontaneous differentiation
Recovery Cell Culture Freezing Medium  Gibco 12648-010 Media used to cryoperseve muscle biopsy slurries
Sodium Bicarbonate Fisher Scientific S233-3 Added to Ham's F12
Sterile Round Bottom 5 mL tubes VWR 60818-565 Tubes used for FACS
UltraComp eBeads eBioscience 01-2222-42 Compensation beads fort calibrating flow FACS settings

References

  1. Janssen, I., Heymsfield, S. B., Wang, Z., Ross, R. Skeletal muscle mass and distribution in 468 men and women aged 18-88 yr. Journal of Applied Physiology. 89 (1), 81-88 (2000).
  2. D’Souza, D. M., et al. Decreased satellite cell number and function in humans and mice with type 1 diabetes is the result of altered notch signaling. Diabetes. 65 (10), 3053-3061 (2016).
  3. Scheele, C., et al. Satellite cells derived from Obese humans with type 2 diabetes and differentiated into Myocytes in vitro exhibit abnormal response to IL-6. PLoS One. 7 (6), e39657 (2012).
  4. Riddle, E. S., Bender, E. L., Thalacker-Mercer, A. E. Expansion capacity of human muscle progenitor cells differs by age, sex, and metabolic fuel preference. American Journal of Physiology: Cell Physiology. 315 (5), C643-C652 (2018).
  5. Charville, G. W., et al. Ex vivo expansion and in vivo self-renewal of human muscle stem cells. Stem Cell Reports. 5 (4), 621-632 (2015).
  6. Alexander, M. S., et al. CD82 Is a Marker for Prospective Isolation of Human Muscle Satellite Cells and Is Linked to Muscular Dystrophies. Cell Stem Cell. 19 (6), 800-807 (2016).
  7. Thalacker-Mercer, A., et al. Cluster analysis reveals differential transcript profiles associated with resistance training-induced human skeletal muscle hypertrophy. Physiological Genomics. 45 (12), 499-507 (2013).
  8. Garcia, S. M., et al. High-Yield Purification, Preservation, and Serial Transplantation of Human Satellite Cells. Stem Cell Reports. 10 (3), 1160-1174 (2018).
  9. Yokoyama, W. M., Thompson, M. L., Ehrhardt, R. O. Cryopreservation and thawing of cells. Current Protocols in Immunology. , (2012).
  10. Bareja, A., Billin, A. N. Satellite cell therapy – from mice to men. Skeletal Muscle. 3 (1), 2 (2013).
  11. Riddle, E. S., Bender, E. L., Thalacker-Mercer, A. Transcript profile distinguishes variability in human myogenic progenitor cell expansion capacity. Physiological Genomics. 50 (10), 817-827 (2018).
  12. Xu, X., et al. Human Satellite Cell Transplantation and Regeneration from Diverse Skeletal Muscles. Stem Cell Reports. 5 (3), 419-434 (2015).

Play Video

Cite This Article
Gheller, B. J., Blum, J., Soueid-Baumgarten, S., Bender, E., Cosgrove, B. D., Thalacker-Mercer, A. Isolation, Culture, Characterization, and Differentiation of Human Muscle Progenitor Cells from the Skeletal Muscle Biopsy Procedure. J. Vis. Exp. (150), e59580, doi:10.3791/59580 (2019).

View Video