Summary

Data insamling och analys i Brainstem framkallade respons audiometri hos möss

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

Brainstem framkallade respons audiometri är ett viktigt verktyg i klinisk neurofysiologi. Numera är hjärnstammen framkallat respons audiometri också tillämpas i grundforskning och prekliniska studier med både farmakologiska och genetiska djurmodeller. Här ger vi en detaljerad beskrivning av hur auditiva hjärnstammen svar kan framgångsrikt registreras och analyseras i möss.

Abstract

Hjärnstammen framkallade Response audiometri (BERA) är av central betydelse i den kliniska neurofysiologin. Som andra framkallat potential (EP) tekniker, såsom visuellt framkallade potentialer (veps) eller somatosensorisk framkallade potentialer (SEPS), den auditiva framkallade potentialer (aeps) utlöses av upprepad presentation av identiska stimuli, elektroencefalographic (EEG) respons som därefter i genomsnitt resulterar i distinkta positiva (p) och negativa (n) avböjelser. Hos människor kan både amplituden och latens av enskilda toppar användas för att karakterisera förändringar i synkronisering och överledning hastighet i de underliggande neuronala circuitries. Viktigt är att AEPs också tillämpas i grundläggande och preklinisk vetenskap för att identifiera och karakterisera hörselfunktionen i farmakologiska och genetiska djurmodeller. Ännu mer, djurmodeller i kombination med farmakologiska tester utnyttjas för att undersöka om potentiella fördelar vid behandling av sensorineural nedsättning hörselnedsättning (t. ex., ålder-eller Bullerorsakad hörselnedsättning). Här ger vi en detaljerad och integrativ Beskrivning av hur man spelar in auditiv brainstem-framkallat svar (ABRs) i möss med Klicka och Tone-burst ansökan. Ett specifikt fokus för detta protokoll är på pre-experimental djur boende, anestesi, ABR inspelning, ABR filtreringsprocesser, automatiserad Wavelet-baserade amplitud tillväxt funktion analys, och latens upptäckt.

Introduction

En central aspekt av hjärnans fysiologi är dess förmåga att bearbeta miljöinformation som resulterar i olika inneboende eller extrinsic produktion, såsom inlärning, minne, känslomässiga reaktioner, eller motoriska svar. Olika experimentella och diagnostiska metoder kan användas för att karakterisera den elektrofysiologiska lyhördhet av enskilda neuronala celltyper eller kluster/ensembler av nervceller inom en stimulans-relaterade neuronala kretsar. Dessa elektrofysiologiska tekniker täcker olika spatiotemporal dimensioner på mikro-, meso-och makro1. Den mikroanalys nivå omfattar spänning och ström klämma närmar sig i olika patch-Clamp lägen med, till exempel, odlade eller akut dissocierade nervceller1. Dessa in vitro-tekniker möjliggör karakterisering av enskilda nuvarande enheter och deras farmakologiska modulering2,3. En viktig nackdel är dock avsaknaden av systemisk information när det gäller mikro-och macrocircuitry-integrering och bearbetning av information. Denna försämring är delvis övervinnas genom in vitro-tekniker av mesoscale, såsom multielektrod arrayer som möjliggör samtidig extracellulära multielektrod inspelningar inte bara i odlade nervceller utan också i akuta hjärn skivor4, 5. mikrocirriteter kan bevaras i hjärn skivorna till en viss grad (t. ex. i hippocampus), långväga sammanlänkningar är typiskt förlorade6. I slutändan, för att studera de funktionella sammanlänkningar inom neuronala circuitries, systemisk in vivo elektrofysiologiska tekniker på makro är metoden för val7. Dessa metoder omfattar bland annat yta (epidural) och djupa (intracerebral) EEG-inspelningar som utförs i både människor och djurmodeller1. EEG-signaler är huvudsakligen baserade på den synkroniserade synaptiska ingången på pyramidala nervceller i olika kortikala skikt som kan vara hämmande eller excitatoriska i huvudmannen, trots den allmänna dominans av excitatoriska ingång8. Vid synkronisering, excitatoriska postsynaptiska potentialbaserade Skift i extracellulära elektriska fält summeras för att bilda en signal av tillräcklig styrka för att registreras i hårbotten med hjälp av ytan elektroder. Särskilt, en detekterbar hårbotten inspelning från en enskild elektrod kräver aktivitet av 10000 pyramidala nervceller och en komplex i av tekniska enheter och verktyg för bearbetning, inklusive en förstärkare, filtrering processer (lågpassfilter, högpassfilter, notch-filter) och elektroder med specifika ledaregenskaper.

I de flesta experimentella djurarter (dvs möss och råttor), den Human-baserade hårbotten EEG-metoden är tekniskt inte tillämplig, eftersom signalen som genereras av den underliggande cortex är för svag på grund av det begränsade antalet synkroniserade pyramidala nervceller9, 10,11. I gnagare, är ytan (hårbotten) elektroder eller subdermala elektroder således allvarligt förorenade av elektrokardiogram och huvudsakligen Elektromyogram artefakter som gör högkvalitativa EEG inspelningar omöjliga9,11, 12. När du använder tre fritt rörliga möss och råttor, är det därför obligatoriskt att direkt registrera antingen från cortex via epidural elektroder eller från den djupa, intracerebral strukturer för att säkerställa direkt fysisk anslutning av Avkännings spetsen av bly/implanterade elektroden till de signalgenererande neuronala cell klustren. Dessa EEG-metoder kan utföras antingen i en begränsande uppbundna systeminstallation eller genom att använda det icke-begränsande implanerbara EEG-radiotelemetrimetoden9,10,11. Båda teknikerna har sina för-och nackdelar och kan vara en värdefull metod i kvalitativ och kvantitativ karakterisering av kramp känslighet/krampanfall aktivitet, dygnsrytm rytmicitet, sömn arkitektur, oscillerande aktivitet, och synkronisering, inklusive tidsfrekvens analys, käll analys, etc.9,10,13,14,15,16,17.

Medan uppbundna system och radio telemetri möjliggör EEG-inspelningar under fasthållnings-/halvspänningeller icke-begränsande förhållanden matchar inte relaterade Försöksförhållanden kraven för ABR-inspelningar. Den senare efterfrågan på definierade akustiska stimuli som presenteras upprepande över tiden med definierade positioner av en högtalare och experimentella djur och kontrollerade ljudtrycksnivåer (SPLs). Detta kan uppnås endera vid Head fixering under att hindra villkorar eller efter anestesi18,19. För att minska den experimentella stressen, är djur normalt sövda under ABR experiment, men det bör övervägas att anestesi kan störa ABRs19,20.

Som en allmän egenskap, är EEG byggs upp av olika frekvenser i ett spänningsområde av 50-100 μV. bakgrunds frekvenser och amplituder beror starkt på det fysiologiska tillståndet hos försöksdjuret. I vakna tillstånd, beta (β) och gamma (γ) frekvenser med lägre amplitud dominerar. När djuren blir dåsig eller somna, alfa (α), theta (θ), och delta (δ) frekvenser uppstår, uppvisar ökad EEG amplitud21. När en sensorisk kanal (t. ex. den akustiska vägen) stimuleras, förmedlas informationsspridningen via neuronala aktivitet genom perifera och centralanervsystemet. Sådan sensorisk (t. ex. akustisk) stimulering utlöser så kallade EPs-eller framkallat svar. Särskilt, händelserelaterade potentialer (ERPs) är mycket lägre i amplitud än EEG (dvs, några mikrovolt endast). Således skulle varje enskilt ERP baserat på en enda stimulans förloras mot den högre amplitud EEG bakgrund. Därför kräver en inspelning av ett ERP repetitiv tillämpning av identiska stimuli (t. ex. klick i ABR-inspelningar) och efterföljande medelvärde för att eliminera alla EEG-bakgrundsaktiviteter och artefakter. Om ABR inspelningar görs i sövda djur, är det lätt att använda subdermala elektroder här.

I huvudsak inkluderar AEPs korta svarstider EPs, som normalt är relaterade till ABRs eller BERA, och ytterligare, senare debut potentialer såsom midlatency EPs (midlatens svar [MLR]) och lång latens EPs22. Viktigt är att störningar i informationsbehandlingen av hörsel informationen ofta är ett centralt inslag i neuropsykiatriska sjukdomar (demyelinierande sjukdomar, schizofreni etc.) och förknippade med AEP-förändringar23,24 ,25. Medan beteendemässiga utredningar är endast kapabla att avslöja funktionella nedskrivningar, AEP studier möjliggör exakt spatiotemporal analys av hörsel dysfunktion i samband med specifika neuroanatomiska strukturer26.

ABR så tidigt, kort latens akustiskt EPs upptäcks normalt vid måttlig till högintensiva klick program, och det kan förekomma upp till sju ABR toppar (WI-WVII). De viktigaste vågorna (Wi-wV) är relaterade till följande neuroanatomiska strukturer: Wi till hörselnerven (distala delen, inom innerörat); WII till Cochlear Nucleus (proximala delen av hörselnerven, hjärnstammen uppsägning); WIII till den överlägsna olivary Complex (SOC); WIV till den laterala lemniscus (ll); WV till uppsägning av den laterala lemniscus (ll) inom sämre COLLICULUS (IC) på kontralaterala sidan27 (kompletterande figur 1). Det bör noteras att WII-wV sannolikt kommer att ha mer än en anatomisk struktur i den stigande hörsel väg som bidrar till dem. I synnerhet är den exakta korrelationen mellan toppar och underliggande strukturer i hörsel-tarmkanalen fortfarande inte helt klarlagd.

I audiologi, ABRs kan användas som ett screening-och diagnostiskt verktyg och för kirurgisk övervakning28,29. Det är viktigast för identifieringen av dysacusis, hypacusis och anacusis (t. ex. i åldersrelaterade hörselnedsättning, Bullerorsakad hörselnedsättning, metabolisk och medfödd hörselnedsättning, och asymmetrisk hörselnedsättning och hörselnedsättningar på grund av missbildningar eller missbildningar, skador och neoplasmer)28. ABR är också relevanta som ett screeningtest för hyperaktiva, intellektuellt nedsatt barn eller för andra barn som inte skulle kunna reagera på konventionell audiometri (t. ex. vid neurologiska/psykiatriska sjukdomar som ADHD, MS, autism etc.29 , 30) och i utveckling och kirurgisk montering av cochleaimplantat28. Slutligen, ABR kan ge värdefull insikt i de potentiella ototoxiska biverkningar av neuropsykofarmaka, såsom antiepileptika31,32.

Värdet av översättningen av neurofysiologisk kunskap som erhållits från farmakologiska eller transgena musmodeller till människor har visats i många inställningar, särskilt på nivån av ERPs i auditiva paradigm hos möss och råttor33, 34,35. Ny insikt i förändrade tidiga AEPs och tillhörande förändringar i auditiv informationsbehandling hos möss och råttor kan således översättas till människor och är av central betydelse för karakterisering och endofenotypning av hörsel-, neurologiska-och neuropsykiatriska sjukdomar i framtiden. Här ger vi en detaljerad beskrivning av hur ABR kan registreras och analyseras på möss för grundläggande vetenskapliga, toxikologiska och farmakologiska ändamål.

Protocol

Alla djurförsök utfördes enligt riktlinjerna från det tyska rådet för djuromsorg och alla protokoll godkändes av den lokala institutionella och nationella kommittén för djuromsorg (Landesamt für natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, State Kontoret för Nordrhein-Westfalen, Institutionen för natur, miljö och konsumism [LANUV NRW], Tyskland). Författarna intygar vidare att alla djur experiment utfördes i enlighet med National Institutes of Health Guide för vård och användning av försöksdjur (NIH publicat…

Representative Results

Click-och Tone burst-evoked ABR inspelningar kan användas för att utvärdera hörsel tröskel skillnader, amplitud tillväxt funktion och latens jämförelse. Klick-framkallat ABRs i SPL ökande läge avbildas i figur 1 för kontroller och två exemplariska Mutant mus linjer som är bristfällig för cav3,2 T-typ spännings-gated ca2 + kanal (dvs., cav3,2+/- och ca v3,2 null mutanter [Cav3,2<…

Discussion

Detta protokoll ger en detaljerad och integrativ Beskrivning av hur man spelar in auditiv framkallade hjärnstammen svar på möss. Det sätter särskild fokus på djur förbehandling, anestesi, och potentiella metodologiska confounding faktorer. Den senare omfattar bland annat kön, mus linje, ålder och boendeförhållanden. Det bör noteras att alla dessa faktorer kan påverka sensorineural nedsättning hörselnedsättning och grundläggande aspekter av auditiv informationsbehandling. Därför är lämplig stratifieri…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Dr Christina Kolb (tyska centrum för neurodegenerativa sjukdomar [DZNE]) och Dr Robert stark (DZNE) för deras hjälp i djuruppfödning och djur hälsovård. Detta arbete stöddes finansiellt av det federala institutet för droger och medicintekniska produkter (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Tyskland).

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm
Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked
ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422

References

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. 神经科学. , (2019).
check_url/cn/59200?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).

View Video