Brainstem framkallade respons audiometri är ett viktigt verktyg i klinisk neurofysiologi. Numera är hjärnstammen framkallat respons audiometri också tillämpas i grundforskning och prekliniska studier med både farmakologiska och genetiska djurmodeller. Här ger vi en detaljerad beskrivning av hur auditiva hjärnstammen svar kan framgångsrikt registreras och analyseras i möss.
Hjärnstammen framkallade Response audiometri (BERA) är av central betydelse i den kliniska neurofysiologin. Som andra framkallat potential (EP) tekniker, såsom visuellt framkallade potentialer (veps) eller somatosensorisk framkallade potentialer (SEPS), den auditiva framkallade potentialer (aeps) utlöses av upprepad presentation av identiska stimuli, elektroencefalographic (EEG) respons som därefter i genomsnitt resulterar i distinkta positiva (p) och negativa (n) avböjelser. Hos människor kan både amplituden och latens av enskilda toppar användas för att karakterisera förändringar i synkronisering och överledning hastighet i de underliggande neuronala circuitries. Viktigt är att AEPs också tillämpas i grundläggande och preklinisk vetenskap för att identifiera och karakterisera hörselfunktionen i farmakologiska och genetiska djurmodeller. Ännu mer, djurmodeller i kombination med farmakologiska tester utnyttjas för att undersöka om potentiella fördelar vid behandling av sensorineural nedsättning hörselnedsättning (t. ex., ålder-eller Bullerorsakad hörselnedsättning). Här ger vi en detaljerad och integrativ Beskrivning av hur man spelar in auditiv brainstem-framkallat svar (ABRs) i möss med Klicka och Tone-burst ansökan. Ett specifikt fokus för detta protokoll är på pre-experimental djur boende, anestesi, ABR inspelning, ABR filtreringsprocesser, automatiserad Wavelet-baserade amplitud tillväxt funktion analys, och latens upptäckt.
En central aspekt av hjärnans fysiologi är dess förmåga att bearbeta miljöinformation som resulterar i olika inneboende eller extrinsic produktion, såsom inlärning, minne, känslomässiga reaktioner, eller motoriska svar. Olika experimentella och diagnostiska metoder kan användas för att karakterisera den elektrofysiologiska lyhördhet av enskilda neuronala celltyper eller kluster/ensembler av nervceller inom en stimulans-relaterade neuronala kretsar. Dessa elektrofysiologiska tekniker täcker olika spatiotemporal dimensioner på mikro-, meso-och makro1. Den mikroanalys nivå omfattar spänning och ström klämma närmar sig i olika patch-Clamp lägen med, till exempel, odlade eller akut dissocierade nervceller1. Dessa in vitro-tekniker möjliggör karakterisering av enskilda nuvarande enheter och deras farmakologiska modulering2,3. En viktig nackdel är dock avsaknaden av systemisk information när det gäller mikro-och macrocircuitry-integrering och bearbetning av information. Denna försämring är delvis övervinnas genom in vitro-tekniker av mesoscale, såsom multielektrod arrayer som möjliggör samtidig extracellulära multielektrod inspelningar inte bara i odlade nervceller utan också i akuta hjärn skivor4, 5. mikrocirriteter kan bevaras i hjärn skivorna till en viss grad (t. ex. i hippocampus), långväga sammanlänkningar är typiskt förlorade6. I slutändan, för att studera de funktionella sammanlänkningar inom neuronala circuitries, systemisk in vivo elektrofysiologiska tekniker på makro är metoden för val7. Dessa metoder omfattar bland annat yta (epidural) och djupa (intracerebral) EEG-inspelningar som utförs i både människor och djurmodeller1. EEG-signaler är huvudsakligen baserade på den synkroniserade synaptiska ingången på pyramidala nervceller i olika kortikala skikt som kan vara hämmande eller excitatoriska i huvudmannen, trots den allmänna dominans av excitatoriska ingång8. Vid synkronisering, excitatoriska postsynaptiska potentialbaserade Skift i extracellulära elektriska fält summeras för att bilda en signal av tillräcklig styrka för att registreras i hårbotten med hjälp av ytan elektroder. Särskilt, en detekterbar hårbotten inspelning från en enskild elektrod kräver aktivitet av 10000 pyramidala nervceller och en komplex i av tekniska enheter och verktyg för bearbetning, inklusive en förstärkare, filtrering processer (lågpassfilter, högpassfilter, notch-filter) och elektroder med specifika ledaregenskaper.
I de flesta experimentella djurarter (dvs möss och råttor), den Human-baserade hårbotten EEG-metoden är tekniskt inte tillämplig, eftersom signalen som genereras av den underliggande cortex är för svag på grund av det begränsade antalet synkroniserade pyramidala nervceller9, 10,11. I gnagare, är ytan (hårbotten) elektroder eller subdermala elektroder således allvarligt förorenade av elektrokardiogram och huvudsakligen Elektromyogram artefakter som gör högkvalitativa EEG inspelningar omöjliga9,11, 12. När du använder tre fritt rörliga möss och råttor, är det därför obligatoriskt att direkt registrera antingen från cortex via epidural elektroder eller från den djupa, intracerebral strukturer för att säkerställa direkt fysisk anslutning av Avkännings spetsen av bly/implanterade elektroden till de signalgenererande neuronala cell klustren. Dessa EEG-metoder kan utföras antingen i en begränsande uppbundna systeminstallation eller genom att använda det icke-begränsande implanerbara EEG-radiotelemetrimetoden9,10,11. Båda teknikerna har sina för-och nackdelar och kan vara en värdefull metod i kvalitativ och kvantitativ karakterisering av kramp känslighet/krampanfall aktivitet, dygnsrytm rytmicitet, sömn arkitektur, oscillerande aktivitet, och synkronisering, inklusive tidsfrekvens analys, käll analys, etc.9,10,13,14,15,16,17.
Medan uppbundna system och radio telemetri möjliggör EEG-inspelningar under fasthållnings-/halvspänningeller icke-begränsande förhållanden matchar inte relaterade Försöksförhållanden kraven för ABR-inspelningar. Den senare efterfrågan på definierade akustiska stimuli som presenteras upprepande över tiden med definierade positioner av en högtalare och experimentella djur och kontrollerade ljudtrycksnivåer (SPLs). Detta kan uppnås endera vid Head fixering under att hindra villkorar eller efter anestesi18,19. För att minska den experimentella stressen, är djur normalt sövda under ABR experiment, men det bör övervägas att anestesi kan störa ABRs19,20.
Som en allmän egenskap, är EEG byggs upp av olika frekvenser i ett spänningsområde av 50-100 μV. bakgrunds frekvenser och amplituder beror starkt på det fysiologiska tillståndet hos försöksdjuret. I vakna tillstånd, beta (β) och gamma (γ) frekvenser med lägre amplitud dominerar. När djuren blir dåsig eller somna, alfa (α), theta (θ), och delta (δ) frekvenser uppstår, uppvisar ökad EEG amplitud21. När en sensorisk kanal (t. ex. den akustiska vägen) stimuleras, förmedlas informationsspridningen via neuronala aktivitet genom perifera och centralanervsystemet. Sådan sensorisk (t. ex. akustisk) stimulering utlöser så kallade EPs-eller framkallat svar. Särskilt, händelserelaterade potentialer (ERPs) är mycket lägre i amplitud än EEG (dvs, några mikrovolt endast). Således skulle varje enskilt ERP baserat på en enda stimulans förloras mot den högre amplitud EEG bakgrund. Därför kräver en inspelning av ett ERP repetitiv tillämpning av identiska stimuli (t. ex. klick i ABR-inspelningar) och efterföljande medelvärde för att eliminera alla EEG-bakgrundsaktiviteter och artefakter. Om ABR inspelningar görs i sövda djur, är det lätt att använda subdermala elektroder här.
I huvudsak inkluderar AEPs korta svarstider EPs, som normalt är relaterade till ABRs eller BERA, och ytterligare, senare debut potentialer såsom midlatency EPs (midlatens svar [MLR]) och lång latens EPs22. Viktigt är att störningar i informationsbehandlingen av hörsel informationen ofta är ett centralt inslag i neuropsykiatriska sjukdomar (demyelinierande sjukdomar, schizofreni etc.) och förknippade med AEP-förändringar23,24 ,25. Medan beteendemässiga utredningar är endast kapabla att avslöja funktionella nedskrivningar, AEP studier möjliggör exakt spatiotemporal analys av hörsel dysfunktion i samband med specifika neuroanatomiska strukturer26.
ABR så tidigt, kort latens akustiskt EPs upptäcks normalt vid måttlig till högintensiva klick program, och det kan förekomma upp till sju ABR toppar (WI-WVII). De viktigaste vågorna (Wi-wV) är relaterade till följande neuroanatomiska strukturer: Wi till hörselnerven (distala delen, inom innerörat); WII till Cochlear Nucleus (proximala delen av hörselnerven, hjärnstammen uppsägning); WIII till den överlägsna olivary Complex (SOC); WIV till den laterala lemniscus (ll); WV till uppsägning av den laterala lemniscus (ll) inom sämre COLLICULUS (IC) på kontralaterala sidan27 (kompletterande figur 1). Det bör noteras att WII-wV sannolikt kommer att ha mer än en anatomisk struktur i den stigande hörsel väg som bidrar till dem. I synnerhet är den exakta korrelationen mellan toppar och underliggande strukturer i hörsel-tarmkanalen fortfarande inte helt klarlagd.
I audiologi, ABRs kan användas som ett screening-och diagnostiskt verktyg och för kirurgisk övervakning28,29. Det är viktigast för identifieringen av dysacusis, hypacusis och anacusis (t. ex. i åldersrelaterade hörselnedsättning, Bullerorsakad hörselnedsättning, metabolisk och medfödd hörselnedsättning, och asymmetrisk hörselnedsättning och hörselnedsättningar på grund av missbildningar eller missbildningar, skador och neoplasmer)28. ABR är också relevanta som ett screeningtest för hyperaktiva, intellektuellt nedsatt barn eller för andra barn som inte skulle kunna reagera på konventionell audiometri (t. ex. vid neurologiska/psykiatriska sjukdomar som ADHD, MS, autism etc.29 , 30) och i utveckling och kirurgisk montering av cochleaimplantat28. Slutligen, ABR kan ge värdefull insikt i de potentiella ototoxiska biverkningar av neuropsykofarmaka, såsom antiepileptika31,32.
Värdet av översättningen av neurofysiologisk kunskap som erhållits från farmakologiska eller transgena musmodeller till människor har visats i många inställningar, särskilt på nivån av ERPs i auditiva paradigm hos möss och råttor33, 34,35. Ny insikt i förändrade tidiga AEPs och tillhörande förändringar i auditiv informationsbehandling hos möss och råttor kan således översättas till människor och är av central betydelse för karakterisering och endofenotypning av hörsel-, neurologiska-och neuropsykiatriska sjukdomar i framtiden. Här ger vi en detaljerad beskrivning av hur ABR kan registreras och analyseras på möss för grundläggande vetenskapliga, toxikologiska och farmakologiska ändamål.
Detta protokoll ger en detaljerad och integrativ Beskrivning av hur man spelar in auditiv framkallade hjärnstammen svar på möss. Det sätter särskild fokus på djur förbehandling, anestesi, och potentiella metodologiska confounding faktorer. Den senare omfattar bland annat kön, mus linje, ålder och boendeförhållanden. Det bör noteras att alla dessa faktorer kan påverka sensorineural nedsättning hörselnedsättning och grundläggande aspekter av auditiv informationsbehandling. Därför är lämplig stratifieri…
The authors have nothing to disclose.
Författarna vill tacka Dr Christina Kolb (tyska centrum för neurodegenerativa sjukdomar [DZNE]) och Dr Robert stark (DZNE) för deras hjälp i djuruppfödning och djur hälsovård. Detta arbete stöddes finansiellt av det federala institutet för droger och medicintekniska produkter (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Tyskland).
AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) | Tucker-Davis Technologies (TDT) | BioSigRZ | |
Binocular surgical magnification microscope | Zeiss Stemi 2000 | 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000 | |
Cages (Macrolon) | Techniplast | 1264C, 1290D | |
Carprox vet, 50mg/ml | Virbac Tierarzneimittel GmbH | PZN 11149509 | |
Cold light source | Schott KL2500 LCD | 9.705 202 | |
Cotton tip applicators (sterile) | Carl Roth | EH12.1 | |
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) | custom made | custom made | |
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) | Bayer Vital GmbH | PZN: 01578681 | |
Disposable Subdermal stainless steel Needle electrodes, 27GA, 12mm |
Rochester Electro-Medical, Inc. | S03366-18 | |
Surgical drape sheets (sterile) | Hartmann | PZN 0366787 | |
Ethanol, 70% | Carl Roth | 9065.5 | |
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit | Tucker-Davis Technologies (TDT) | PCB-378C0 | |
Gloves (sterile) | Unigloves | 1570 | |
Graefe Forceps-curved, serrated | FST | 11052-10 | |
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 | GraphPad Prism Software, Inc. | https://www.graphpad.com/ | |
Heat-based surgical instrument sterilizer | FST | 18000-50 | |
Homeothermic heating blanked |
ThermoLux | 461265 / -67 | |
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml | Pfizer | PZN 08707288 | |
Ringer’s solution (sterile) | B.Braun | PZN 01471434 | |
Matlab software | MathWorks, Inc. | https://de.mathworks.com/products/matlab.html | |
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage | Tucker-Davis Technologies (TDT) | RA4LI | |
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer | Tucker-Davis Technologies (TDT) | RA4PA | |
Microphone | PCB Pieztronics | 378C01 | |
Multi Field Speaker- Stereo | Tucker-Davis Technologies (TDT) | MF1-S | |
Oscilloscope | Tektronix | DPO3012 | |
Optical PC1 express card for Optibit Interface) | Tucker-Davis Systems (TDT) | PO5e | |
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) | B.Braun | PZN 8473637 | |
Preamplifier | PCB Pieztronics | 480C02 | |
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) | Tucker-Davis Technologies (TDT) | RZ6-A-PI | |
0.9% saline (NaCl, sterile) | B.Braun | PZN:8609255 | |
SigGenRZ software | Tucker-Davis Technologies (TDT) | https://www.tdt.com/ | |
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) | The R Foundation, R Core Team 2015 | Open Source Software (freely distributable) | |
Sound attenuating cubicle | Med Associates Inc. | ENV-018V | |
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length | FST | 11000-12, 11000-14 | |
Leukosilk tape | BSN medical GmbH & Co. KG | PZN 00397109 | |
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm | FST | 11021-12 | |
Uniprotect ventilated cabinet | Bioscape | THF3378 | |
Ventilated cabinet | Tecniplast | 9AV125P | |
Xylazine (Rompun), 2% | Bayer Vital GmbH | PZN 1320422 |