Summary

Aquisição e análise de dados na audiometria de resposta evocada de tronco encefálico em camundongos

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

A audiometria evocada da resposta do brainstem é uma ferramenta importante na neurofisiologia clínica. Atualmente, a audiometria de resposta evocada do tronco encefálico também é aplicada na ciência básica e nos estudos pré-clínicos envolvendo modelos animais farmacológicos e genéticos. Aqui nós fornecemos uma descrição detalhada de como as respostas auditivas do tronco encefálico podem com sucesso ser gravadas e analisadas nos ratos.

Abstract

A audiometria evocada da resposta do brainstem (BERA) é da relevância central na neurofisiologia clínica. Como outras técnicas de potencial evocado (EP), tais como potenciais evocados visualmente (VEPs) ou potenciais evocados somatossensoriais (SEPs), os potenciais evocado auditivos (AEPs) são desencadeados pela apresentação repetitiva de estímulos idênticos, o a resposta electroencephalographic (EEG) de que é calculada subseqüentemente a média tendo por resultado as deflexões positivas (p) e negativas (n) distintas. Nos seres humanos, tanto a amplitude quanto a latência de picos individuais podem ser utilizadas para caracterizar alterações na velocidade de sincronização e condução nos circuitries neuronais subjacentes. É importante ressaltar que os AEPs também são aplicados na ciência básica e pré-clínica para identificar e caracterizar a função auditiva em modelos animais farmacológicos e genéticos. Ainda mais, modelos animais em combinação com testes farmacológicos são utilizados para investigar possíveis benefícios no tratamento da perda auditiva neurossensorial (por exemplo, déficits auditivos induzidos por idade ou ruído). Aqui nós fornecemos uma descrição detalhada e Integrativa de como gravar auditivo brainstem-evocado respostas (ABRs) em camundongos usando clique e Tone-Burst aplicação. Um foco específico deste protocolo está em habitação animal pré-experimental, anestesia, gravação ABR, processos de filtragem de ABR, análise de função de crescimento de amplitude baseada em wavelet automatizada e detecção de latência.

Introduction

Um aspecto central da fisiologia cerebral é sua capacidade de processar informações ambientais, resultando em diferentes saídas intrínsecas ou extrínsecos, como aprendizado, memória, reações emocionais ou respostas motoricas. Várias abordagens experimentais e diagnósticas podem ser usadas para caracterizar a responsividade eletrofisiológica de tipos de células neuronais individuais ou clusters/conjuntos de neurônios dentro de um circuito neuronal relacionado a estímulos. Essas técnicas eletrofisiológicas abrangem diferentes dimensões espaço-temporais no micro, meso-e macrosescala1. O nível da microescala inclui a tensão e as aproximações atuais da braçadeira em modalidades diferentes da remendo-braçadeira usando, por exemplo, os neurônios cultivados ou agudamente dissociados1. Estas técnicas in vitro permitem a caracterização de entidades de corrente individual e sua modulação farmacológica2,3. Uma desvantagem essencial, no entanto, é a falta de informação sistêmica no que diz respeito à integração e ao processamento de informações de micro e macrocircuitos. Este prejuízo é parcialmente superado pelas técnicas in vitro da Mesoscale, tais como matrizes multieletrodos que permitem gravações multieletrodos extracelulares simultâneas não só em neurônios cultivados, mas também em fatias cerebrais agudas4, 5. Considerando que as microcircuitarias podem ser preservadas nas fatias cerebrais em uma extensão específica (por exemplo, no hipocampo), as interconexões de longo alcance são tipicamente perdidas6. Em última análise, para estudar as interconexões funcionais dentro de circuitries neuronais, as técnicas eletrofisiológicas in vivo sistêmicas na macrosescala são o método de escolha7. Estas abordagens incluem, entre outras coisas, a superfície (epidural) e profundas (intracerebral) EEG gravações que são realizadas em ambos os seres humanos e modelos animais1. Os sinais de EEG baseiam-se predominantemente na entrada sináptica sincronizada em neurônios piramidais em diferentes camadas corticais que podem ser inibitórias ou excitatórias no principal, apesar da predominância geral da entrada excitatória8. Em cima da sincronização, os deslocamentos potencial-baseados pós-sináptica excitatórios em campos elétricos extracelular são somados para dar forma a um sinal da força suficiente a ser gravado no escalpe usando elétrodos de superfície. Notavelmente, uma gravação de couro cabeludo detectável de um eletrodo individual requer a atividade de 10000 de neurônios piramidais e um arsenal complexo de dispositivos técnicos e ferramentas de processamento, incluindo um amplificador, processos de filtragem (filtro passa-baixo, filtro passa-alto, filtro de entalhe), e eletrodos com propriedades específicas do condutor.

Na maioria das espécies animais experimentais (ou seja, camundongos e ratos), a abordagem de EEG de couro cabeludo baseada em humanos não é tecnicamente aplicável, pois o sinal gerado pelo córtex subjacente é muito fraco devido ao número limitado de neurônios piramidais sincronizados9, 10,11. Em roedores, eletrodos de superfície (couro cabeludo) ou eletrodos subdérmicos são assim severamente contaminados por eletrocardiograma e artefatos predominantemente eletromiogramas que fazem gravações de EEG de alta qualidade impossíveis9,11, 12. when que usa ratos e ratos livremente moventes não, é conseqüentemente obrigatório gravar diretamente do córtice através dos elétrodos epidural ou das estruturas profundas, intracerebral para assegurar a conexão física direta da ponta de detecção eletrodo de chumbo/implantado para os aglomerados de células neuronais de geração de sinal. Estas aproximações de EEG podem ser executadas em uma instalação tethered de contenção do sistema ou em usar a aproximação implantáveis nonrestringing da telemetriaderádio de EEG9,10,11. Ambas as técnicas têm seus prós e contras e podem ser uma abordagem valiosa na caracterização qualitativa e quantitativa da atividade de susceptibilidade/apreensão convulsiva, ritmicidade circadiana, arquitetura do sono, atividade oscilatória e sincronização, incluindo análise de frequência de tempo, análise de fonte, etc.9,10,13,14,15,16,17.

Considerando que os sistemas amarrados e a telemetria de rádio permitem gravações de EEG circunstâncias de contenção/semirestraining ou nonrestringing, respectivamente, as circunstâncias experimentais relacionadas não combinam as exigências para gravações de ABR. A última demanda por estímulos acústicos definidos que são apresentados repetitivamente ao longo do tempo com posições definidas de um altifalante e de um animal experimental e níveis de pressão sonora controlados (SPLs). Isso pode ser conseguido tanto pela fixação da cabeça condições de restrição ou após a anestesia18,19. Para reduzir o estresse experimental, os animais são normalmente anestesiados durante a experimentação do PEATE, mas deve-se considerar que a anestesia pode interferir na ABRs19,20.

Como uma característica geral, o EEG é construído de freqüências diferentes em uma escala da tensão de 50-100 μV. frequências de fundo e amplitudes dependem fortemente do estado fisiológico do animal experimental. No estado acordado, predominam as frequências beta (β) e gama (γ) com menor amplitude. Quando os animais se tornam sonolento ou adormecem, surgem frequências alfa (α), (θ) e Delta (δ), exibindo aumento da amplitude do EEG21. Uma vez que um canal sensorial (por exemplo, a via acústica) é estimulado, a propagação da informação é mediada através da atividade neuronal através do sistema nervoso periférico e central. Tal estimulação sensorial (por exemplo, acústica) aciona os chamados EPs ou respostas evocadas. Notavelmente, os potenciais relacionados a eventos (ERPs) são muito mais baixos em amplitude do que o EEG (ou seja, apenas alguns microvolts). Assim, todo o ERP individual baseado em um único estímulo seria perdido de encontro ao fundo do EEG da elevado-amplitude. Portanto, uma gravação de um ERP requer a aplicação repetitiva de estímulos idênticos (por exemplo, cliques em gravações ABR) e a média subsequente para eliminar qualquer atividade de fundo EEG e artefatos. Se as gravações de ABR são feitas em animais anestesiados, é fácil usar eletrodos subdérmicos aqui.

Principalmente, os AEPs incluem EPs de curta latência, que normalmente estão relacionados a ABRs ou BERA, e ainda mais, potenciais de início tardio, como EPs de midlatência (respostas de midlatência [MLR]) e EPs22de longa latência. É importante ressaltar que o distúrbio no processamento de informações da informação auditiva é, muitas vezes, uma característica central das doenças neuropsiquiátricas (doenças desmielinizantes, esquizofrenia, etc.) e associada às alterações da AEP23,24 ,25. Considerando que as investigações comportamentais só são capazes de revelar comprometimento funcional, os estudos de AEP permitem uma análise espaciotemporal precisa da disfunção auditiva relacionada a estruturas neuroanatômicas específicas26.

ABRs como cedo, a curto-latência de EPs acusticamente são normalmente detectados após moderada a alta-intensa aplicação clique, e pode ocorrer até sete picos ABR (WI-wVII). As ondas mais importantes (Wi-wV) estão relacionadas às seguintes estruturas neuroanatômicas: wi ao nervo auditivo (porção distal, dentro da orelha interna); WII ao núcleo coclear (porção proximal do nervo auditivo, terminação do tronco encefálico); WIII ao complexo Olivar superior (SOC); WIV ao lemnisco lateral (ll); WV à terminação do lemnisco lateral (ll) dentro do colículo inferior (CI) no lado contralateral27 (Figura complementar 1). Deve-se notar que WII-wV são susceptíveis de ter mais de uma estrutura anatômica da via auditiva ascendente contribuindo para eles. Notavelmente, a correlação exata de picos e estruturas subjacentes do trato auditivo ainda não está totalmente esclarecida.

Na Audiologia, a ABRs pode ser utilizada como ferramenta de triagem e diagnóstico e para o monitoramento cirúrgico28,29. É mais importante para a identificação de Disacusia, hypacusis e anacusia (por exemplo, na perda auditiva relacionada à idade, perda auditiva induzida por ruído, perda auditiva metabólica e congênita, perda auditiva assimétrica e déficits auditivos devido a deformidades ou malformações, lesões e neoplasias)28. As ABRs também são relevantes como um teste de triagem para crianças hiperativas, intelectualmente deficientes ou para outras crianças que não seriam capazes de responder à audiometria convencional (por exemplo, em doenças neurológicas/psiquiátricas como ADHD, MS, autismo etc.29 , 30) e no desenvolvimento e montagem cirúrgica de implantes cocleares28. Finalmente, os ABRs podem fornecer insights valiosos sobre os potenciais efeitos colaterais ototóxicos de neuropsicofármacos, como antiepilépticos31,32.

O valor da tradução do conhecimento neurofisiológico obtido a partir de modelos farmacológicos ou transgênicos para o ser humano tem sido demonstrado em inúmeros ajustes, particularmente no nível de ERPs em paradigmas auditivos em camundongos e ratos33, 34,35. Novas percepções sobre os AEPs precoces alterados e as alterações associadas no processamento da informação auditiva em camundongos e ratos podem, assim, ser traduzidas para os seres humanos e é de importância central na caracterização e endofenotipagem de auditivo, neurológico e doenças neuropsiquiátricas no futuro. Aqui nós fornecemos uma descrição detalhada de como os ABRs podem com sucesso ser gravados e analisados nos ratos para finalidades científicas, toxicológicas, e farmacológicas básicas.

Protocol

Todos os procedimentos animais foram realizados de acordo com as orientações do Conselho alemão de cuidados com os animais e todos os protocolos foram aprovados pela Comissão institucional e nacional de cuidados com os animais (Landesamt für Natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, State Escritório de Renânia do Norte-Vestfália, departamento de natureza, meio ambiente e consumismo [LANUV NRW], Alemanha). Os autores certificam ainda que toda a experimentação animal foi realizada de acordo com o guia nacional de ins…

Representative Results

As gravações de ABR evocadas por estouro de clique e Tom podem ser usadas para avaliar diferenças de limiar auditivo, função de crescimento de amplitude e comparação de latência. Os ABRs Click-evoked no modo crescente SPL são representados na Figura 1 para controles e duas linhas de mouse exemplares mutantes que são deficientes para o cav3,2 T-tipo tensão-gated CA2 + Channel (i.e., CAv3,2+/- e CA v</…

Discussion

Este protocolo fornece uma descrição detalhada e Integrativa de como gravar respostas evocadas auditivas do tronco encefálico nos ratos. Coloca o foco específico no pré-tratamento animal, na anestesia, e em fatores de confundimento metodológicos potenciais. Estes últimos incluem, entre outros, sexo, linha do mouse, idade e condições de moradia. Deve-se notar que todos esses fatores podem ter impacto na perda auditiva neurossensorial e aspectos fundamentais do processamento da informação auditiva. Assim, a estr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Christina Kolb (centro alemão de doenças neurodegenerativas [DZNE]) e ao Dr. Robert Stark (DZNE) por sua assistência na criação de animais e na assistência à saúde animal. Este trabalho foi apoiado financeiramente pelo Instituto Federal de medicamentos e dispositivos médicos (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Alemanha).

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm
Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked
ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422

References

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. 神经科学. , (2019).
check_url/cn/59200?article_type=t

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Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).

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