Summary

Data innsamling og analyse i hjernestammen fremkalt respons Audiometri i mus

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

Hjernestammen fremkalt respons audiometri er et viktig redskap i klinisk nevrofysiologi. I dag, hjernestammen fremkalt respons audiometri er også brukt i grunnleggende vitenskap og prekliniske studier som involverer både farmakologiske og genetiske dyremodeller. Her gir vi en detaljert beskrivelse av hvordan hørsels hjernestammen responser kan bli vellykket innspilt og analysert hos mus.

Abstract

Hjernestammen fremkalt respons audiometri (BERA) er av sentral relevans i klinisk nevrofysiologi. Som andre fremkalt (EP) teknikker, slik som visuelt fremkalt potensiale (VEPs) eller somatosensory fremkalt potensiale (SEPs), utløses hørsels potensialet (AEPs) av repeterende presentasjon av identiske stimuli, elektroencefalografiske (EEG) respons som senere gjennomsnitt resulterer i distinkte positive (p) og negative (n) krengingen. Hos mennesker kan både amplituden og ventetiden til individuelle topper brukes til å karakterisere endringer i synkronisering og Lednings hastighet i de underliggende neuronal kretser. Viktigere, AEPs er også brukt i grunnleggende og prekliniske vitenskap å identifisere og karakterisere hørsels funksjonen i farmakologiske og genetiske dyremodeller. Enda mer, er dyremodeller i kombinasjon med farmakologisk testing benyttet for å undersøke for potensielle fordeler i behandlingen av sensorineural hørselstap (f. eks, alder-eller støy-indusert hørsels underskudd). Her gir vi en detaljert og integrerende beskrivelse av hvordan å spille inn hørsels hjernestammen-fremkalt respons (ABRs) i mus ved hjelp av klikk og tone-burst program. Et bestemt fokus for denne protokollen er på pre-eksperimentelle dyr bolig, anestesi, ABR-opptak, ABR filtreringsprosesser, automatiserte wavelet amplitude vekst funksjon analyse, og latency deteksjon.

Introduction

Et sentralt aspekt av hjernen fysiologi er dens evne til å behandle miljøinformasjon som resulterer i ulike iboende eller ytre produksjon, for eksempel læring, minne, følelsesmessige reaksjoner, eller motoriske svar. Ulike eksperimentelle og diagnostiske tilnærminger kan brukes til å karakterisere den elektrofysiologisk respons av individuelle neuronal celletyper eller klynger/ensembler av neurons innenfor en stimulans-relaterte neuronal kretser. Disse elektrofysiologisk teknikkene dekker ulike spatiotemporal dimensjoner på mikro-, Meso-og macroscale1. Mikroskala nivået inkluderer spenning og strøm klemme tilnærminger i forskjellige patch-Clamp moduser ved hjelp, for eksempel, kultivert eller akutt dissosiert neurons1. Disse in vitro-teknikkene gjør det mulig å karakterisering av individuelle nåværende enheter og deres farmakologiske moduleringshjul2,3. En vesentlig ulempe er imidlertid mangelen på systemisk informasjon når det gjelder mikro-og macrocircuitry informasjons integrasjon og prosessering. Denne verdifall er delvis overvunnet av in vitro teknikker av mesoscale, slik som multielectrode arrays som tillater for samtidige ekstracellulære multielectrode innspillinger ikke bare i kulturperler neurons men også i akutte hjerne skiver4, 5. mens microcircuitries kan bevares i hjernen skiver til en viss grad (for eksempel i hippocampus), langtrekkende sammenkoblinger er vanligvis tapt6. Til syvende og sist, for å studere den funksjonelle sammenkoblinger innen neuronal kretser, er systemisk in vivo elektrofysiologisk teknikker på macroscale metoden for valg7. Disse tilnærmingene inkluderer blant annet overflate (epidural) og dype (intracerebrale) EEG innspillinger som utføres i både mennesker og dyremodeller1. EEG signaler er overveiende basert på synkronisert Synaptic input på pyramideformet neurons i ulike kortikale lag som kan være hemmende eller eksitatoriske i hovedstol, til tross for generell overvekt av eksitatoriske input8. Ved synkronisering, eksitatoriske postsynaptic potensielle-baserte skift i ekstracellulære elektriske felt summeres for å danne et signal av tilstrekkelig styrke til å bli registrert i hodebunnen ved hjelp av overflate elektroder. Spesielt krever en synlig hode bunns innspilling fra en individuell elektrode aktiviteten til 10000 av pyramideformet neurons og en kompleks armamentarium av tekniske enheter og prosesserings verktøy, inkludert en forsterker, filtreringsprosesser (low-pass filter, høypassfilter, hakk filter), og elektroder med spesifikke lederegenskaper.

I de fleste eksperimentelle dyrearter (dvs. mus og rotter), den menneske-baserte hodebunnen EEG tilnærmingen er teknisk ikke aktuelt, da signalet generert av underliggende cortex er for svakt på grunn av begrenset antall synkroniserte pyramideformet neurons9, 10,11. I gnagere, overflate (hodebunn) elektroder eller subdermal elektroder er dermed sterkt forurenset av elektro og hovedsakelig electromyogram gjenstander som gjør høykvalitets EEG innspillinger umulig9,11, 12. Når du bruker unanesthetized fritt bevegelige mus og rotter, er det derfor obligatorisk å direkte ta opp enten fra cortex via epidural elektroder eller fra de dype, intracerebrale strukturene for å sikre direkte fysisk tilkobling av sensing spissen av bly/implantert elektroden til signal-generering neuronal celle klynger. Disse EEG-tilnærmingene kan utføres enten i et begrensende bundet systemoppsett eller ved hjelp av nonrestraining implanterbare EEG-radio telemetri tilnærming9,10,11. Begge teknikkene har sine fordeler og ulemper, og kan være en verdifull tilnærming i den kvalitative og kvantitative karakterisering av beslag mottakelighet/beslag aktivitet, døgn rhythmicity, søvn arkitektur, oscillasjon aktivitet, og synkronisering, inkludert tids frekvens analyse, kilde analyse, etc.9,10,13,14,15,16,17.

Mens bundet systemer og radio telemetri tillater EEG innspillinger under begrensende/semirestraining eller nonrestraining forhold, henholdsvis relaterte eksperimentelle forhold ikke samsvarer med kravene for ABR innspillinger. Sistnevnte etterspørsel etter definerte akustiske stimuli som presenteres full av gjentagelser over tid med definerte posisjoner av en høyttaler og eksperimentelle dyr og kontrollerte lydtrykksnivåer (SPLs). Dette kan oppnås enten ved hode fiksering under begrensende forhold eller etter anestesi18,19. For å redusere eksperimentell stress, dyr er normalt anesthetized under ABR eksperimentering, men det bør vurderes at anestesi kan forstyrre ABRs19,20.

Som en generell karakteristikk, er EEG bygget opp av forskjellige frekvenser i et spenningsområde på 50-100 μV. bakgrunns frekvenser og amplituder sterkt avhengig av den fysiologiske tilstanden til forsøks dyret. I våken tilstand, beta (β) og gamma (γ) frekvenser med lavere amplitude dominerer. Når dyr blir søvnig eller sovner, Alpha (α), theta (θ), og deltaet (δ) frekvenser oppstår, viser økt EEG amplitude21. Når en sensorisk kanal (f. eks, den akustiske veien) stimuleres, informasjon forplantning er formidlet via neuronal aktivitet gjennom perifere og sentrale nervesystemet. En slik sensorisk (f.eks. akustisk) stimulering utløser såkalte EPs-eller fremkalt respons. Spesielt, Event-relaterte potensialer (ERPs) er mye lavere i amplitude enn EEG (dvs. noen mikrovolt bare). Således, alle individ ERP basert på en enkelt stimulans ville gå tapt imot det høyere-amplitude EEG miljøet. Derfor, en innspilling av en ERP krever repeterende anvendelse av identiske stimuli (f. eks, klikk i ABR innspillinger) og påfølgende snitt for å eliminere enhver EEG bakgrunns aktivitet og gjenstander. Hvis ABR innspillinger er gjort i anesthetized dyr, er det lett å bruke subdermal elektroder her.

I hovedsak inkluderer AEPs kort ventetid EPs, som normalt er relatert til ABRs eller BERA, og videre, senere utbruddet potensialer som midlatency EPs (midlatency responser [MLR]) og lang ventetid EPs22. Det er viktig at forstyrrelse i informasjons behandlingen av hørsels informasjonen ofte er et sentralt trekk ved nevropsykiatriske sykdommer (demyeliniserende sykdommer, schizofreni, etc.) og assosiert med AEP-forandringer23,24 ,25. Mens atferdsmessige undersøkelser er bare i stand til å avsløre funksjonell svekkelse, AEP studier tillater presis spatiotemporal analyse av hørbar dysfunksjon knyttet til spesifikke nevroanatomi strukturer26.

ABRs så tidlig, kort latens, er akustisk EPs vanligvis oppdaget ved moderat til høy-intens klikk program, og det kan forekomme opptil sju ABR-topper (WI-wVII). De viktigste bølgene (Wi-wV) er knyttet til følgende nevroanatomi strukturer: Wi til hørselsnerven (den ytre delen, i det indre øret); WII til cochlear nucleus (proksimale del av hørselsnerven, hjernestammen terminering); WIII til overlegen olivary kompleks (SoC); WIV til lateral LEMNISCUS (ll); WV til opphør av lateral LEMNISCUS (ll) i den underlegne COLLICULUS (IC) på kontralateral side27 (supplerende figur 1). Det bør bemerkes at WII-WV er sannsynlig å ha mer enn én anatomisk struktur av stigende hørbar veien bidrar til dem. Spesielt er den nøyaktige sammenhengen mellom topper og underliggende strukturer i hørsels trakten fortsatt ikke helt avklart.

I audiology, ABRs kan brukes som en screening og diagnostisk verktøy og for kirurgisk overvåking28,29. Det er viktigst for identifisering av dysacusis, hypacusis og anacusis (f.eks. i alders relatert hørselstap, støy indusert hørselstap, metabolsk og medfødt hørselstap, og asymmetrisk hørselstap og hørsels underskudd på grunn av misdannelser eller misdannelser, skader og svulster)28. ABRs er også relevant som en screening test for hyperaktiv, intellektuelt nedsatt barn eller for andre barn som ikke ville være i stand til å svare på konvensjonelle audiometri (f. eks, i nevrologiske/psykiatriske sykdommer som ADHD, MS, autisme etc.29 , 30) og i utvikling og kirurgisk montering av cochlea implantater28. Til slutt kan ABRs gi verdifull innsikt i de potensielle ototoxic bivirkningene av neuropsychopharmaceuticals, slik som antiepileptika31,32.

Verdien av oversettelsen av nevrofysiologiske kunnskap innhentet fra farmakologiske eller transgene mus modeller til mennesker har blitt demonstrert i en rekke innstillinger, spesielt på nivået av ERPs i hørbar paradigmer hos mus og rotter33, 34,35. Ny innsikt i endrede tidlige AEPs og tilhørende endringer i hørsels informasjonsbehandling hos mus og rotter kan dermed oversettes til mennesker og er av sentral betydning for karakterisering og endophenotyping av hørsels-, nevrologiske og nevropsykiatriske sykdommer i fremtiden. Her gir vi en detaljert beskrivelse av hvordan ABRs kan bli vellykket registrert og analysert hos mus for grunnleggende vitenskapelige, toksikologiske og farmakologiske formål.

Protocol

Alle dyr prosedyrer ble utført i henhold til retningslinjene i det tyske Rådet for Animal Care og alle protokoller ble godkjent av den lokale institusjonelle og nasjonale komité for dyr omsorg (Landesamt für natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, State Kontoret til Nordrhein-Westfalen, Institutt for natur, miljø og forbruk [LANUV NRW], Tyskland). Forfatterne videre sertifisere at alle dyr eksperimentering ble utført i samsvar med National Institutes of Health guide for omsorg og bruk av laboratorium dyr (NIH Publica…

Representative Results

Klikk-og tone burst-fremkalt ABR-innspillinger kan brukes til å evaluere forskjeller i hørsels terskelen, funksjon for amplitude vekst og sammenligning av tidsforsinkelser. Click-fremkalt ABRs i SPL økende modus er avbildet i figur 1 for kontroller og to eksemplarisk mutant muse linjer som er mangelfull for Cav3,2 T-type spenning-gated ca2 + channel (dvs. cav3,2+/- og ca v3,2 null mutanter [Cav</s…

Discussion

Denne protokollen gir en detaljert og integrerende beskrivelse av hvordan å spille inn hørbar fremkalt hjernestammen svar i mus. Det setter spesielt fokus på dyr forbehandling, anestesi, og potensielle metodisk forvirrende faktorer. Sistnevnte omfatter blant annet kjønn, muse linje, alder, og bolig forhold. Det bør bemerkes at alle disse faktorene kan ha innvirkning på sensorineural hørselstap og grunnleggende aspekter ved behandling av hørsels informasjon. Dermed er passende lagdeling av hørbar profilering stud…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne takke Dr. Christina Kolb (German Center for nevrodegenerative sykdommer [DZNE]) og Dr. Robert Stark (DZNE) for deres assistanse i dyreoppdrett og dyr helsevesenet. Dette arbeidet ble økonomisk støttet av Federal Institute for Drugs and Medical Devices (Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte, BfArM, Bonn, Tyskland).

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm
Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked
ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422

References

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. 神经科学. , (2019).
check_url/cn/59200?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).

View Video