Summary

الحصول على البيانات وتحليلها في الدماغ أثار استجابة القياس السمعي في الفئران

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

الدماغ أثار استجابة القياس السمعي هو أداة هامة في علم وظائف الأعضاء العصبية السريرية. في الوقت الحاضر، يتم تطبيق الدماغ أثار استجابة القياس السمعي أيضا في العلوم الأساسية والدراسات ما قبل السريرية التي تنطوي على كل من النماذج الحيوانية الدوائية والوراثية. نقدم هنا وصفًا مفصلًا لكيفية تسجيل الاستجابات السمعية للجذع الدماغي وتحليلها بنجاح في الفئران.

Abstract

[برينستم] يستحضر استجابة علم سمعيّ ([بيرا]) ذو أهمية مركزية في الفيزيولوجيا عصبيّة سريريّة. كما التقنيات المحتملة الأخرى التي أثيرت (EP)، مثل الإمكانات التي أثيرت بصريا (VEPs) أو الإمكانات الحسية الجسدية التي أثيرت (SEPs)، يتم تشغيل الإمكانات السمعية التي أثيرت (AEPs) من خلال العرض المتكرر للمحفزات متطابقة، و استجابة الدماغ الكهربائي (EEG) التي يتم متوسطها في وقت لاحق مما أدى إلى انحراف إيجابي متميز (ع) وسلبي (ن). في البشر، يمكن استخدام كل من السعة والكمون من القمم الفردية لتوصيف التعديلات في التزامن وسرعة التوصيل في الدوائر العصبية الكامنة. والأهم من ذلك، يتم تطبيق هذه التقييمات أيضاً في العلوم الأساسية وما قبل السريرية لتحديد وتوصيف الوظيفة السمعية في النماذج الدوائية والحيوانية الوراثية. وحتى أكثر من ذلك، يتم استخدام النماذج الحيوانية جنبا إلى جنب مع الاختبارات الدوائية للتحقيق في الفوائد المحتملة في علاج فقدان السمع الحسي العصبي (على سبيل المثال، العجز في السمع الناجم عن العمر أو الضوضاء). نقدم هنا وصفًا تفصيليًا ومتكاملًا لكيفية تسجيل الاستجابات السمعية التي تثيرها جذع الدماغ (ABRs) في الفئران باستخدام تطبيق النقر والاندفاع النغمة. وينصب تركيز هذا البروتوكول بشكل خاص على الإسكان الحيواني قبل التجريبية، والتخدير، وتسجيل ABR، وعمليات تصفية ABR، وتحليل وظيفة نمو السعة الآلية القائمة على الموجة، والكشف عن الكمون.

Introduction

جانب مركزي من علم وظائف الأعضاء في الدماغ هو قدرته على معالجة المعلومات البيئية مما يؤدي إلى مختلف الناتج الجوهرية أو الخارجية، مثل التعلم، والذاكرة، وردود الفعل العاطفية، أو الاستجابات الحركية. ويمكن استخدام مختلف النهج التجريبية والتشخيصية لتوصيف الاستجابة الكهرولوجية لأنواع الخلايا العصبية الفردية أو مجموعات /مجموعات من الخلايا العصبية داخل الدوائر العصبية ذات الصلة التحفيز. هذه التقنيات الكهرولوجية تغطي أبعاد مختلفة spatiotimeعلى الجزئي، والمتوسط، والكلي 1. ويشمل مستوى الميكروسك التجانب والنهج الحالية المشبك في مختلف وسائط التصحيح المشبك باستخدام، على سبيل المثال، الخلايا العصبية المستزرعة أو المنفصلة بشكل حاد1. هذه التقنيات في المختبر تسمح لتوصيف الكيانات الحالية الفردية وتعديلها الدوائية3. بيد أن أحد العيوب الأساسية يتمثل في الافتقار إلى المعلومات النظامية فيما يتعلق بتكامل وتجهيز المعلومات المتعلقة بالدوائر الجزئية والكلية. يتم التغلب على هذا الضعف جزئيا من خلال تقنيات في المختبر من مقياس الأقطاب، مثل صفائف متعددة الأقطاب التي تسمح لتسجيلات متعددة الأقطاب خارج الخلية في وقت واحد ليس فقط في الخلايا العصبية المستزرعة ولكن أيضا في شرائح الدماغ الحاد 5.في حين يمكن الحفاظ على الدوائر الدقيقة في شرائح الدماغ إلى حد معين (على سبيل المثال، في الحصين)، وعادة ما تفقد الترابطات طويلة المدى6. في نهاية المطاف، لدراسة الترابط الوظيفي داخل الدوائر العصبية، الجهازية في التقنيات الكهرولوجية الحية على مقياس الكلي هي طريقة الاختيار7. وتشمل هذه النهج، من بين أمور أخرى، السطحية (فوق الجافية) والعميقة (داخل الدماغ) EEG التسجيلات التي يتم تنفيذها في كل من البشر والنماذج الحيوانية1. وتستند إشارات تخطيط الدماغ EEG في الغالب على المدخلات متشابك متزامنة على الخلايا العصبية الهرمية في طبقات القشرية المختلفة التي يمكن أن تكون مثبطة أو محفزة في الرئيسية، على الرغم من الغلبة العامة للمدخلات المحفزة8. عند التزامن، يتم تلخيص التحولات التي تستند إلى المشاركات المحفزة المحتملة في المجالات الكهربائية خارج الخلية لتشكيل إشارة قوة كافية ليتم تسجيلها على فروة الرأس باستخدام الأقطاب السطحية. وتجدر الإشارة إلى أن تسجيل فروة الرأس القابل للكشف من قطب كهربائي فردي يتطلب نشاط عشرة آلاف من الخلايا العصبية الهرمية وسلاح معقد من الأجهزة التقنية وأدوات المعالجة، بما في ذلك مكبر للصوت، وعمليات التصفية (مرشح تمرير منخفض، عالية تمرير مرشح، مرشح الشق)، والأقطاب الكهربائية مع خصائص موصل محددة.

في معظم الأنواع الحيوانية التجريبية (أي الفئران والفئران)، وطريقة نهج EEG فروة الرأس المستندة إلى الإنسان لا ينطبق من الناحية الفنية، كما أن الإشارة التي تولدها القشرة الكامنة ضعيفة جدا بسبب العدد المحدود من الخلايا العصبية الهرمية متزامنة9، 10،11. في القوارض، والأقطاب السطحية (فروة الرأس) أو الأقطاب تحت الجلد وبالتالي ملوثة بشدة عن طريق تخطيط القلبوالقطع الأثرية الكهربائي في الغالب التي تجعل من التسجيلات تخطيط كهربية الدماغ عالية الجودة مستحيلة 9،11، 12.عند استخدام الفئران والفئران تتحرك بحرية غير مُنقّع، وبالتالي فإنه من الإلزامي أن تسجل مباشرة إما من القشرة عن طريق أقطاب فوق الجافية أو من الهياكل العميقة داخل الدماغ لضمان الاتصال المادي المباشر لطرف الاستشعار من القطب الرصاص / زرع إلى مجموعات الخلايا العصبية توليد إشارة. ويمكن تنفيذ هذه النهج EEG إما في إعداد نظام مقيد المربوطة أو باستخدام نهج القياسعن بعد الراديو EEG غير المقيد زرع 9،10،11. كلا الأسلوبين لها إيجابياتها وسلبياتها ويمكن أن تكون نهجا قيما في التوصيف النوعي والكمي للنوبات حساسية / ضبط النشاط، إيقاع circadian، والهندسة المعمارية النوم، والنشاط المذبذب، والتزامن، بما في ذلك تحليل التردداتالزمنية، وتحليل المصادر، وما إلى ذلك 9،10،13،14،15،16،17.

وفي حين أن النظم المربوطة والقياس عن بعد الراديوي تسمح بتسجيلات تخطيط كهربية الدماغ في ظل ظروف تقييدية/شبه تقييدية أو غير تقييدية، على التوالي، فإن الظروف التجريبية ذات الصلة لا تتطابق مع متطلبات تسجيلات ABR. الطلب الأخير على المحفزات الصوتية المحددة التي يتم تقديمها بشكل متكرر مع مرور الوقت مع مواقف محددة من مكبر الصوت والحيوان التجريبي ومستويات ضغط الصوت الخاضعة للرقابة (SPLs). ويمكن تحقيق ذلك إما عن طريق تثبيت الرأس في ظل ظروف تقييدية أو بعد التخدير18،19. للحد من الإجهاد التجريبي ، يتم تخدير الحيوانات عادة خلال تجربة ABR ، ولكن ينبغي اعتبار أن التخدير يمكن أن يتداخل مع ABRs19،20.

كسمة عامة، يتم بناء تخطيط كهربية الدماغ من ترددات مختلفة في نطاق الجهد من 50-100 درجة مئوية. في الحالة اليقظة، تسود ترددات بيتا (β) وغاما (γ) مع سعة أقل. عندما تصبح الحيوانات نعسان أو تغفو، ألفا (α)، ثاتا (θ)، ودلتا (δ) الترددات تنشأ، وتظهر زيادة EEG السعة21. وبمجرد تحفيز القناة الحسية (مثل المسار الصوتي)، يتم التوسط في نشر المعلومات عن طريق النشاط العصبي من خلال الجهاز العصبي المحيطي والمركزي. مثل هذا التحفيز الحسي (على سبيل المثال، الصوتي) يؤدي إلى ما يسمى بـ EPs أو الاستجابات التي تثيرها. وتجدر الإشارة إلى أن الإمكانات المتصلة بالأحداث أقل بكثير من القدرة على السعة من تخطيط الدماغ (أي بضعة ميكروفولتات فقط). وبالتالي، فإن أي نظام تخطيط موارد المؤسسات الفردية على أساس حافز واحد سيفقد على خلفية تخطيط كهربية الدماغ ذات السعة الأعلى. ولذلك، فإن تسجيل نظام تخطيط موارد المؤسسات يتطلب التطبيق المتكرر للمحفزات المتطابقة (على سبيل المثال، النقرات في تسجيلات ABR) والمتوسط اللاحق للقضاء على أي نشاط خلفي وتحف تخطيط كهربية الدماغ. إذا تم إجراء تسجيلات ABR في الحيوانات التخدير، فمن السهل استخدام الأقطاب تحت الجلد هنا.

وأساساً، تشمل هذه التدابير المجالات المجالات التي تُعنى بالكمون القصير، والتي ترتبط عادة ً بـ ABRs أو BERA، بالإضافة إلى الإمكانات اللاحقة مثل الاستجابات الإلكترونية للمتوسّطات (استجابات الكمون المتوسّط] [MLR]) وEPs22طويلة الكمون. الأهم من ذلك، اضطراب في معالجة المعلومات من المعلومات السمعية غالبا ما تكون سمة مركزية من الأمراض العصبية النفسية (أمراض إزالة الميايلينا، والفصام، وما إلى ذلك) والمرتبطة التعديلات AEP23،24 ،25. في حين أن التحقيقات السلوكية هي فقط قادرة على الكشف عن ضعف وظيفي، والدراسات AEP تسمح لتحليل دقيق spatiotime من الخلل السمعي المتعلقة هياكل عصبية تشريحية محددة26.

يتم عادة ً الكشف عن ABRs في وقت مبكر، ووقت الكمون القصير صوتياً EPs عند تطبيق النقر اتّبع معتدل إلى عالي الكثافة، وقد تحدث ما يصل إلى سبع قمم ABR (WI-WVII). ترتبط الموجات الأكثر أهمية (WI-WV)بالهياكل العصبية التشريحية التالية: WI إلى العصب السمعي (الجزء القاصي، داخل الأذن الداخلية)؛ WII إلى نواة القوقعة (الجزء القريب من العصب السمعي، إنهاء جذع الدماغ)؛ WIII إلى مجمع القلة متفوقة (SOC)؛ WIV إلى lemniscus الجانبية (LL); WV إلى إنهاء lemniscus الجانبية (LL) داخل كوليكولوس السفلي (IC) على الجانب التعارضي27 (الشكلالتكميلي 1). وتجدر الإشارة إلى أن WII-WV من المرجح أن يكون أكثر من بنية تشريحية واحدة من المسار السمعي الصاعد المساهمة فيها. وتجدر الإشارة إلى أن الارتباط الدقيق بين القمم والهياكل الأساسية للجهاز السمعي لم يتم توضيحه بالكامل بعد.

في علم السمع، يمكن استخدام ABRs كأداة للفحص والتشخيص وللرصد الجراحي28،29. من المهم للغاية لتحديد خلل الحدوث، وفرط الهسق، والغضروف (على سبيل المثال، في فقدان السمع المرتبط بالعمر، وفقدان السمع الناجم عن الضوضاء، وفقدان السمع الأيضي والخلقي، وفقدان السمع غير المتماثلة والعجز في السمع بسبب التشوهات أو التشوهات والإصابات والأورام)28. كما أن هذه التقارير ذات صلة كاختبار فحص للأطفال المصابين بفرط النشاط وذوي الإعاقة الذهنية أو للأطفال الآخرين الذين لن يتمكنوا من الاستجابة للقياس السمعي التقليدي (على سبيل المثال، في الأمراض العصبية/النفسية مثل إعاقة، ومرض التصلب المتعدد، والتوحد، وما إلى ذلك29 , 30)وفي تطوير وتركيب الجراحية من يزرع القوقعة28. وأخيرا، يمكن أن توفر ABRs نظرة ثاقبة قيمة في الآثار الجانبية السامة للأوتوكسالات العصبية النفسية، مثل مضادات الصرع31،32.

وقد ثبت قيمة ترجمة المعرفة العصبية الفسيولوجية التي تم الحصول عليها من نماذج الماوس الدوائية أو المعدلة وراثيا للبشر في العديد من البيئات، وخاصة على مستوى ERPs في النماذج السمعية في الفئران والفئران33، 34و35 . وبالتالي يمكن ترجمة نظرة جديدة إلى الـ AEPs المبكرة المتغيرة والتغيرات المرتبطة بها في معالجة المعلومات السمعية في الفئران والجرذان إلى البشر، وهي ذات أهمية مركزية في توصيف والنماذج الإنفئية للسمعيات والعصبية و الأمراض العصبية النفسية في المستقبل. نقدم هنا وصفًا مفصلًا لكيفية تسجيل وتحليل ABRs بنجاح في الفئران للأغراض العلمية والسمية والدوائية الأساسية.

Protocol

تم تنفيذ جميع الإجراءات الحيوانية وفقا للمبادئ التوجيهية للمجلس الألماني لرعاية الحيوان وتمت الموافقة على جميع البروتوكولات من قبل اللجنة المؤسسية والوطنية المحلية لرعاية الحيوانات (Landesamt für Natur, Umwelt, und Verbraucherschutz, State مكتب شمال الراين وستفاليا، وزارة الطبيعة والبيئة والاستهلاكية [LANUV NRW]،…

Representative Results

يمكن استخدام تسجيلات ABR التي تثيرها علامة النقر والنغمة لتقييم الاختلافات في عتبة السمع، ووظيفة نمو السعة، ومقارنة زمن الوصول. يتم تصوير ABRs التي تم استحضارها في وضع زيادة SPL في الشكل 1 للتحكم واثنين من خطوط الماوس المتحولة النموذجية التي تعاني من نقص في قن…

Discussion

يقدم هذا البروتوكول وصفًا مفصلًا ومتكاملًا لكيفية تسجيل استجابات جذع الدماغ السمعية في الفئران. وهو يركز بشكل خاص على المعالجة المسبقة للحيوانية، والتخدير، والعوامل المنهجية المربكة المحتملة. وتشمل هذه الأخيرة، في سبيل أمور منها نوع الجنس، وخط الماوس، والعمر، وظروف السكن. وتجدر الإشار?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويود المؤلفان أن يشكرا الدكتورة كريستينا كولب (المركز الألماني للأمراض العصبية) والدكتور روبرت ستارك (DZNE) على مساعدتهما في تربية الحيوانات والرعاية الصحية الحيوانية. وقد تلقى هذا العمل دعما ماليا من المعهد الاتحادي للأدوية والأجهزة الطبية.

Materials

AEP/OAE Software for RZ6 (BioSigRZ software) Tucker-Davis Technologies (TDT) BioSigRZ
Binocular surgical magnification microscope Zeiss Stemi 2000 0000001003877, 4355400000000, 0000001063306, 4170530000000, 4170959255000, 4551820000000, 4170959040000, 4170959050000
Cages (Macrolon) Techniplast 1264C, 1290D
Carprox vet, 50mg/ml Virbac Tierarzneimittel GmbH PZN 11149509
Cold light source Schott KL2500 LCD 9.705 202
Cotton tip applicators (sterile) Carl Roth EH12.1
Custom made meshed metal Faraday cage (stainless steel, 2 mm thickness, 1 cm mesh size) custom made custom made
5% Dexpanthenole (Bepanthen eye and nose creme) Bayer Vital GmbH PZN: 01578681
Disposable Subdermal stainless steel Needle
electrodes, 27GA, 12mm
Rochester Electro-Medical, Inc. S03366-18
Surgical drape sheets (sterile) Hartmann PZN 0366787
Ethanol, 70% Carl Roth 9065.5
1/4'' Free Field Measure Calibration Mic Kit Tucker-Davis Technologies (TDT) PCB-378C0
Gloves (sterile) Unigloves 1570
Graefe Forceps-curved, serrated FST 11052-10
GraphPad Prism 6 Software, V6.07 GraphPad Prism Software, Inc. https://www.graphpad.com/
Heat-based surgical instrument sterilizer FST 18000-50
Homeothermic
heating blanked
ThermoLux 461265 / -67
Ketanest S (Ketamine), 25mg/ml Pfizer PZN 08707288
Ringer’s solution (sterile) B.Braun PZN 01471434
Matlab software MathWorks, Inc. https://de.mathworks.com/products/matlab.html
Medusa 4-Channel Low Imped. Headstage Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4LI
Medusa 4-Channel Pre-Amp/Digitizer Tucker-Davis Technologies (TDT) RA4PA
Microphone PCB Pieztronics 378C01
Multi Field Speaker- Stereo Tucker-Davis Technologies (TDT) MF1-S
Oscilloscope Tektronix DPO3012
Optical PC1 express card for Optibit Interface) Tucker-Davis Systems (TDT) PO5e
Askina Braucel pads (cellulose absorbet pads) B.Braun PZN 8473637
Preamplifier PCB Pieztronics 480C02
RZ6 Multi I/O Processor system (BioSigRZ) Tucker-Davis Technologies (TDT) RZ6-A-PI
0.9% saline (NaCl, sterile) B.Braun PZN:8609255
SigGenRZ software Tucker-Davis Technologies (TDT) https://www.tdt.com/
Software R (version 3.2.1) + Reshape 2 (Version 1.4.1) + ggplot 2 (version 1.0.1) + datatable (version 1.9.4), + gdata (version 2.13.3), + pastecs (version 1.3.18), + waveslim (version 1.7.5), + MassSpecWavelet (version 1.30.0) The R Foundation, R Core Team 2015 Open Source Software (freely distributable)
Sound attenuating cubicle Med Associates Inc. ENV-018V
Standard Pattern Forceps, 12cm and 14.5 cm length FST 11000-12, 11000-14
Leukosilk tape BSN medical GmbH & Co. KG PZN 00397109
Tissue Forceps- 1×2 Teeth 12 cm FST 11021-12
Uniprotect ventilated cabinet Bioscape THF3378
Ventilated cabinet Tecniplast 9AV125P
Xylazine (Rompun), 2% Bayer Vital GmbH PZN 1320422

References

  1. Sporns, O., Tononi, G., Kotter, R. The human connectome: A structural description of the human brain. PLOS Computational Biology. 1 (4), e42 (2005).
  2. Bebarova, M. Advances in patch clamp technique: towards higher quality and quantity. General Physiology and Biophysics. 31 (2), 131-140 (2012).
  3. Kornreich, B. G. The patch clamp technique: principles and technical considerations. Journal of Veterinary Cardiology. 9 (1), 25-37 (2007).
  4. Spira, M. E., Hai, A. Multi-electrode array technologies for neuroscience and cardiology. Nature Nanotechnology. 8 (2), 83-94 (2013).
  5. Obien, M. E., Deligkaris, K., Bullmann, T., Bakkum, D. J., Frey, U. Revealing neuronal function through microelectrode array recordings. Frontiers in Neuroscience. 8, 423 (2014).
  6. Heuschkel, M. O., Fejtl, M., Raggenbass, M., Bertrand, D., Renaud, P. A three-dimensional multi-electrode array for multi-site stimulation and recording in acute brain slices. Journal of Neuroscience Methods. 114 (2), 135-148 (2002).
  7. Kimiskidis, V. K. Transcranial magnetic stimulation (TMS) coupled with electroencephalography (EEG): Biomarker of the future. Reviews in Neurology. 172 (2), 123-126 (2016).
  8. Nunez, P. L. Toward a quantitative description of large-scale neocortical dynamic function and EEG. Behavioral Brain Science. 23 (3), 371-437 (2000).
  9. Lundt, A., et al. EEG Radiotelemetry in Small Laboratory Rodents: A Powerful State-of-the Art Approach in Neuropsychiatric, Neurodegenerative, and Epilepsy Research. Neural Plasticity. 2016, 8213878 (2016).
  10. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement. Journal of Visualized Experiments. 112 (112), e54216 (2016).
  11. Weiergraber, M., Henry, M., Hescheler, J., Smyth, N., Schneider, T. Electrocorticographic and deep intracerebral EEG recording in mice using a telemetry system. Brain Research Brain Research Protocols. 14 (3), 154-164 (2005).
  12. Kallstrand, J., Nehlstedt, S. F., Skold, M. L., Nielzen, S. Lateral asymmetry and reduced forward masking effect in early brainstem auditory evoked responses in schizophrenia. Psychiatry Research. 196 (2-3), 188-193 (2012).
  13. Muller, R., et al. Automatic Detection of Highly Organized Theta Oscillations in the Murine EEG. Journal of Visualized Experiments. (121), e55089 (2017).
  14. Papazoglou, A., et al. Gender specific hippocampal whole genome transcriptome data from mice lacking the Cav2.3 R-type or Cav3.2 T-type voltage-gated calcium channel. Data in Brief. 12, 81-86 (2017).
  15. Papazoglou, A., et al. Gender-Specific Hippocampal Dysrhythmia and Aberrant Hippocampal and Cortical Excitability in the APPswePS1dE9 Model of Alzheimer’s Disease. Neural Plasticity. 2016, 7167358 (2016).
  16. Papazoglou, A., et al. Motor Cortex Theta and Gamma Architecture in Young Adult APPswePS1dE9 Alzheimer Mice. PLOS ONE. 12 (1), e0169654 (2017).
  17. Siwek, M. E., et al. Altered theta oscillations and aberrant cortical excitatory activity in the 5XFAD model of Alzheimer’s disease. Neural Plasticity. , 781731 (2015).
  18. Welch, T. M., Church, M. W., Shucard, D. W. A method for chronically recording brain-stem and cortical auditory evoked potentials from unanesthetized mice. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 60 (1), 78-83 (1985).
  19. Church, M. W., Gritzke, R. Effects of ketamine anesthesia on the rat brain-stem auditory evoked potential as a function of dose and stimulus intensity. Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 67 (6), 570-583 (1987).
  20. van Looij, M. A., et al. Impact of conventional anesthesia on auditory brainstem responses in mice. Hearing Research. 193 (1-2), 75-82 (2004).
  21. Schomer, D. L., da Silva, F. L. . Niedermeyer’s Electroencephalography: Basic Principles, Clinical Applications, and Related Fields. , (2011).
  22. De Cosmo, G., Aceto, P., Clemente, A., Congedo, E. Auditory evoked potentials. Minerva Anestesiology. 70 (5), 293-297 (2004).
  23. Rosburg, T. Auditory N100 gating in patients with schizophrenia: A systematic meta-analysis. Clinical Neurophysiology. 129 (10), 2099-2111 (2018).
  24. DiLalla, L. F., McCrary, M., Diaz, E. A review of endophenotypes in schizophrenia and autism: The next phase for understanding genetic etiologies. American Journal of Medical Genetics Part C Seminar in Medical Genetics. 175 (3), 354-361 (2017).
  25. Walsh, P., Kane, N., Butler, S. The clinical role of evoked potentials. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 76 Suppl 2, ii16-ii22 (2005).
  26. Opgen-Rhein, C., Neuhaus, A., Urbanek, C., Dettling, M. New strategies in schizophrenia: impact of endophentotypes. Psychiatrische Praxis. 31 Suppl 2, S194-S199 (2004).
  27. Knipper, M., Van Dijk, P., Nunes, I., Ruttiger, L., Zimmermann, U. Advances in the neurobiology of hearing disorders: recent developments regarding the basis of tinnitus and hyperacusis. Progress in Neurobiology. 111, 17-33 (2013).
  28. Miller, C. A., Brown, C. J., Abbas, P. J., Chi, S. L. The clinical application of potentials evoked from the peripheral auditory system. Hearing Research. 242 (1-2), 184-197 (2008).
  29. Manouilenko, I., Humble, M. B., Georgieva, J., Bejerot, S. Brainstem Auditory Evoked Potentials for diagnosing Autism Spectrum Disorder, ADHD and Schizophrenia Spectrum Disorders in adults. A blinded study. Psychiatry Research. 257, 21-26 (2017).
  30. Talge, N. M., Tudor, B. M., Kileny, P. R. Click-evoked auditory brainstem responses and autism spectrum disorder: A meta-analytic review. Autism Research. 11 (6), 916-927 (2018).
  31. Hamed, S. A. The auditory and vestibular toxicities induced by antiepileptic drugs. Expert Opinion in Drug Safety. 16 (11), 1281-1294 (2017).
  32. Ismi, O., et al. The Effect of Methylphenidate on the Hearing of Children with Attention Deficit Hyperactivity Disorder. International Archive in Otorhinolaryngology. 22 (3), 220-224 (2018).
  33. Michna, M., et al. Cav1.3 (alpha1D) Ca2+ currents in neonatal outer hair cells of mice. Journal of Physiology. 553 (Pt 3), 747-758 (2003).
  34. Platzer, J., et al. Congenital deafness and sinoatrial node dysfunction in mice lacking class D L-type Ca2+ channels. Cell. 102 (1), 89-97 (2000).
  35. Willaredt, M. A., Ebbers, L., Nothwang, H. G. Central auditory function of deafness genes. Hearing Research. 312, 9-20 (2014).
  36. Yee, B. K., Singer, P. A conceptual and practical guide to the behavioural evaluation of animal models of the symptomatology and therapy of schizophrenia. Cell Tissue Research. 354 (1), 221-246 (2013).
  37. Fahey, J. R., Katoh, H., Malcolm, R., Perez, A. V. The case for genetic monitoring of mice and rats used in biomedical research. Mammalian Genome. 24 (3-4), 89-94 (2013).
  38. Hunsaker, M. R. Comprehensive neurocognitive endophenotyping strategies for mouse models of genetic disorders. Progress in Neurobiology. 96 (2), 220-241 (2012).
  39. Turner, J. G., Parrish, J. L., Hughes, L. F., Toth, L. A., Caspary, D. M. Hearing in laboratory animals: strain differences and nonauditory effects of noise. Computational Medicine. 55 (1), 12-23 (2005).
  40. Neumann, P. E., Collins, R. L. Genetic dissection of susceptibility to audiogenic seizures in inbred mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5408-5412 (1991).
  41. Meier, S., Groeben, H., Mitzner, W., Brown, R. H. Genetic variability of induction and emergence times for inhalational anaesthetics. European Journal of Anaesthesiology. 25 (2), 113-117 (2008).
  42. Majewski-Tiedeken, C. R., Rabin, C. R., Siegel, S. J. Ketamine exposure in adult mice leads to increased cell death in C3H, DBA2 and FVB inbred mouse strains. Drug Alcohol Dependence. 92 (1-3), 217-227 (2008).
  43. Bonthuis, P. J., et al. Of mice and rats: key species variations in the sexual differentiation of brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology. 31 (3), 341-358 (2010).
  44. Buckmaster, P. S., Haney, M. M. Factors affecting outcomes of pilocarpine treatment in a mouse model of temporal lobe epilepsy. Epilepsy Research. 102 (3), 153-159 (2012).
  45. Jonasson, Z. Meta-analysis of sex differences in rodent models of learning and memory: a review of behavioral and biological data. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 28 (8), 811-825 (2005).
  46. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  47. Ingham, N. J., Pearson, S., Steel, K. P. Using the Auditory Brainstem Response (ABR) to Determine Sensitivity of Hearing in Mutant Mice. Current Protocols in Mouse Biology. 1 (2), 279-287 (2011).
  48. . SigGenRZ Manual Available from: https://www.tdt.com/files/manuals/SigGenRZ_Manual.pdf (2012)
  49. Bogaerts, S., Clements, J. D., Sullivan, J. M., Oleskevich, S. Automated threshold detection for auditory brainstem responses: comparison with visual estimation in a stem cell transplantation study. BMC Neuroscience. 10, 104 (2009).
  50. Probst, F. J., et al. A point mutation in the gene for asparagine-linked glycosylation 10B (Alg10b) causes nonsyndromic hearing impairment in mice (Mus musculus). PLOS ONE. 8 (11), e80408 (2013).
  51. Alvarado, J. C., Fuentes-Santamaria, V., Gabaldon-Ull, M. C., Blanco, J. L., Juiz, J. M. Wistar rats: a forgotten model of age-related hearing loss. Frontiers in Aging Neuroscience. 6, 29 (2014).
  52. Du, P., Kibbe, W. A., Lin, S. M. Improved peak detection in mass spectrum by incorporating continuous wavelet transform-based pattern matching. Bioinformatics. 22 (17), 2059-2065 (2006).
  53. Daubechies, I. . Ten lectures on wavelets. , (1992).
  54. Pearson, J. D., et al. Gender differences in a longitudinal study of age-associated hearing loss. Journal of the Acoustical Society of America. 97 (2), 1196-1205 (1995).
  55. Murphy, M. P., Gates, G. A. Hearing Loss: Does Gender Play a Role?. Medscape Womens Health. 2 (10), 2 (1997).
  56. Henry, K. R. Males lose hearing earlier in mouse models of late-onset age-related hearing loss; females lose hearing earlier in mouse models of early-onset hearing loss. Hearing Research. 190 (1-2), 141-148 (2004).
  57. Ison, J. R., Allen, P. D., O’Neill, W. E. Age-related hearing loss in C57BL/6J mice has both frequency-specific and non-frequency-specific components that produce a hyperacusis-like exaggeration of the acoustic startle reflex. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 8 (4), 539-550 (2007).
  58. Zheng, Q. Y., Johnson, K. R., Erway, L. C. Assessment of hearing in 80 inbred strains of mice by ABR threshold analyses. Hearing Research. 130 (1-2), 94-107 (1999).
  59. Zhou, X., Jen, P. H., Seburn, K. L., Frankel, W. N., Zheng, Q. Y. Auditory brainstem responses in 10 inbred strains of mice. Brain Research. 1091 (1), 16-26 (2006).
  60. Lundt, A., et al. Cav3.2 T-Type Calcium Channels Are Physiologically Mandatory For The Auditory System. 神经科学. , (2019).
check_url/cn/59200?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lundt, A., Soos, J., Henseler, C., Arshaad, M. I., Müller, R., Ehninger, D., Hescheler, J., Sachinidis, A., Broich, K., Wormuth, C., Papazoglou, A., Weiergräber, M. Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice. J. Vis. Exp. (147), e59200, doi:10.3791/59200 (2019).

View Video