Melhorando a extrusão de alta viscosidade de microcristais de tempo-resolvido Serial Femtosecond cristalografia em Lasers de raio-x

Femtosecond serial cristalografia (SFX) é uma técnica de biologia estrutural que explora as propriedades únicas de lasers de raio-x elétron livre (XFEL) para determinar a temperatura ambiente de estruturas de milhares de cristais de tamanho micrométrico enquanto correr mais que a maioria dos os danos de radiação pela “difração antes da destruição” princípio^1,2,3.

Em uma extensão de tempo-resolvido de SFX (TR-SFX), os femtosecond pulsos da XFEL são usados para estudar as alterações estruturais em proteínas^4,5. A proteína de interesse é ativada com um laser óptico (ou outra atividade trigger) antes de ser baleado pelo XFEL em uma instalação de bomba-sonda. Controlando precisamente o atraso entre os pulsos de bomba e sonda, a proteína do alvo pode ser capturada em diferentes Estados. Filmes moleculares de alterações estruturais ao longo de onze ordens de grandeza no tempo demonstram o poder das novas fontes XFEL para estudar a dinâmica de várias proteínas alvos^{6,7,8,9, 10,11,12,13}. Principalmente, o método junta-se as técnicas de estruturais dinâmicas espectroscópicas e estáticas em um só, fornecendo um vislumbre na dinâmica da proteína em perto de resolução atômica.

Sistemas simples para TR-SFX podem conter um gatilho endógeno de ativação com uma componente de foto-sensível como retinal em Bacteriorrodopsina (bR)^9,10, os cromóforos no fotossistema II^12,13, fotoativa proteína amarelo (PYP)^6,7 photoswitchable reversível de proteína fluorescente¹¹, ou um photolyzable monóxido de carbono em mioglobina⁸. Excitantes variações da técnica ainda em desenvolvimento dependem de mistura e injetam esquemas^14,15 para estudar reações enzimáticas ou um campo elétrico usado para induzir mudanças estruturais¹⁶. Dado que fontes XFEL somente estão disponíveis há alguns anos e extrapolando passado sucessos no futuro, o método mostra potencial como uma real mudança de jogo no que diz respeito a nossa compreensão de como função de proteínas.

Porque amostras biológicas são destruídas por uma única exposição a uma alta potência pulso XFEL, novas abordagens de cristalografia de proteínas eram necessárias. Entre esses procedimentos, a habilidade de crescer grandes quantidades de uniforme microcristais precisava ser desenvolvidos^17,18,19. Para habilitar a coleta de dados em um XFEL, estes cristais devem ser entregue, descartados e então renovados para cada pulso XFEL. Dado que XFELs fogo utilizáveis pulsos de 10 a 120 Hz, entrega de amostra deve ser rápido, estável e confiável, mantendo também os cristais intacto e limitador de consumo. Entre as soluções mais bem sucedidas é um injector de microextrusão de alta viscosidade, que proporciona um continuamente streaming de coluna de temperatura cristal-carregado lipídico fase cúbica (LCP) através de raio-x feixe pulsado²⁰. Cristais aleatoriamente orientados, incorporadas no fluxo de LCP, que são interceptadas por dispersão de pulsos a XFEL raios-x sobre um detetor onde um padrão de difração é gravado. LCP foi uma escolha natural para um meio de entrega de amostra, como é frequentemente usado como um meio de crescimento de membrana proteínas cristais^17,21,22,23, ainda outros suportes de alta viscosidade ^24,25,26,,^27,28,29,30 e proteínas solúveis³¹ também têm sido usados no injector. SFX com o injetor de alta viscosidade tem sido bem sucedido durante a determinação de estrutura de membrana proteínas^13,32 incluindo G receptores (GPCRs)^{33,34, 36, 35,37}, com qualidade de dados suficiente para nativo progressiva^38,39 estando tanto tempo e amostra eficiente. Atualmente, estes injetores estão sendo usados mais rotineiramente para medições de temperatura em síncrotron fontes^28,30,40,41 , bem como durante a mais tecnicamente exigindo a experiências e TR-SFX XFELs^9,10,13,42.

Experimentos de TR-SFX comparáveis foram realizados usando outros tipos de injector como fase líquida entrega em um fluxo concentrado bocal^6,7,12, no entanto, esse método requer quantidades de proteína não está disponíveis para muitos biologicamente interessantes destinos. Para a determinação de estruturas estáticas usando extrusão viscoso um consumo médio de 0,072 mg de proteína por padrões de difração indexado 10.000 em comparação com 9,35 mg para o jato de líquido bocais têm sido relatados (ou seja, cerca de 130 vezes mais amostra eficiente)²⁰. O injetor de alta viscosidade tem demonstrado ser um dispositivo de entrega de amostra viável para TR-SFX enquanto apenas sacrificando algumas das de eficiência desta amostra⁴³. Em Nogly et al. (2018)¹⁰, por exemplo, o consumo de amostra foi cerca de 1,5 mg por 10.000 padrões indexados, que compara-se favoravelmente aos experimentos de TR-SFX semelhantes usando o PYP onde o consumo médio da amostra foi muito maior com 74 mg de proteína por 10.000 padrões indexado⁶. Injetores de alta viscosidade, portanto, têm vantagens evidentes quando é limitar a quantidade de proteína disponível ou quando cristais são cultivadas diretamente no LCP.

Para TR-SFX utilizando alta viscosidade injetores para produzir os dados mais confiáveis várias questões técnicas devem ser abordadas: a velocidade de fluxo deve manter-se acima de um valor crítico mínimo; a taxa de sucesso deve ser mantida a um nível que não processa lento de coleta de dados (por exemplo, superior a 5%); e a amostra tem que ser entregue sem interrupções excessivas. Idealmente, estes já condições muito antes de um experimento de TR-SFX agendado para usar tempo XFEL disponível de forma mais eficiente possível. Pricipally, uma diminuição no fluxo de LCP pode permitir sondagem cristais que foram ativados com mais de um pulso de laser óptico e resultado em Estados mistos de ativos, ou sondagem material bombeado quando umpumped material é esperado no feixe. Um benefício adicional de injeção pre-teste é que o tempo de inatividade durante a coleta de dados em um XFEL é minimizado como tempo relegado para substituir bicos entupidos, mudando amostras não-expulsando, e outras tarefas de manutenção é reduzido.

Aqui, apresentamos um método para otimizar a entrega de amostra para coleta de dados TR-SFX com um injector de microextrusão de alta viscosidade. Para simplificar, os métodos descritos não contam com acesso a uma fonte de raios-x, apesar de trabalho em uma trajetória de síncrotron²⁹ iria fornecer informações adicionais sobre as taxas de sucesso esperadas e difração de cristal. Nossos protocolos foram desenvolvidos para otimizar as experiências para capturar isomerização da retina da bomba de protões Bacteriorrodopsina¹⁰ e são realizados em duas fases, começando com a preparação de amostras de cristal para extrusão, seguida de acompanhamento a extrusão usando uma configuração de câmera de alta velocidade. Na primeira fase, o LCP cristal-carregado é misturado com o LCP adicional, lipídios de transição de baixa temperatura ou outros aditivos para garantir que a mistura final é adequada para entrega para o ambiente de amostra sem entupimento ou abrandar. Um novo acoplador de três vias seringa foi desenvolvido para melhorar a homogeneidade mistura de desempenho e amostra. A segunda fase consiste em um teste de extrusão, gravado por uma câmera de alta velocidade para medir diretamente a estabilidade de velocidade de extrusão. Após a análise dos dados de vídeo, podem ser feitos ajustes ao protocolo de preparação de amostra para melhorar os resultados experimentais. Estes procedimentos podem ser adaptados para preparar outras proteínas para coleta de dados TR-SFX, com modificações mínimas e contribuirão para a utilização eficiente dos limitados XFEL beamtime. Com novas instalações XFEL, começando sua operação^44,45 e a transferência de métodos de recolha de dados de série baseado no injector para os síncrotrons^28,30,40,41 , nos próximos anos certamente continuará a fornecer excitantes novos insights sobre a dinâmica estrutural de uma nunca mais ampla gama de alvos de proteína.