Este protocolo utiliza uma abordagem de mancha-livre para visualizar e isolar as células de Purkinje no tecido fresco congelado do cerebelo humano post mortem através do laser microdissection de captura. O propósito do presente protocolo é gerar quantidades suficientes de RNA de alta qualidade para a sequenciação do ARN.
Captura de laser microdissection (LCM) é uma ferramenta vantajosa que permite a recolha de células tumorais e/ou fenotipicamente relevantes ou regiões de tecidos heterogêneas. Capturado do produto pode ser usado em uma variedade de métodos moleculares para proteína, isolamento de DNA ou RNA. No entanto, a preservação do RNA do tecido do cérebro humano após a morte é especialmente desafiador. Técnicas de visualização padrão para LCM exigem histológica ou procedimentos de coloração imuno-histoquímica que ainda podem degradam o RNA. Portanto, nós projetamos um protocolo de aço inoxidável para visualização no LCM com a finalidade de preservar a integridade do RNA no tecido do cérebro humano de post-mortem. A célula de Purkinje do cerebelo é um bom candidato para visualização de aço inoxidável, devido ao seu tamanho e localização característica. O córtex cerebelar tem camadas distintas que diferem em densidade celular, tornando-os um bom arquétipo para identificar sob microscopia de alta ampliação. Células de Purkinje são grandes neurônios situados entre a camada de células grânulo, que é uma rede densamente celular de pequenos neurônios, e a camada molecular, que é escassa em corpos celulares. Por causa dessa arquitetura, o uso de visualização de aço inoxidável é viável. Outros sistemas do órgão ou célula que imitam este fenótipo também seria adequados. O protocolo de aço inoxidável é projetado para reparar o tecido fresco congelado com etanol e remover os lipídios com xilol para uma melhor visualização morfológica sob microscopia de luz de alta ampliação. Este protocolo não leva em conta outros métodos de fixação e é projetado especificamente para amostras de tecido fresco congelado capturadas usando uma radiação ultravioleta (UV)-sistema de LCM. Aqui, apresentamos um protocolo completo para corte e fixação tecido cerebelar humano fresco congelado post-mortem e purificação de RNA a partir de células de Purkinje isoladas por UV-LCM, preservando a qualidade do RNA para subsequente-a sequenciação do ARN. Em nossas mãos, este protocolo produz níveis excepcionais de visualização celular sem a necessidade de coloração reagentes e produz RNA com números elevados de integridade do RNA (≥ 8) conforme necessário para experimentos de perfil transcricionais.
Do laser captura microdissection (LCM) é uma ferramenta valiosa pesquisa que permite a separação das células patologicamente relevantes para posterior avaliação molecularmente orientada. O uso de análises moleculares nestes espécimes de tecido heterogêneo e a correlação com dados clínicos e patológicos é um passo necessário na avaliação o significado translacional de pesquisa biológica1. Ao analisar dados da expressão do gene do RNA, o uso de seções do tecido congelado é altamente recomendado pois permite excelente qualidade de RNA bem como maximizada quantidade2. Tem sido bem estabelecida que alta qualidade e a quantidade de RNA são essenciais para dados significativos de sequenciamento de RNA3. No entanto, quando usando o RNA do tecido fresco congelado post-mortem para LCM, degradação de RNA é um grande desafio, como ocorre imediatamente após a morte e sua extensão é mediada por diversos fatores associados com o tecido coleção método4,5 . Além disso, degradação de RNA é agravada quando as técnicas de coloração são necessários para reconhecer detalhes histológicos e identificação de célula. Especializou-se de técnicas, como a hematoxilina & eosina, Nissl mancha, de coloração imunofluorescência e imunohistoquímica são úteis na diferenciação de células do estroma circundante, mas têm sido mostrados para degradar o RNA e alterar a expressão de transcrição perfis de6. Portanto, nosso laboratório criou um protocolo inoxidável projetado especificamente para preservar o RNA no cerebelo humano post mortem para fins de sequenciação do ARN, após isolamento de LCM de neurônios de Purkinje.
No processamento de tecido congelado fresco para o LCM, o método de fixação variàvel pode afetar a integridade tanto do RNA e tecido. Fixação de formalina é padrão para preservação morfológica, mas causas do cross-linking que podem fragmentar o RNA e interferir de amplificação do RNA7. Fixação de etanol é uma alternativa melhor para o isolamento de RNA, como é um hemostático fixador que não induz a do cross-linking1. Para melhorar a visualização da morfologia do tecido, xileno é a melhor escolha, como ele remove lipídios do tecido. No entanto, existem conhecidas limitações quando utilizando o xileno no LCM, como os tecidos podem secar e tornar-se frágil causando fragmentação de tecido em cima do laser captura7. Xileno também é uma toxina volátil e deve ser manuseado corretamente em uma coifa. Não obstante, xileno foi mostrado para melhorar a visualização do tecido preservando também RNA integridade8. Portanto, nosso protocolo centros em torno do uso de fixação de etanol 70% e desidratação do etanol, seguido de incubação xileno para clareza morfológica.
É importante observar os diferentes tipos de sistemas baseados em laser microdissection, como eles têm sido mostrados para diferem em velocidade, precisão e qualidade do RNA. O laser de infravermelho (IR) capturar microdissection e os sistemas de microdissection microbeam de laser ultravioletas (UV) foram as duas plataformas de LCM romance que surgiu quase simultaneamente8. O sistema IR-LCM emprega um sistema de”contacto” usando um filme termoplástico transparente colocado diretamente na seção de tecido, e as células de interesse seletivamente aderirem ao filme por pulsos de concentrado de um laser de IR. Alternativamente, o UV-LCM é um sistema “non-contact” no qual um feixe de laser focalizado corta fora as células ou regiões de interesse no tecido; dependendo da configuração em duas plataformas comerciais atualmente disponíveis que usam qualquer um microscópio invertido ou vertical design, tecido é adquirido em um dispositivo de recolha por uma onda de pressão induzida por laser que catapulta-lo contra a gravidade ou tecido é coletados por gravidade, respectivamente. Vantagens significativas do sistema UV-LCM incluem aquisição de celular mais rápida, coleção livre de contaminação com a abordagem de não-contato e dissecação mais precisa devido a um muito menor laser feixe diâmetro9. Este protocolo foi projetado especificamente para um sistema de UV-LCM e não foi testado em um sistema de IR-LCM. Em qualquer projeto de sistema de UV-LCM, quando acumuladas células na PAC coleção, o uso de uma lamela que aumenta a clareza celular durante a microscopia não é apropriada, como as células seriam incapazes de entrar o cap de coleção. Portanto, para melhorar a visualização do tecido, testamos o uso de tampões de coleção opaco, que são projetados para agir como uma lamela para visualização microscópica em sistemas UV-LCM, contra tampões coleção cheia de líquido. Tampões de coleção cheia de líquido podem ser um desafio, como o líquido está sujeito a evaporação e deve ser substituído frequentemente enquanto estiver trabalhando no microscópio. Tempo torna-se um fator importante para a estabilidade do RNA, como o tecido capturado imediatamente dissolve7.
Nosso laboratório estuda as alterações post-mortem de contrair no cerebelo dos pacientes com tremor essencial (ET) e doenças neurodegenerativas relacionadas do cerebelo. Temos demonstrado alterações morfológicas centradas nas células de Purkinje que distinguem ET casos versus controles, incluindo um número reduzido de células de Purkinje, aumentaram dendrítica regressão e uma variedade de alterações axonal, levando-na postular que Purkinje degeneração celular é um recurso biológico núcleo ET patogênese10,11,12,13. Perfil transcricional serviu em muitas doenças neurológicas para explorar a base molecular subjacente de alterações degenerativas do celulares. No entanto, perfis transcriptional de amostras heterogêneas, como regiões de tecido do cérebro, podem efetivamente mascarar a expressão de transcritos de baixa abundância e/ou diminuir a detecção de alterações moleculares que ocorrem apenas em uma pequena população de afetados células, como células de Purkinje do córtex cerebelar. Por exemplo, células de Purkinje são vastamente em desvantagem pelas células grânulo abundantes no córtex cerebelar por aproximadamente 1:3000; assim, para efetivamente alvo seu transcriptome exige isolamento específico destes neurônios. O córtex cerebelar é delineado por camadas distintas que diferem em densidade celular e tamanho da célula. Essa arquitetura celular é ideal para visualizar em uma amostra de tecido fresco congelado sem tintura contendo reagentes de coloração. Em teoria, este protocolo também poderia ser aplicado a outros tipos de tecidos que têm tecido característico semelhante organização.
Este protocolo foi projetado para trabalhar especificamente para visualização de células de Purkinje no cerebelo humano post mortem. Inúmeros protocolos existem para a fixação, de coloração, para efeitos de ambos os IR – e UV-LCM, visualização e preservação de RNA de muitos tipos de tecidos. Quando contemplando um projeto experimental para UV-LCM, indivíduos devem adaptar seu protocolo para melhor atender as necessidades e requisitos da inicial e final de materiais. Aqui, nós combinamos muitos aspectos dos diferentes protocolos de LCM para fornecer um método aprimorado para a visualização de células de Purkinje no cerebelo humano sem a necessidade de corante contendo reagentes coloração para preparar RNA de alta qualidade para transcriptome post-mortem sequenciamento.
O protocolo aqui apresentado é modificado especificamente para ser uma abordagem de aço inoxidável em Visualizar morfologicamente distintos tecidos para UV-LCM. Este método foi projetado para maximizar a integridade do RNA para subsequentes direto a sequenciação do ARN, mantendo um nível aprimorado de visualização do tecido. A capacidade de distinguir diferentes tipos de células para captura, para criar a população de células mais pura possível, é essencial para a compreensão de diferentes perfis molecula…
The authors have nothing to disclose.
Os autores gostaria de reconhecer o cérebro do New York Bank, Dr. Jean Paul Vonsattel e Dr. Etty Cortés, por sua assistência na corte e preservar as amostras de tecido do cérebro humano congelado para estas experiências. Os autores gostaria de reconhecer os indivíduos que generosamente doaram seu cérebro para a pesquisa contínua sobre Tremor essencial. Dr. Fausto e Dr. Martuscello gostaria de reconhecer a Columbia University departamento de patologia e biologia celular para o seu contínuo apoio e espaço de pesquisa do núcleo. Os autores gostaria de reconhecer o NIH R01 NS088257 Louis/Fausto) para financiamento de pesquisa para este projeto. Imagens de LCM foram realizadas no Confocal e especializada microscopia recurso compartilhado do Herbert Irving Comprehensive Cancer Center, na Universidade de Columbia, suportado pelo NIH conceder #P30 CA013696 (National Cancer Institute). Os autores que gostaria de agradecer a Theresa Swayne e Laura Munteanu por sua assistência continuada com microscopia especializada.
MembraneSlide NF 1.0 PEN | Zeiss | 415190-9081-000 | Membrane slides for tissue. We do not recommend using glass slides. |
AdhesiveCap 500 Opaque | Zeiss | 415190-9201-000 | Opaque caps are used to enhance visualization on inverted scopes only |
RNase Away | Molecular BioProducts | 7005-11 | Other RNase decontamination products are also suitable. Use to clean all surfaces prior to work. |
200 Proof Ethanol | Decon Laboratories | 2701 | If using alternative Ethanol, ensure high quality. Essential for tissue fixation. |
Xylenes (Certified ACS) | Fisher Scientific | X5P-1GAL | If using alternative xylene, ensure high quality. Essential for tissue visualization. |
UltraPure Distilled Water | Invitrogen | 10977-015 | Other RNA/DNA/Nuclease free water also suitable. Utilized in ethanol dilution only. |
Slide-Fix Slide Jars | Evergreen | 240-5440-G8K | Any slide holder/jar is also suitable. Must be cleaned prior to use. Used for fixation following sectioning. |
Anti-Roll Plate, Assy. 70mm 100um | Leica Biosystems | 14041933980 | Anti-roll plate type is determined by type of cryostat and attachment location on stage. All cryostats have differing requirements. |
Diethyl pyrocarbonate (DEPC) | Sigma Aldrich | D5758-50mL | DEPC from any vendor will do. Follow directions for water treatment. |
Kimwipes | Fisher Scientific | 06-666A | Kimwipes can be ordered from any vendor and used at any size. Kimwipes are to be used to clean microscope and cryostat. |
Tissue-Plus O.C.T. Compound | Fisher Scientific | 23-730-571 | Any brand of OCT is acceptable. No tissue will be embedded in the OCT, it is strickly to attach tissue to 'chuck'. |
Edge-Rite Low-Profile Microtome Blades | Thermo Scientific | 4280L | Blade type is determined by type of cryostat. All cryostats have differing requirements. |
Leica Microsystems 3P 25 + 30MM CRYOSTAT CHUCKS | Fisher Scientific | NC0558768 | Chuck type is determined by type of cryostat. All cryostats have different requirements. Either size is suitable. |
RNeasy Micro Kit (50) | Qiagen | 74004 | Required for RNA extraction post LCM. RLT Lysis buffer essential to gather captured cells from opaque cap. |
RNeasy Mini Kit (50) | Qiagen | 74104 | Required for RNA extraction of section preps, which are performed prior to LCM to test RNA integrity of starting tissues. |
RNase-Free DNase Set | Qiagen | 79254 | Dnase will remove any DNA to allow for a pure RNA population. Ensure Dnase is made fresh. |
2-Mercaptoethanol | Sigma Aldrich | M6250-100ML | Purchased volume at user discretion. Necessary for addition to RLT buffer for cell lysis. Prevents RNase activity. |
Globe Scientific Lot Certified Graduated Microcentrifuge Tube (2 mL) | Fisher Scientific | 22-010-092 | Any 2 mL tube that is RNase free, DNase free, human DNA free, and Pyrogen free will do. |