Summary

תפוקה גבוהה מדידה של קרום פלזמה חתימת יעילות בתאים בתרבית

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

כאן נתאר של תפוקה גבוהה המבוססת על ידי קרינה פלואורסצנטית assay המודד קרום פלזמה חתימת יעילה באמצעות ניתוחים fluorometric, הדמיה בתאים חיים. Assay הזה יכול לשמש לסינון סמים או היעד גנים המווסתים קרום פלזמה חתימת בתאי יונקים.

Abstract

בסביבתם פיזיולוגיים, תאי יונקים נחשפים לעיתים קרובות מושם מכני וביוכימי שתוצאתה נזק קרום פלזמה. בתגובה נזקים אלה, machineries מולקולרית מורכבים במהירות לאטום מחדש קרום פלזמה שחזור תפקידה מכשול ולשמור על הישרדות cell. למרות 60 שנים של מחקר בתחום זה, אנו עדיין חוסר הבנה מעמיקה של התא חתימת מכונות. עם המטרה של זיהוי מרכיבי התא הזה חתימה מחדש של קרום פלזמה של שליטה או תרופות שיכולות לשפר חתימה, פיתחנו assay תפוקה גבוהה המבוססת על ידי קרינה פלואורסצנטית המודד חתימת יעילות בתאים בתרבית של קרום פלזמה תרבותי ב- microplates. כמערכת מודל עבור נזק קרום פלזמה, תאים נחשפים את חיידקי להיוות נקבובית רעלן listeriolysin O (מתוק), המהווה גדול 30-50 ננומטר קוטר proteinaceous נקבוביות ב כולסטרול המכילים הקרומים. השימוש של קורא מבוקרי טמפרטורה microplate רב במצב מאפשר מדידות spectrofluorometric מהיר ורגיש בשילוב עם brightfield קרינה פלואורסצנטית הדמיה מיקרוסקופיה של תאים חיים. ניתוח קינטי של עוצמת קרינה פלואורסצנטית הנפלטת fluorochrome מחייב חומצת גרעין impermeant הממברנה ומשקף את מידת ממברנה ופצעו וחתימה ברמת האוכלוסייה התא, המאפשר החישוב של התא חתימת יעילות . קרינה פלואורסצנטית מיקרוסקופ הדמיה מאפשר ספירת תאים, אשר צורונים אקספרס שימרה פלורסנט של חלבון גרעיני היסטון 2B, בתוך כל טוב של microplate להביא בחשבון וריאציות אפשריות במספר שלהם ומאפשרת בסופו של דבר זיהוי של אוכלוסיות תאים נפרדים. זה וזמינותו תפוקה גבוהה הוא כלי רב עוצמה צפויים להרחיב את ההבנה שלנו של מנגנוני תיקון קרום באמצעות הקרנה עבור גנים המארח או exogenously הוסיף תרכובות את חתימת קרום פלזמה שליטה.

Introduction

בתרבית של תאים כפופים לחץ מכני, osmotic ו ביוכימי, והתוצאה היא האובדן של קרום פלזמה שלמות. ללא חתימה מחדש מהיר ויעיל, תאים פגומים שתכניע במהירות למוות מתוכנת או נמק. מאז שנות השישים, מאמצים כדי להבין את קרום פלזמה חתימת תהליך יש כבר מונעים על-ידי ההשלכות ההרסניות הקשורים בתפקוד שלו. אכן, מחלות כגון חגורת הגפיים-ניוון שרירים, סוכרת או תסמונת Chediak-היגאשי קושרו תיקון קרום פלזמה לקויה עקב מוטציות dysferlin קידוד גנטי, הייצור של מוצרי קצה glycation מתקדם, פגמים lysosomal סחר המתקן CHS1, בהתאמה1,2,3,4,5,6. אולם, נכון להיום, ההבנה שלנו של קרום חתימה הוא עדיין מוגבל7. מחקרים ראשוניים הראו כי קרום חתימה הוא שיזם זרם של חוץ-תאית Ca2 + דרך קרום פלזמה פגום8,9,10. מאז, מספר שאינו-שבחירה Ca2 +-מנגנונים תלויים הוצעו כדי לחתום מחדש תאים. ההשערה תיקון מציעה כי בסמיכות הפצע, שלפוחית תאיים נתיך עם כל קרום פלזמה פגום לפעול כמו תיקון11,12,13,14. מודל נוסף מציעה אקסוציטוזה סידן תלוית הזה של lysosomes לפצע האתר משחרר את האנזים lysosomal חומצה sphingomyelinase, אשר ממירה ספינגומיילין ceramide בעלון החיצוני של קרום פלזמה. השינוי הפתאומי הזה בהרכב השומנים תוצאות מונחה-ceramide אנדוציטוזה מתוך16,15,17באזור הפגוע. לבסוף, המנגנון המוצע השלישית כרוכה תפקיד עבור endosomal המיון מורכבים הנדרשים להעברה (ESCRT) לקדם את היווצרות שלפוחית הפונים כלפי חוץ זה באד של קרום פלזמה18. רק קבוצה מוגבלת של חלבונים זוהה במודלים אלה, מכונות שלהם חייב להיות הובהר עוד יותר.

כאן נתאר וזמינותו של תפוקה גבוהה זה אמצעי קרום פלזמה חתימת יעילות תאים בתרבית של חסיד חשופים לפגיעה מתווכת על-ידי רקומביננטי listeriolysin O (מתוק)19. מתוק להיוות נקבובית רעלן (PFT) מופרש על ידי המחלה תאיים עיצוב גבות ליסטריה monocytogenes20,21,22 , שייך לקבוצת ה-MACPF/CDC (ממברנה התקפה מורכבת, perforin, ו superfamily cytolysin תלויי-כולסטרול). MACPF הם יוצרים נקבובית יונקים החלבונים המעורבים מערכות ההגנה החיסוניות, בעוד CDCs טוקסינים חיידקיים בעיקר המיוצר על ידי פתוגנים גראם חיוביים הגורמות נזק לתאים המארח כדי לקדם אורח חיים החולני שלהם23. CDCs הם מסונתז כמו מונומרים מסיסים במים או הדימרים זה לאגד כולסטרול נוכח קרום פלזמה oligomerize לתוך מתחם prepore subunits עד 50. Prepore מורכב מסדר מחדש ואז להוסיף β-גדילי מעבר ליפידית, ויוצרים נקבובית β-חבית המתפרס על 30-50 ננומטר בקוטר24,25,26,27.  נקבוביות גדולות אלה מאפשרות פלקסים של יונים ורכיבים הסלולר קטן בתוך ומחוץ לתא. למרות זאת, מספר מחקרים הציעו כי נקבוביות בגדלים קטנים יותר הם גם יצרו28,29,30. בין CDCs, מתוק מציג מאפיינים ייחודיים, כולל צבירת בלתי הפיך pH טמפרטורה ותלוי, מה שתורם לביצוע ניתוחים תפוקה גבוהה31,32. ניתן להוסיף מתוק המדיום התרבות התא-4 הלעפה תרוטרפמט, טמפרטורה מתירני כדי שלה מחייב תאים, אך לא את היווצרות הנקבובית מורכבים. חניכה של היווצרות נקבובית ואז ניתן לסנכרן באמצעות העלאת הטמפרטורה הלעפה תרוטרפמט 37, ומאפשר פעפוע יעיל של הרעלן מולקולות במישור של הקרום על טופס oligomers וכן את הבנייה מחדש הסתגלותי מעורב נקבובית הדור. לכן, שלאחר הבורר בטמפרטורה, קינטי של נזק לתאים יהיה תלוי הכמות של רעלן קשור קרום פלזמה. חשוב לציין, מתוק מסיסים (מאוגדים קרום פלזמה) במהירות ובאופן בלתי הפיך אגרגטים כאשר הטמפרטורה מגיעה הלעפה תרוטרפמט 37, אשר מקלה על הצורך לשטוף את הרעלן לא מאוגד מולקולות ומגביל את היקף נזק הממברנה לאורך זמן. לבסוף, מכיוון מתוק נקשר כולסטרול, טפסים נקבוביות ממברנות כולסטרול-עשיר, זה וזמינותו היא לבצע מגוון רחב של תאי יונקים. חשוב לזכור כי מתוק משפיע על התא המארח איתות בעיקר דרך היווצרות נקבובית, עם כמה יוצאים מן הכלל בתא נקבובית שאינו תלוי איזה איתות עלולה להתרחש33,34,35,36 ,37,38,39. לכן, זה לא יכול להיות מהכלל הזה מתוק איתות פעילויות עשויה להשפיע על התהליך של תיקון קרום.

זה וזמינותו ישירות מעריך את היקף התא ופצעו על ידי מדידת שיתוף התא impermeant fluorochrome (למשל, יודיד propidium) פסיבי מזין תאים פצועים, הופך מאוד פלורסנט ברגע זה משייך חומצות גרעין . לפיכך, fluorochrome יכול להישמר במדיום התרבות התא לאורך כל הניסוי, ומאפשר ניתוחים בזמן אמת של התא ופצעו. עוצמת קרינה פלואורסצנטית לצבוע חומצת גרעין מחייב יגדל עם ריכוז הרעלן ו, על ריכוז נתון של הרעלן, תגדל עם הזמן עד כל הנקבוביות נוצרות, התאים הם תוקנו או עד רוויה. זרם של חוץ-תאית Ca2 + דרך ממברנה הנקבוביות הוא אירוע קווה נון עבור חתימה מחדש. לכן, יעילות resealing יכול להיות בעקיפין שמעידים השוואת תא ופצעו במדיום תרבות המכיל Ca2 + (תיקון תנאי מתירניות) כדי ופצעו ב Ca2 +-חינם בינוני (תיקון תנאי מגביל). כיוון עוצמת קרינה פלואורסצנטית לצבוע מחייב חומצת גרעין הוא ביחס ישר לריכוז תא היטב לכל, חשוב לתאי הזרע-ריכוז זהה בבארות כל. חשוב גם לספור תאים כל היטב לפני ואחרי וזמינותו כדי להבטיח כי ניתוק התא אינו מתרחש, צפים, מצטברים תאים ניתן להסתיר את קריאות קרינה פלואורסצנטית אשר עלול לסבך את פרשנות הנתונים. לספור תאים, התאים לבטא היסטון גרעיני מותאם לשפות אחרות 2B-GFP (ויזת עבודה H2B-GFP) שימשו זה וזמינותו. מבוקרי טמפרטורה, מצב מרובה, microplate הקוראים לשלב מהירה, תפוקה גבוהה מדידות (באמצעות תבנית 96 או 384-ובכן לוח) של עוצמות קרינה פלואורסצנטית עם מיקרוסקופ הדמיה של תאים חיים ב 37 º C. האחרון יכול לשמש כדי למנות את מספר הטלפון הנייד ולצפות היווצרות בסופו של דבר של אוכלוסיות תאים נפרדים.

בסופו של דבר, וזמינותו זה מספק למשתמשים את היכולת להרחיב את הידע שלהם על המורכבות של מנגנוני תיקון קרום על ידי הקרנה של מולקולות מארח או תרכובות exogenously הוסיף כי עשויות לשלוט ממברנה לתקן. הפרוטוקול הבא מתאר את השלבים ניסיוני כדי למדוד את היעילות resealing של התאים חשופים מתוק ולהעריך את ההשפעות של התרופה נתון או טיפול הסלולר על יעילות חתימה מחדש.

Protocol

1. הכנה תא יופיצהערה: האדם תאי אפיתל צוואר הרחם, הלה והלה לבטא היסטון 2B-GFP (ויזת עבודה H2B-GFP), שהיו בשימוש פרוטוקול זה, אך assay זו ניתן להתאים בתרבית של תאים אחרים19. ניתוק תאים חסיד מבקבוק 75 ס מ2 תא תרבות ע י שטיפת התאים עם 2 מ של טריפסין-EDTA 0.25%. החלף את טריפסין בשימוש 2 מ…

Representative Results

תא סופר דיוק: הלה תאים משמשים לעתים קרובות כקו בתרבית של תאים דגם לחקור מנגנוני תיקון קרום. בעת הערכת תיקון קרום ברמת האוכלוסייה תא, חשוב לתאי צלחת-ריכוז זהה בבארות כל לפרשנויות הנתונים המתאימים. זה חשוב גם לוודא ביצוע וזמינותו מספרי הטלפון הנייד שלהם שוות ערך מעבר בארות. …

Discussion

Assay זו מודדת את היעילות של קרום חתימת ברמת האוכלוסייה תא עם קיבולת תפוקה גבוהה. זה יכול לשמש עבור מרכיבי התא או ספריות סמים העלולה להשפיע על קרום תיקון מסך. וזמינותו שתואר פעם תבנית צלחת 96-ובכן, אבל זה ניתן להתאים 384-ובכן לוחות עבור תפוקה גבוהה יותר. היתרון הזה וזמינותו הוא היכולת שלו לקבל מד?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו להכיר ד ר ג’סי Kwiek (אוניברסיטת אוהיו) באדיבות הרשות לשימוש שלו פלטפורמה רב במצב זיהוי עבור ניסויים מוקדמים. מחקר דיווחו במאמר זה נתמך על ידי המכון הלאומי לאלרגיה ומחלות זיהומיות של מכוני הבריאות הלאומיים תחת פרס מספר RO1AI107250 כדי Seveau סטפני. התוכן הוא אך ורק באחריות המחברים, ואינם מייצגים בהכרח את הנופים הרשמי של מכוני הבריאות הלאומיים.

Materials

SpectraMax i3x Multi-Mode Microplate Reader Molecular Devices i3x
MiniMax 300 Imaging cytometer Molecular Devices 5024062
TO-PRO-3 ThermoFisher Scientific T3605
Propidium Iodide ThermoFisher Scientific P3566
HeLa ATCC CCL2
HeLa H2B-GFP Millipore SCC117
Trypsin-EDTA 0.25% ThermoFisher Scientific 25200056
96-well Corning flat bottom black polystyrene tissue culture treated plate Corning 3603
Hanks' balanced Salts Sigma-Aldrich H4891
EGTA ISC BioExpress 0732-100G
HEPES Fisher Scientific BP310-500
D-(+)-Glucose, HybriMax Sigma-Aldrich G5146-1KG

References

  1. Demonbreun, A. R., McNally, E. M. Plasma Membrane Repair in Health and Disease. Current Topics in Membranes. 77, 67-96 (2016).
  2. Howard, A. C., McNeil, A. K., McNeil, P. L. Promotion of plasma membrane repair by vitamin E. Nature Communications. 2, 597 (2011).
  3. Howard, A. C., et al. A novel cellular defect in diabetes: membrane repair failure. Diabetes. 60 (11), 3034-3043 (2011).
  4. Lozano, M. L., et al. Towards the targeted management of Chediak-Higashi syndrome. Orphanet Journal of Rare Diseases. 9, 132 (2014).
  5. Vainzof, M., et al. Dysferlin protein analysis in limb-girdle muscular dystrophies. Journal of Molecular Neuroscience. 17 (1), 71-80 (2001).
  6. Huynh, C., et al. Defective lysosomal exocytosis and plasma membrane repair in Chediak-Higashi/beige cells. Proceeding of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (48), 16795-16800 (2004).
  7. Cooper, S. T., McNeil, P. L. Membrane Repair: Mechanisms and Pathophysiology. Physiological Reviews. 95 (4), 1205-1240 (2015).
  8. Steinhardt, R. A., Bi, G., Alderton, J. M. J. M. Cell membrane resealing by a vesicular mechanism similar to neurotransmitter release. Science. 263 (5145), 390-393 (1994).
  9. De Mello, W. C. Membrane sealing in frog skeletal-muscle fibers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 70 (4), 982-984 (1973).
  10. Fishman, H. M., Tewari, K. P., Stein, P. G. Injury-induced vesiculation and membrane redistribution in squid giant axon. Biochimica et Biophysica Acta. 1023 (3), 421-435 (1990).
  11. Davenport, N. R., Bement, W. M. Cell repair: Revisiting the patch hypothesis. Communicative & Integrative Biology. 9 (6), 1253643 (2016).
  12. McNeil, P. L., et al. Patching plasma membrane disruptions with cytoplasmic membrane. Journal of Cell Science. 113 (11), 1891-1902 (2000).
  13. Terasaki, M., Miyake, K., McNeil, P. L. Large plasma membrane disruptions are rapidly resealed by Ca2+-dependent vesicle-vesicle fusion events. Journal of Cell Biology. 139 (1), 63-74 (1997).
  14. Bi, G. Q., Alderton, J. M., Steinhardt, R. A. Calcium-regulated exocytosis is required for cell membrane resealing. Journal of Cell Biology. 131 (6 Pt. 2), 1747-1758 (1995).
  15. Tam, C., et al. Exocytosis of acid sphingomyelinase by wounded cells promotes endocytosis and plasma membrane repair. Journal of Cell Biology. 189 (6), 1027-1038 (2010).
  16. Rodriguez, A., et al. Lysosomes behave as Ca2+-regulated exocytic vesicles in fibroblasts and epithelial cells. Journal of Cell Biology. 137 (1), 93-104 (1997).
  17. Reddy, A., Caler, E. V., Andrews, N. W. Plasma membrane repair is mediated by Ca(2+)-regulated exocytosis of lysosomes. Cell. 106 (2), 157-169 (2001).
  18. Jimenez, A. J., et al. ESCRT machinery is required for plasma membrane repair. Science. 343 (6174), 1247136 (2014).
  19. Pathak-Sharma, S., et al. High-Throughput Microplate-Based Assay to Monitor Plasma Membrane Wounding and Repair. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 7, 305 (2017).
  20. Hamon, M. A., et al. Listeriolysin O: the Swiss army knife of Listeria. Trends in Microbiology. 20 (8), 360-368 (2012).
  21. Seveau, S. Multifaceted activity of listeriolysin O, the cholesterol-dependent cytolysin of Listeria monocytogenes. Subcellular Biochemistry. 80, 161-195 (2014).
  22. Osborne, S. E., Brumell, J. H. Listeriolysin O: from bazooka to Swiss army knife. Philosophical Transactions of the Royal Society of London B: Biological Sciences. 372 (1726), (2017).
  23. Lukoyanova, N., Hoogenboom, B. W., Saibil, H. R. The membrane attack complex, perforin and cholesterol-dependent cytolysin superfamily of pore-forming proteins. Journal of Cell Science. 129 (11), 2125-2133 (2016).
  24. Tweten, R. K. Cholesterol-dependent cytolysins, a family of versatile pore-forming toxins. Infection and Immunity. 73 (10), 6199-6209 (2005).
  25. Koster, S., et al. Crystal structure of listeriolysin O reveals molecular details of oligomerization and pore formation. Nature Communications. 5, 3690 (2014).
  26. Duncan, J. L., Schlegel, R. Effect of streptolysin O on erythrocyte membranes, liposomes, and lipid dispersions. A protein-cholesterol interaction. Journal of Cell Biology. 67 (1), 160-174 (1975).
  27. Morgan, P. J., et al. Subunit organisation and symmetry of pore-forming, oligomeric pneumolysin. FEBS Letters. 371 (1), 77-80 (1995).
  28. Leung, C., et al. Stepwise visualization of membrane pore formation by suilysin, a bacterial cholesterol-dependent cytolysin. eLife. 3, (2014).
  29. Marchioretto, M., et al. What planar lipid membranes tell us about the pore-forming activity of cholesterol-dependent cytolysins. Biophysical Chemistry. 182, 64-70 (2013).
  30. Palmer, M., et al. Assembly mechanism of the oligomeric streptolysin O pore: the early membrane lesion is lined by a free edge of the lipid membrane and is extended gradually during oligomerization. European Molecular Biology Organization Journal. 17 (6), 1598-1605 (1998).
  31. Bavdek, A., et al. pH dependence of listeriolysin O aggregation and pore-forming ability. Federation of European Biochemical Society Journal. 279 (1), 126-141 (2012).
  32. Schuerch, D. W., Wilson-Kubalek, E. M., Tweten, R. K. Molecular basis of listeriolysin O pH dependence. Proceeding of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (35), 12537-12542 (2005).
  33. Cassidy, S. K., O’Riordan, M. X. More than a pore: the cellular response to cholesterol-dependent cytolysins. Toxins (Basel). 5 (4), 618-636 (2013).
  34. Lam, J., et al. Host cell perforation by listeriolysin O (LLO) activates a Ca(2+)-dependent cPKC/Rac1/Arp2/3 signaling pathway that promotes L. monocytogenes internalization independently of membrane resealing. Molecular Biology of the Cell. , (2017).
  35. Gekara, N. O., Weiss, S. Lipid rafts clustering and signalling by listeriolysin O. Biochemical Society Transactions. 32 (Pt 5), 712-714 (2004).
  36. Magassa, N., Chandrasekaran, S., Caparon, M. G. Streptococcus pyogenes cytolysin-mediated translocation does not require pore formation by streptolysin O. European Molecular Biology Organization Reports. 11 (5), 400-405 (2010).
  37. Baba, H., et al. Induction of gamma interferon and nitric oxide by truncated pneumolysin that lacks pore-forming activity. Infection and Immunity. 70 (1), 107-113 (2002).
  38. Carrero, J. A., Vivanco-Cid, H., Unanue, E. R. Listeriolysin o is strongly immunogenic independently of its cytotoxic activity. Public Library of Science One. 7 (3), e32310 (2012).
  39. Coconnier, M. H., et al. Listeriolysin O-induced stimulation of mucin exocytosis in polarized intestinal mucin-secreting cells: evidence for toxin recognition of membrane-associated lipids and subsequent toxin internalization through caveolae. Cell Microbiology. 2 (6), 487-504 (2000).
  40. Suzuki, T., et al. DNA staining for fluorescence and laser confocal microscopy. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 45 (1), 49-53 (1997).
  41. Bink, K., et al. TO-PRO-3 is an optimal fluorescent dye for nuclear counterstaining in dual-colour FISH on paraffin sections. Histochemistry and Cell Biology. 115 (4), 293-299 (2001).
  42. Zhang, J. H., Chung, T. D., Oldenburg, K. R. A Simple Statistical Parameter for Use in Evaluation and Validation of High Throughput Screening Assays. Journal of Biomolecular Screening. 4 (2), 67-73 (1999).
  43. Birmingham, A., et al. Statistical methods for analysis of high-throughput RNA interference screens. Nature Methods. 6 (8), 569-575 (2009).
  44. Zhang, X. D. A pair of new statistical parameters for quality control in RNA interference high-throughput screening assays. Genomics. 89 (4), 552-561 (2007).
  45. Zhang, X. D. A new method with flexible and balanced control of false negatives and false positives for hit selection in RNA interference high-throughput screening assays. Journal of Biomolecular Screening. 12 (5), 645-655 (2007).
  46. Idone, V., et al. Repair of injured plasma membrane by rapid Ca2+-dependent endocytosis. Journal of Cell Biology. 180 (5), 905-914 (2008).
  47. Davenport, N. R., et al. Membrane dynamics during cellular wound repair. Molecular Biology of the Cell. 27 (14), 2272-2285 (2016).
  48. Defour, A., Sreetama, S. C., Jaiswal, J. K. Imaging cell membrane injury and subcellular processes involved in repair. Journal of Visualized Experiments. (85), (2014).
  49. Lee, J. J. A., et al. Cell Membrane Repair Assay Using a Two-photon Laser Microscope. Journal of Visualized Experiments. (131), (2018).
  50. Weisleder, N., et al. Visualization of MG53-mediated cell membrane repair using in vivo and in vitro systems. Journal of Visualized Experiments. (52), (2011).
  51. Corrotte, M., et al. Toxin pores endocytosed during plasma membrane repair traffic into the lumen of MVBs for degradation. Traffic. 13 (3), 483-494 (2012).
  52. Kuismanen, E., Saraste, J. Low temperature-induced transport blocks as tools to manipulate membrane traffic. Methods in Cell Biology. 32, 257-274 (1989).
  53. Togo, T., et al. The mechanism of facilitated cell membrane resealing. Journal of Cell Science. 112, 719-731 (1999).
  54. Johnson, S. A., et al. Temperature-dependent phase behavior and protein partitioning in giant plasma membrane vesicles. Biochimica et Biophysica Acta. 1798 (7), 1427-1435 (2010).
  55. Lam, J. G. T., et al. Host cell perforation by listeriolysin O (LLO) activates a Ca(2+)-dependent cPKC/Rac1/Arp2/3 signaling pathway that promotes Listeria monocytogenes internalization independently of membrane resealing. Molecular Biology of the Cell. 29 (3), 270-284 (2018).

Play Video

Cite This Article
Lam, J. G., Song, C., Seveau, S. High-throughput Measurement of Plasma Membrane Resealing Efficiency in Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (143), e58351, doi:10.3791/58351 (2019).

View Video